需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。
该协议描述了使用 体外 组装并通过电穿孔递送的Cas9-sgRNA核糖核蛋白复合物在小鼠骨髓来源的巨噬细胞中进行基因组编辑的过程。
来自小鼠的骨髓来源的巨噬细胞(BMDM)是研究组织巨噬细胞复杂生物学的关键工具。作为原代细胞,它们比永生化的巨噬细胞系更接近 于体内 巨噬细胞的生理学模型,并且可以从已经携带特定遗传变化的小鼠中提取。然而,破坏BMDM的基因功能在技术上仍然具有挑战性。在这里,我们提供了一种在BMDM中进行高效CRISPR / Cas9基因组编辑的协议,该协议允许引入小的插入和缺失(插入缺失),从而导致破坏基因功能的移码突变。该方案描述了如何合成单向导RNA(sgRNA-Cas9)并形成纯化的sgRNA-Cas9核糖核蛋白复合物(RNP),这些复合物可以通过电穿孔递送。它还提供了一种使用常规 Sanger 测序和免费提供的在线分析程序来监控编辑效率的有效方法。该方案可在1周内进行,不需要质粒构建;它通常会导致 85% 到 95% 的编辑效率。
巨噬细胞是先天免疫细胞,在组织修复和免疫中起关键作用 1,2。永生化的巨噬细胞系,如小鼠 RAW 264.7 细胞或人 THP-1 细胞,具有多种有益特性,包括通过递送 RNA 干扰或 CRISPR/Cas9 载体来促进生长和易于基因破坏 3,4。然而,致癌转化会显着改变它们的生理机能,这导致某些通路的异常激活和其他通路的沉默反应 5,6。原代骨髓来源的巨噬细胞 (BMDM) 更接近地概括了体内巨噬细胞的生理学,但由于这些原代免疫细胞中的质粒转染和病毒转导效率低,因此在遗传操作方面仍然具有挑战性 7,8。因此,需要更有效的方法来破坏基因功能。
CRISPR/Cas9 基因组编辑是跨一系列生物系统(包括哺乳动物细胞9、10、
1. sgRNA设计
注意:此步骤描述了靶序列的选择和sgRNA的设计。设计位于第一个大编码外显子中的指南是有帮助的,这样任何翻译的蛋白质在开放阅读框的早期就会被破坏。选择位于同一外显子内的靶序列也很有帮助,因为这将简化编辑效率的分析(步骤6)。该协议提供的基因组编辑示例使用靶向 Src 基因和 Cblb 基因的第一个外显子以及小鼠基因组的非编码 Rosa26 位点的sgRNA。
2. sgRNA合成
注意:此步骤描述了如何使用PCR合成sgRNA以生成 用于体....
IVT模板是127 bp PCR产物(图1B)。全长 IVT 产物是 98 nt RNA,其迁移类似于 70 bp 双链 DNA 片段(图 1C)。
电穿孔后,细胞的存活率应为 >90%,总细胞计数为起始细胞数的 >70%。由此产生的突变细胞池应该具有一组不同的插入缺失,从Cas9切割位点附近开始。通过PCR和Sanger测序对靶基因的分析应显示Cas9切割位点下游每个位置的多个核苷酸?.......
使用电穿孔Cas9-sgRNA复合物进行基因组编辑可以有效破坏BMDM中的基因功能。编辑效率因靶序列和基因而异。通常,通常会筛选四到五个 sgRNA,以鉴定出一种高活性的 sgRNA。一些基因座的编辑效率较低,很可能是由于染色质结构。在这些情况下,可以进行一些修改以提高编辑效率。将两个活性 sgRNA 共同递送至同一外显子可改善某些基因的编辑。然而,当两个向导共转染时,我们观察到 TIDE 可能会失?.......
作者没有什么可透露的。
这项工作由美国国立卫生研究院资助5R01AI144149资助。示意图是使用 BioRender 创建的。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
3T3-MCSF Cell Line | Gift from Russell Vance | not applicable | |
Alt-R Cas9 Electroporation Enhancer | IDT | 1075915 | |
Ampure XP Reagent Beads | Beckman Coulter | A63880 | |
Calf intestinal alkaline phosphatase | NEB | M0525S | |
DNase | NEB | M0303S | |
DPBS +Ca/Mg (0.9mM CaCl2 and 0.5mM MgCl2) | Thermo Fisher | 14040-133 | |
DPBS -Ca/Mg | Thermo Fisher | 14190-144 | |
ExoI | NEB | M0293S | |
Fetal Calf Serum (FCS) | Corning | 35-015-CV | |
Herculase DNA polymerase & buffer | Agilent | 600677 | |
HiScribe T7 High Yield RNA Synthesis Kit | NEB | E2040S | |
LoBind conical tubes 15 mL | Eppendorf | 30122216 | |
LoBind Eppendorf tubes 2 mL | Eppendorf | 22431102 | |
NEBuffer r2.1 | NEB | B6002S | |
Neon Transfection System | Thermo Fisher | MPK5000, MPP100, MPS100 | |
Neon Transfection System 10 uL Tips | Thermo Fisher | MPK1025 or MPK1096 | |
PBS + 1mM EDTA | Lonza | BE02017F | |
Proteinase K | Thermo Fisher | EO0491 | |
rCutSmart Buffer for ExoI | NEB | B6004S | |
Ribolock | Thermo Fisher | EO0384 | |
RNA loading dye | NEB | B0363S | |
RNeasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
S. pyogenes Cas9-NLS | University of California Macro Lab | not applicable | Available to non-UC investigators through https://qb3.berkeley.edu |
S. pyogenes Cas9-NLS, modified 3rd Generation | IDT | 1081059 | |
SAP | NEB | M0371S |
请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形
请求许可This article has been published
Video Coming Soon
关于 JoVE
版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。