JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هذا الفيديو يوضح كل جبل المناعية ، وهي الطريقة التي نمط التعبير المكاني والزماني للمستضد يمكن تصور افراخ الدجاج في الشباب. وقدم أصلا من قبل هذه الطريقة ودود جين Jessell توم.

Abstract

الجنين الفرخ هو أداة قيمة في دراسة التطور الجنيني المبكر. شفافيته ، وسهولة الوصول وسهولة التلاعب ، وجعلها أداة مثالية لدراسة التعبير الأضداد في تطوير الدماغ ، والأنبوب العصبي والجسيدة. هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في تلطيخ الأضداد كلها يشن باستخدام الأجسام المضادة الثانوية HRP مترافق ؛ أولا ، يتم تشريح الجنين من بويضة والثابتة في بارافورمالدهيد. الثاني ، هو البيروكسيداز الذاتية المعطل ، ثم يتعرض الجنين إلى جسم الابتدائي. يغسل بعد عدة ، وحضنت الجنين مع الأجسام المضادة الثانوية مترافق لHRP. وكشف النشاط البيروكسيداز باستخدام التفاعل مع الركيزة diaminobenzidine. أخيرا ، يتم إصلاح الجنين ومعالجتها للتصوير الفوتوغرافي وsectioning. ميزة هذه الطريقة على استخدام الاجسام المضادة فلوري هو أنه يمكن معالجة الأجنة لsectioning الشمع ، مما يتيح للدراسة المواقع مستضد في المقطع العرضي. وقدم أصلا من قبل هذا الأسلوب دود جين وتوم Jessell

Protocol

أولا تخطيطي لمحة عامة :

هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في جبل المناعية كلها في جنين الفرخ. الأول ، هو ثابت في جنين PFA [IHC1]. إذن ، هو مروي الذاتية النشاط البيروكسيداز [IHC2]. ومن ثم حضنت الجنين في جسم الأولية [IHC3]. يغسل بعد عدة ، وحضنت في جسم الجنين الثانوية [IHC4] ؛ يكشف رد فعل اللون باستخدام DAB [IHC5] والضد يظهر البرتقالي تلطيخ [IHC6].

figure-protocol-549

الجزء 1 : تحديد الأجنة

  1. لأداء كامل المناعية جبل على الاجنة فرخ ، أولا فتح بيضة من خلال الاستفادة من قذيفة بالملقط وإزالة قطعة من قذيفة.
  2. إزالة ألبومين سميك بالملقط ، والميل كيس المح مع ملقط الخشنة بحيث الجنين يواجه صعودا.
  3. باستخدام مقص غرامة ، وقطع مربعة من الكيس المحي حول الجنين. إزالة الجنين من صفار البيض مع ملعقة ، والمكان في صحن يحتوي على برنامج تلفزيوني.
  4. تشريح تحت المجهر ، وإزالة بعناية الأغشية وصفار البيض ونقل الجنين الى طبق الطازجة التي تحتوي على برنامج تلفزيوني.
  5. دبوس الجنين إلى أسفل مع ملقط ودبابيس الحشرات ، ونضح في برنامج تلفزيوني. استبدال هذا PFA مع 4 ٪ في برنامج تلفزيوني ، وتسمح للجنين لإصلاح 1H في RT.

الجزء 2 : التحضير للأجنة خطوة الأضداد

  1. لتقليل احتمال التلوث الميكروبي ، واستخدام DDH 2 O في جميع الخطوات التالية.
  2. بعد إصلاح الجنين ، نضح الحل تثبيتي ، والتصرف بشكل صحيح مع النفايات الكيميائية. ملء الطبق مع برنامج تلفزيوني.
  3. المقبل ، وذلك باستخدام سكين microdissection ، قطع مربعة حول الجنين لإزالة الأغشية خارج الجنين. إزالة المسامير الحشرة بالملقط.
  4. بعد إزالة المسامير ، واستخدام كليلة نهاية ماصة باستور لنقل الجنين الى قارورة تحتوي على التلألؤ مع PBT (PBS الرقم الهيدروجيني 7.4 ، و 0.5 ٪ X تريتون).
  5. غسل الجنين مع PBT ، 3 مرات لمدة 10 دقيقة لكل منهما.
  6. إزالة PBT من القارورة التلألؤ ، واستبدالها مع PBTx تحتوي على 0.3 ٪ H 2 O 2 من أجل تعطيل إمكانات البيروكسيداز الذاتية.
  7. احتضان لمدة 2 ساعة على RT على nutator.
  8. غسل الجنين مع PBT ، 3 مرات لمدة 10 دقيقة لكل منهما ، ثم 3 مرات لمدة 30 دقيقة لكل منهما.

الجزء 3 : الحضانة جسم

  1. وصمة عار على الجنين مع الأضداد ، تبدأ من خلال غسل الجنين لمدة ساعة واحدة في المخزن حجب أو 1 ٪ BSA / خ ع 1 ٪ / PBT (نستخدم NGS لأن رفع الأجسام المضادة الثانوية في الماعز). على احتضان nutator لمدة ساعة في RT.
  2. تمييع الضد الابتدائية في 01:01 العازلة حظر ، واحتضان الجنين في هذا الحل لمدة 2 يوما في 4 درجات مئوية على nutator. عامل أساسي تخفيف الضد يعتمد على اختيار الأضداد الابتدائي. هنا ، علينا استخدام الضد من البنك التنموي الدراسات ورم هجين ، وهو على النحو المنصوص عليه supernatent. نحن تمييع ذلك في عرقلة 01:01 العازلة.
  3. المقبل ، تنفيذ 3 10 دقيقة يغسل في PBT ، تليها يغسل 1 ساعة 3 في PBT.
  4. بعد الغسيل ، وتمييع 1:2500 الضد الثانوية في حجب العازلة (في هذه الحالة ، مترافق البيروكسيداز الماعز المضادة للمفتش الماوس (H + L) ، واحتضان الجنين في هذا الحل O / N عند 4 درجات مئوية على nutator.
  5. تنفيذ 3 10 دقيقة يغسل في PBT ، تليها يغسل 1 ساعة 3 في PBT.

الجزء 3 : رد فعل اللون

  1. لتطوير تفاعل لون الجنين الملون ، نفذ أول 2 20 دقيقة يغسل العازلة في تريس (تريس 100mM حمض الهيدروكلوريك ، ودرجة الحموضة 7.4).
  2. وفي الوقت نفسه بحل DAB الركيزة (3،3 '- diaminobenzidine tetrahydrochloride) في تريس العازلة في 500μg/ml تحت غطاء الدخان ؛ ابقاء الحل في الظلام ، وعلى الثلج.
  3. إزالة مشاركة غسل تريس العازلة من الجنين قارورة تحتوي على واستبدالها مع الحل DAB 5ml من الخطوة 3.2. نضع في الظلام لمدة 20 يوم nutator مليون سهم. التخلص من غيض إيبندورف في دلو يحتوي على محلول التبييض 10 ٪ من أجل تطهير DAB.
  4. وفي الوقت نفسه يعد مخزونا 0.3 ٪ H 2 O 2 درهم في 2 O على الجليد.
  5. إضافة 50μl الأسهم H 2 O 2 إلى قارورة تحتوي على الأجنة في DAB. نضع في الظلام. بعد 1-2 دقائق ، ورصد ردود الفعل تحت المجهر.

الجزء 4 : معالجة الأجنة والأنسجة للتصوير الفوتوغرافي

  1. رد الفعل عند اكتمال اللون ، والتخلص من DAB في دلو التبييض. استبدال مع 5 مل من ماء الصنبور.
  2. تنفيذ 2 10 دقيقة يغسل في برنامج تلفزيوني.
  3. لعملية التصوير وsectioning الشمع ، يذوى في سلسلة من الايثانول (25 ٪ ، 50 ٪ ، 75 ٪ و 100 ٪) لمدة 10 دقيقة لكل منهما.
  4. محل الايثانول مع 0،5-1 مل زيت خشب الأرز (وهذا سيجعل شفافة الجنين). عملية التصوير في زيت خشب الأرز.
  5. بعد التصوير ، والعودة إلى جنين واستبدال قنينة زيت خشب الأرز مع الإيثانول بنسبة 100 ٪. كرر الخطوة الايثانول.
  6. استبدال هthanol مع 5 ٪ FCF الأخضر السريع في الإيثانول بنسبة 100 ٪ ، واحتضان لمدة 3 دقائق (هذه الخطوة سوف تجعل مرئيا لأجنة الأنسجة). استبدال حل سريع FCF الأخضر مع الإيثانول بنسبة 100 ٪ وعملية لعلم الأنسجة.

ممثل النتائج :

figure-protocol-6626

في الأمثلة الموضحة أدناه ، يتم تشريح الأجنة في المراحل سمو 10 (أ) و 12 (ب) و 11 (C) ؛ الأجنة إظهار التعبير عن PAX 7 في crestas العصبية الناشئة وكذلك في somites والأنبوب العصبي (A ، B) ؛ في (C) ، هو المسمى notochord مع 15.3B9 (غير - 1) (الأجسام المضادة التي يقدمها البنك التنموي الدراسات ورم هجين).

Discussion

هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في أداء كامل للأجسام المضادة في جبل تلطيخ افراخ الدجاج الشباب. ويستخدم هذا البروتوكول أساسا لتوصيف المكاني والزماني للرواية في الأضداد 2،3 الفرخ ، فضلا عن استخدام علامات مستضدي المعروفة لتحديد التشوهات الجنينية التالية اهانة...

Acknowledgements

تم الحصول على أجسام مضادة وحيدة النسيلة (15.3B9 ، PAX7) التي طورتها (دود ، TM Jessell وكواكامي ألف) من البنك التنموي ورم هجين الدراسات المتقدمة تحت رعاية معاهد الصحة القومية والحفاظ عليها من جامعة أيوا ، قسم العلوم البيولوجية ، ولاية ايوا. موانئ دبي هي المستفيدة من جائزة روث 1F32 - 01A1 كيرشتاين DA021977 من المعهد الوطني لتعاطي المخدرات. وأيد هذا العمل من قبل مؤسسة مارغريت Alkek M. إلى RHF.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
EggsCharles River LaboratoriesPremium FertileFertilized, HH4 (16 hr)
StereomicroscopeMicroscopeLeica MicrosystemsMZ9.5 or similar
Marsh Automatic IncubatorOtherLyonRX
Curved Forceps (1)ToolElectron Microscopy Sciences72991-4C
Forceps (2)ToolFine Science Tools11002-13
Fine scissorsToolFine Science Tools14161-10
Plastic dishesToolFalcon BD353001
Rubber BulbToolElectron Microscopy Sciences70980
Pasteur Capillary PipetteToolElectron Microscopy Sciences70950-12round edge under flame
Microdissecting knifeToolFine Science Tools10056-12Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and BaseReagentDow Corning0001986475Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFAReagentElectron Microscopy Sciences15710
30% H2O2ReagentSigma-AldrichH1009
BSAReagentSigma-AldrichA3803
NGSReagentJackson ImmunoResearch005-000-121
Primary AntibodiesReagentDevelopmental Studies Hybridoma Bank4G11, 15.3B9, PAX7For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) ReagentJackson ImmunoResearch115-035-003
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochlorideReagentPierce, Thermo Scientific34001Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oilReagentSigma-AldrichW522503
Fast green FCFReagentSigma-AldrichF7252
Minuten pins 0.2mm diamFine Science Tools26002-20

References

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen's node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen's node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

24

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved