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Method Article
Este video muestra todo inmunohistoquímica montaje, un método por el cual el patrón de expresión espacial y temporal de un antígeno puede ser visualizado en embriones de pollo joven. Este método fue introducido originalmente por Jane Dodd y Tom Jessell.
El embrión de pollo es una herramienta valiosa en el estudio del desarrollo embrionario temprano. Su transparencia, accesibilidad y facilidad de manipulación, lo convierten en una herramienta ideal para estudiar la expresión de anticuerpos en el desarrollo del cerebro, del tubo neural y somitas. Este video muestra las diferentes etapas de la tinción de anticuerpos todo el montaje con HRP secundaria anticuerpos conjugados, En primer lugar, el embrión se diseca del huevo y se fijaron en paraformaldehído. Peroxidasa en segundo lugar, endógena se inactiva, el embrión se expone a anticuerpo primario. Después de varios lavados, el embrión se incuba con el anticuerpo secundario conjugado con HRP. Actividad de la peroxidasa se reveló mediante la reacción con el sustrato diaminobencidina. Finalmente, el embrión se fija y se procesaron para la fotografía y el corte. La ventaja de este método sobre el uso de anticuerpos fluorescentes es que los embriones pueden ser procesados por el corte de cera, lo que permite el estudio de los sitios de antígeno en la sección transversal. Este método fue introducido originalmente por Jane Dodd y Tom Jessell
I. Esquema general:
Este video muestra las diferentes etapas de inmunohistoquímica montar todo en embrión de pollo. En primer lugar, el embrión se fija en PFA [IHC1]. Entonces, la actividad peroxidasa endógena se apaga [IHC2]. El embrión se incuba en la primaria de anticuerpos [IHC3]. Después de varios lavados, el embrión se incuba en la secundaria de anticuerpos [IHC4], la reacción de color se revela con DAB [IHC5] y la tinción de anticuerpos parece naranja [IHC6].
Parte 1: La fijación de los embriones
Parte 2: Preparación de embriones para el paso de anticuerpos
Parte 3: incubación del anticuerpo
Parte 3: La reacción de color
Parte 4: procesamiento de embriones para la fotografía y la histología
Los resultados representativos:
En los ejemplos mostrados a continuación, los embriones son disecados en las etapas HH 10 (A), 12 (B) y 11 (C), los embriones muestran una expresión de PAX 7 en las economías emergentes Crestas neurales así como en los somitas y el tubo neural (A, B); En (C), notocorda se etiqueta con 15.3B9 (no-1) (anticuerpos proporcionados por el Banco de Desarrollo de Estudios hibridoma).
Este video muestra los diferentes pasos en la realización de todo el montaje la tinción de anticuerpos en embriones de pollo joven. Este protocolo se utiliza esencialmente para la caracterización espacial y temporal de nuevos anticuerpos en el pollito 2,3, así como para el uso de los marcadores antigénicos conocidos para determinar malformación embrionaria después de insultar 4.
Los anticuerpos monoclonales (15.3B9, PAX7) desarrollado por (J. Dodd, TM Jessell y Kawakami A.) se obtuvieron de los Estudios del Desarrollo del Banco hibridoma desarrollado bajo los auspicios del NICHD y mantenido por la Universidad de Iowa, Departamento de Ciencias Biológicas , Iowa. DP es receptor de Ruth Premio Kirschstein DA021977 1F32-01A1 del Instituto Nacional sobre Abuso de Drogas. Este trabajo fue apoyado por la Fundación Margaret M. Alkek a RHF.
Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Eggs | Charles River Laboratories | Premium Fertile | Fertilized, HH4 (16 hr) | |
Stereomicroscope | Microscope | Leica Microsystems | MZ9.5 or similar | |
Marsh Automatic Incubator | Other | Lyon | RX | |
Curved Forceps (1) | Tool | Electron Microscopy Sciences | 72991-4C | |
Forceps (2) | Tool | Fine Science Tools | 11002-13 | |
Fine scissors | Tool | Fine Science Tools | 14161-10 | |
Plastic dishes | Tool | Falcon BD | 353001 | |
Rubber Bulb | Tool | Electron Microscopy Sciences | 70980 | |
Pasteur Capillary Pipette | Tool | Electron Microscopy Sciences | 70950-12 | round edge under flame |
Microdissecting knife | Tool | Fine Science Tools | 10056-12 | Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation |
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base | Reagent | Dow Corning | 0001986475 | Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C |
16% PFA | Reagent | Electron Microscopy Sciences | 15710 | |
30% H2O2 | Reagent | Sigma-Aldrich | H1009 | |
BSA | Reagent | Sigma-Aldrich | A3803 | |
NGS | Reagent | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | |
Primary Antibodies | Reagent | Developmental Studies Hybridoma Bank | 4G11, 15.3B9, PAX7 | For these antibodies, investgators used mouse donnors |
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) | Reagent | Jackson ImmunoResearch | 115-035-003 | |
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride | Reagent | Pierce, Thermo Scientific | 34001 | Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use. |
Cedar wood oil | Reagent | Sigma-Aldrich | W522503 | |
Fast green FCF | Reagent | Sigma-Aldrich | F7252 | |
Minuten pins 0.2mm diam | Fine Science Tools | 26002-20 |
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