A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يصف هذا البروتوكول إجراء تحرير الجينوم في البلاعم المشتقة من نخاع عظم الفأر باستخدام مجمعات البروتين النووي الريبي Cas9-sgRNA المجمعة في المختبر وتسليمها عن طريق التثقيب الكهربائي.

Abstract

تعد البلاعم المشتقة من نخاع العظم (BMDMs) من الفئران أداة رئيسية لدراسة البيولوجيا المعقدة لبلاعم الأنسجة. كخلايا أولية ، فإنها تمثل فسيولوجيا البلاعم في الجسم الحي بشكل أوثق من خطوط خلايا البلاعم الخالدة ويمكن اشتقاقها من الفئران التي تحمل بالفعل تغييرات جينية محددة. ومع ذلك ، فإن تعطيل وظيفة الجينات في BMDMs لا يزال يمثل تحديا تقنيا. هنا ، نقدم بروتوكولا لتحرير جينوم CRISPR / Cas9 الفعال في BMDMs ، والذي يسمح بإدخال عمليات إدخال وحذف صغيرة (indels) تؤدي إلى طفرات إزاحة الإطار التي تعطل وظيفة الجينات. يصف البروتوكول كيفية تجميع الحمض النووي الريبي أحادي التوجيه (sgRNA-Cas9) وتشكيل مجمعات البروتين النووي الريبي sgRNA-Cas9 المنقاة (RNPs) التي يمكن توصيلها عن طريق التثقيب الكهربائي. كما يوفر طريقة فعالة لمراقبة كفاءة التحرير باستخدام تسلسل سانجر الروتيني وبرنامج تحليل متاح مجانا عبر الإنترنت. يمكن تنفيذ البروتوكول في غضون 1 أسبوع ولا يتطلب بناء البلازميد. ينتج عنه عادة كفاءة تحرير تتراوح من 85٪ إلى 95٪.

Introduction

البلاعم هي خلايا مناعية فطرية تلعب أدوارا حاسمة في إصلاح الأنسجة والمناعة 1,2. تتميز خطوط خلايا البلاعم الخالدة ، مثل خلايا الماوس RAW 264.7 أو خلايا THP-1 البشرية ، بالعديد من الخصائص المفيدة ، بما في ذلك النمو القوي وسهولة تعطيل الجينات عن طريق توصيل ناقلات لتداخل الحمض النووي الريبي أو CRISPR / Cas9 3,4. ومع ذلك ، فإن التحول السرطاني يغير بشكل كبير فسيولوجيتها ، مما يؤدي إلى التنشيط الشاذ لبعض المسارات والاستجابات الصامتة للآخرين 5,6. تلخص البلاعم الأولية المشتقة من نخاع العظم (BMDMs) بشكل أ....

Protocol

1. تصميم sgRNA

ملاحظة: تصف هذه الخطوة اختيار التسلسلات المستهدفة وتصميم sgRNAs. من المفيد تصميم أدلة موجودة في أول إكسون ترميز كبير ، بحيث يتم تعطيل أي بروتين مترجم في وقت مبكر من إطار القراءة المفتوح. من المفيد أيضا تحديد التسلسلات المستهدفة التي تقع ضمن نفس exon ، حيث سيؤدي ذلك إلى تبسيط تحليل كفاءة التحرير (الخطوة 6). استخدمت أمثلة تحرير الجينوم المقدمة مع هذا البروتوكول sgRNAs التي تستهدف أول إكسون لجين Src وجين Cblb ، وكذلك في موضع Rosa26 غير المشفر لجينوم الفأر.

  1. حدد 20 تسلسلا جينوميا للنيوكليوتيدات لاستهدافها ، باستخدام واحدة من عدة أدوات تصميم مجانية عبر الإنترنت (الجدول 1....

النتائج

قالب IVT هو منتج PCR 127 bp (الشكل 1B). منتج IVT كامل الطول هو 98 nt RNA ، والذي يهاجر بشكل مشابه لجزء DNA مزدوج تقطعت به السبل 70 bp (الشكل 1C).

بعد التثقيب الكهربائي ، يجب أن تكون الخلايا قابلة للحياة بنسبة >90٪ ، مع إجمالي عدد الخلايا بنسبة >70٪ من رقم خلية البداية.......

Discussion

يسمح تحرير الجينوم باستخدام مجمعات Cas9-sgRNA المكهربة بالتعطيل الفعال لوظيفة الجينات في BMDMs. تختلف كفاءة التحرير حسب التسلسل المستهدف والجين. عادة ، يتم فحص أربعة إلى خمسة sgRNAs بشكل عام لتحديد واحد نشط للغاية. تتمتع بعض المواضع بكفاءة تحرير أقل ، ويرجع ذلك على الأرجح إلى بنية الكروماتين. في هذه.......

Disclosures

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

تم تمويل هذا العمل من خلال منحة المعاهد الوطنية للصحة 5R01AI144149. تم إنشاء الأشكال التخطيطية باستخدام BioRender.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
3T3-MCSF Cell LineGift from Russell Vancenot applicable
Alt-R Cas9 Electroporation EnhancerIDT1075915
Ampure XP Reagent BeadsBeckman CoulterA63880
Calf intestinal alkaline phosphataseNEBM0525S
DNaseNEBM0303S
DPBS +Ca/Mg (0.9mM CaCl2 and 0.5mM MgCl2)Thermo Fisher14040-133
DPBS -Ca/MgThermo Fisher14190-144
ExoINEBM0293S
Fetal Calf Serum (FCS)Corning35-015-CV
Herculase DNA polymerase & bufferAgilent600677
HiScribe T7 High Yield RNA Synthesis KitNEBE2040S
LoBind conical tubes 15 mLEppendorf30122216
LoBind Eppendorf tubes 2 mLEppendorf22431102
NEBuffer r2.1NEBB6002S
Neon Transfection SystemThermo FisherMPK5000, MPP100, MPS100
Neon Transfection System 10 uL TipsThermo FisherMPK1025 or MPK1096
PBS + 1mM EDTALonzaBE02017F
Proteinase KThermo FisherEO0491
rCutSmart Buffer for ExoINEBB6004S
RibolockThermo FisherEO0384
RNA loading dyeNEBB0363S
RNeasy Mini KitQiagen74104
S. pyogenes Cas9-NLSUniversity of California Macro Labnot applicableAvailable to non-UC investigators through  https://qb3.berkeley.edu
S. pyogenes Cas9-NLS, modified 3rd GenerationIDT1081059
SAPNEBM0371S

References

  1. Murray, P. J., Wynn, T. A. Protective and pathogenic functions of macrophage subsets. Nature Reviews Immunology. 11 (11), 723-737 (2011).
  2. Wynn, T. A., Chawla, A., Pollard, J. W. Macrophage biology in development, homeostasis, and disea....

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE 198 Cas9 sgRNA CRISPR Cas9 indels sgRNA RNPs

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved