Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.
Bu protokol, in vitro olarak bir araya getirilen ve elektroporasyon yoluyla iletilen Cas9-sgRNA ribonükleoprotein kompleksleri kullanılarak fare kemik iliği türevi makrofajlarda genom düzenleme prosedürünü açıklar.
Farelerden elde edilen kemik iliği kaynaklı makrofajlar (BMDM'ler), doku makrofajlarının karmaşık biyolojisini incelemek için önemli bir araçtır. Birincil hücreler olarak, makrofajların fizyolojisini in vivo olarak ölümsüzleştirilmiş makrofaj hücre dizilerinden daha yakından modellerler ve halihazırda tanımlanmış genetik değişiklikleri taşıyan farelerden türetilebilirler. Bununla birlikte, BMDM'lerde gen fonksiyonunu bozmak teknik olarak zor olmaya devam etmektedir. Burada, BMDM'lerde verimli CRISPR/Cas9 genom düzenlemesi için bir protokol sunuyoruz, bu da gen fonksiyonunu bozan çerçeve kayması mutasyonlarıyla sonuçlanan küçük eklemelerin ve delesyonların (indels) kullanılmasına izin veriyor. Protokol, tek kılavuzlu RNA'ların (sgRNA-Cas9) nasıl sentezleneceğini ve elektroporasyon yoluyla verilebilen saflaştırılmış sgRNA-Cas9 ribonükleoprotein komplekslerinin (RNP'ler) nasıl oluşturulacağını açıklar. Ayrıca, rutin Sanger dizileme ve ücretsiz olarak kullanılabilen bir çevrimiçi analiz programı kullanarak düzenleme verimliliğini izlemek için etkili bir yöntem sağlar. Protokol 1 hafta içinde yapılabilir ve plazmit yapımı gerektirmez; Genellikle %85 ila %95 düzenleme verimliliği sağlar.
Makrofajlar, doku onarımı ve bağışıklıktakritik rol oynayan doğuştan gelen bağışıklık hücreleridir 1,2. Fare RAW 264.7 hücreleri veya insan THP-1 hücreleri gibi ölümsüzleştirilmiş makrofaj hücre hatları, RNA girişimi veya CRISPR/Cas9 3,4 için vektörler sağlayarak sağlam büyüme ve gen bozulması kolaylığı dahil olmak üzere çeşitli faydalı özelliklere sahiptir. Bununla birlikte, onkojenik transformasyon fizyolojilerini önemli ölçüde değiştirir, bu da bazı yolların anormal aktivasyonuna ve diğerlerinin sessiz tepkilerine neden olur ....
1. sgRNA tasarımı
NOT: Bu adım, hedef dizilerin seçimini ve sgRNA'ların tasarımını açıklar. İlk büyük kodlama ekzonunda bulunan kılavuzları tasarlamak yararlıdır, böylece çevrilmiş herhangi bir protein açık okuma çerçevesinin başlarında bozulur. Aynı ekzon içinde yer alan hedef dizileri seçmek de yararlıdır, çünkü bu, düzenleme verimliliğinin analizini kolaylaştıracaktır (6. adım). Bu protokolle sağlanan genom düzenleme örnekleri, Src geninin ve Cblb geninin ilk eksonunu ve ayrıca fare genomunun kodlamayan Rosa26 lokusunu hedefleyen sgRNA'ları kullandı.
IVT şablonu 127 bp'lik bir PCR ürünüdür (Şekil 1B). Tam uzunlukta IVT ürünü, 70 bp çift sarmallı DNA fragmanına benzer şekilde göç eden 98 nt'lik bir RNA'dır (Şekil 1C).
Elektroporasyondan sonra, hücreler %>90 canlı olmalı ve toplam hücre sayısı başlangıç hücre sayısının %>70'i olmalıdır. Ortaya çıkan mutant hücre havuzu, Cas9 bölünme bölgesinin yakınından başlayarak çeşitli bir indel setine .......
Elektroporasyonlu Cas9-sgRNA kompleksleri kullanılarak genom düzenleme, BMDM'lerde gen fonksiyonunun etkili bir şekilde bozulmasına izin verir. Düzenleme verimliliği, hedef diziye ve gene göre değişir. Tipik olarak, dört ila beş sgRNA, oldukça aktif olanı belirlemek için genellikle taranır. Bazı lokuslar, büyük olasılıkla kromatin yapısı nedeniyle daha düşük düzenleme verimliliğine sahiptir. Bu durumlarda, düzenleme verimliliğini artırmak için çeşitli değişiklikler yapılabilir. İki ak.......
Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.
Bu çalışma NIH hibesi 5R01AI144149 tarafından finanse edilmiştir. Şematik şekiller BioRender ile oluşturulmuştur.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
3T3-MCSF Cell Line | Gift from Russell Vance | not applicable | |
Alt-R Cas9 Electroporation Enhancer | IDT | 1075915 | |
Ampure XP Reagent Beads | Beckman Coulter | A63880 | |
Calf intestinal alkaline phosphatase | NEB | M0525S | |
DNase | NEB | M0303S | |
DPBS +Ca/Mg (0.9mM CaCl2 and 0.5mM MgCl2) | Thermo Fisher | 14040-133 | |
DPBS -Ca/Mg | Thermo Fisher | 14190-144 | |
ExoI | NEB | M0293S | |
Fetal Calf Serum (FCS) | Corning | 35-015-CV | |
Herculase DNA polymerase & buffer | Agilent | 600677 | |
HiScribe T7 High Yield RNA Synthesis Kit | NEB | E2040S | |
LoBind conical tubes 15 mL | Eppendorf | 30122216 | |
LoBind Eppendorf tubes 2 mL | Eppendorf | 22431102 | |
NEBuffer r2.1 | NEB | B6002S | |
Neon Transfection System | Thermo Fisher | MPK5000, MPP100, MPS100 | |
Neon Transfection System 10 uL Tips | Thermo Fisher | MPK1025 or MPK1096 | |
PBS + 1mM EDTA | Lonza | BE02017F | |
Proteinase K | Thermo Fisher | EO0491 | |
rCutSmart Buffer for ExoI | NEB | B6004S | |
Ribolock | Thermo Fisher | EO0384 | |
RNA loading dye | NEB | B0363S | |
RNeasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
S. pyogenes Cas9-NLS | University of California Macro Lab | not applicable | Available to non-UC investigators through https://qb3.berkeley.edu |
S. pyogenes Cas9-NLS, modified 3rd Generation | IDT | 1081059 | |
SAP | NEB | M0371S |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır