وأيد المشروع التي وصفها أرقام المنح P01 AI055637 وAI057156 U54 من NIAID / المعاهد الوطنية للصحة. محتوياته هي الجهة الوحيدة المسؤولة عن المؤلفين ولا تمثل بالضرورة وجهة النظر الرسمية للمكتب البرامج RCE ، NIAID ، أو المعاهد الوطنية للصحة.

اليوم 1 : F. التولارية وحة التلقيح <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لوحة الثقافات الأسهم المجمدة للF. التولارية على آغار مولر هينتون تستكمل مع 2.5 ٪ (المجلد / المجلد) المانحة العجل المصل ، 2 ٪ (المجلد / المجلد) IsoVitaleX ، 0.1 ٪ (وزن / المجلد) الجلوكوز ، و0.025 ٪ (وزن / المجلد) بيروفوسفات الحديد. تنمو F. التولارية عند 37 درجة مئوية مع نسبة 5 ٪ CO 2 لحوالي 24 ساعة. </li></ol> اليوم 2 : F. التولارية تلقيح السائل وسائل الإعلام <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد وتعقيم 1 لتر من المعدل المتوسط ​​الموجبة مولر هينتون (التي تحتوي على كلوريد الكالسيوم ثنائي الهيدرات 1،23 ملم و 1.03 كلوريد المغنيسيوم hexahydrate ملم). عندما تبرد إلى 37 درجة مئوية ، وكذلك الملحق مع الجلوكوز المتوسطة 0.1 ٪ (وزن / المجلد) ، 0.025 ٪ (وزن / المجلد) بيروفوسفات الحديد ، و 2 ٪ (المجلد / المجلد) IsoVitaleX. فلتر تعقيم (0.22 μ) في المتوسط ​​500 مل aliquots اثنين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة 12 مل من المتوسط ​​مولر هينتون استكملت ونقل في أنبوب عقيم فالكون 50 مل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام حلقة عقيمة تلقيح 10 ميكرولتر ، كشط loopful كبيرة من واو نمو التولارية من لوحات أجار (من يوم 1) ونقل البكتيريا الى 12 مل من مولر هينتون المتوسطة (راجع الخطوة 2). مرات متعددة إلى حل ماصة تفكك كتل وإعداد تعليق البكتيرية متجانسة. لا الدوامة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام ماصة معقمة وتلقيح كل سفينة 500 مل مع 5 مل من تعليق بكتيرية من الخطوة 3. تنمو الثقافات مرق عند 37 درجة مئوية لمدة 14 إلى 18 ساعة مع الهز لطيف (190-200 دورة في الدقيقة على نيو برونزويك إنوفا شاكر سلسلة 2300). </li></ol> يوم 3 : Spheroplasting ، تحلل التناضحي ، والطرد المركزي السكروز التدرج الكثافة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحصول F. التولارية الثقافات من الحاضنة تهتز وإزالة قسامة 1 مل من كل 500 مل الثقافة للتحقق من كثافة ضوئية منها. لقد تم العثور على أفضل النتائج واستخلاص غشاء العزل عند استخدام F. التولارية الخلايا في مرحلة مبكرة من النمو لوغاريتمي ، والذي يرتبط مع OD 600 بين 0،2-0،4 (~ 10 يوليو -- 10 أغسطس CFU / مل). سوف الثقافات مع 600 أقل من 0.2 OD لن ترضخ كمية كافية من المواد غشاء مجموع التدرجات السكروز اللاحقة. على العكس ، تم العثور على الثقافات مع أكبر 600 OD من 0.4 (تقترب من مرحلة ثابتة) لانتاج مختلط غشاء اندماج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أجهزة الطرد المركزي في الثقافات ز س 7500 لمدة 30 دقيقة عند 15 درجة مئوية لجمع الخلايا. نوصي الطرد المركزي للثقافات في أربع زجاجات 250 مل الطرد المركزي ، لأنه يسهل لاحقا بيليه التعليق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة بعناية طاف سائل الإعلام من كل زجاجة الطرد المركزي والاستفادة بقوة الزجاجات على مادة ماصة لإزالة الزائدة المتوسطة النمو. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في غضون 10 دقيقة بعد الانتهاء من الطرد المركزي ، وتعليق كل بيليه الجرثومي في 8.75 مل من السكروز 0.75 م (في تريس 5 مم ، ودرجة الحموضة 7.5). ينبغي وقف جميع الكريات four البكتيرية ونقل (35 مل من مجموع تعليق البكتيرية) إلى قارورة 250 مل العقيمة (مع stirbar الصغيرة) في غضون 10 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بينما خلط بلطف تعليق على الخلية stirplate ، إضافة ببطء 70 مل (2 مجلدات) EDTA ثنائي الصوديوم من 10 ملم (في تريس 5 مم ، ودرجة الحموضة 7.8) على مدى 10 دقيقة. إضافة محلول EDTA مع غيض من ماصة أسفل الخلية مستوى التعليق لتجنب تركيزات مرتفعة من EDTA المحلية. ينبغي أن تكون متغايرة stirbar بمعدل كاف لمزيج دقيق تعليق الخلية ولكن ليس بسرعة كافية للتسبب في مزبد أو تشكيل الفقاعة. بعد تمت إضافة محلول EDTA ، احتضان الحل لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد حضانة و 30 دقيقة ، ببطء إضافة 11 مل (1 / 10 حجم عشر) من حل الليزوزيم 2 ملغ / مل إلى تركيز النهائي من 200 ميكروغرام / مل. الاستمرار في خلط تعليق الخلية خلال إضافة محلول الليزوزيم. كما أشير أعلاه ، إضافة الليزوزيم حل مع طرف دون ماصة السائل مستوى الخلية تعليق لتجنب تركيزات مرتفعة من الليزوزيم المحلية. يمكن إعداد المخزون الليزوزيم الحلول (2 ملغ / مل) في استخدام المفرد aliquots وتخزينها على -20 درجة مئوية لمدة ثلاثة إلى أربعة أشهر. احتضان الحل الناتج لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أثناء الحضانة و 30 دقيقة ، وإعداد قارورة معقمة 1L مع stirbar الصغيرة و 530 مل من درجة حرارة الغرفة Cellgro الجزيئية الصف O 2 درهم (4.5 مجلدات). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ليز Osmotically تعليق خلية (من الخطوة 6) عن طريق تخفيف بطيء (معدل تدفق ما يقرب من 11 مل / دقيقة) في 530 مل من الصف الجزيئية O 2 درهم (من الخطوة 7) على مدى من 10 الى 15 دقيقة مع خلط لطيف. بسبب حجم أكبر الحل في هذه الخطوة ، وزيادة السرعة لضمان خلط stirbar المناسبة. ينبغي أن تكون متغايرة stirbar بمعدل كاف لتفريق بدقة واضاف التعليق الخلية مرة واحدة إلى O 2 درهم ولكن ليس بسرعة كافية لتؤدي إلى تشكيل مزبد أو الفقاعة. إضافة تعليق الخلية مع غيض من ماصة يستريح على الجزء السفلي من القارورة ، المتاخمة للstirbar ، لتسهيل التخفيف الموحد للسلل الايقاف. لقد وجدنا أن 25 مل ماصات تعمل على أفضل وجه خلال هذه الخطوة. ترصد بدقة عملية تخفيف المقاطعة ومعدل التدفق عند الضرورة لتفريق التراكمات المحلية من الخلايا ، كتل الخلية ، والخلية الخصلات. احتضان الحل الناتج لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. علما بأن هذه الخطوة على ما يبدو واحدة من أصعب والحاسمة لتحقيق النجاح الشامل للتجربة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد حضانة و 30 دقيقة ، ونقل 40 aliquots مل من محلول تحلل التناضحي في 50 مل أنابيب مخروطية وأجهزة الطرد المركزي في 7500 x ج لمدة 30 دقيقة عند 10 درجة مئوية لإزالة خلايا سليمة والحطام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الطرد المركزي ، وإزالة بعناية 27-30 مل من طاف من كل أنبوب مخروطي الشكل وsupernatants تجمع في قارورة معقمة a 1L </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل 25 مل من طاف المجمعة ، كل ، نابذة فائقة السرعة في أنابيب الطرد المركزي في 16 و ز خ 200000 (44400 دورة في الدقيقة في F50L - 8x39 FiberLite الدوار نابذة فائقة السرعة) لمدة 2 ساعة عند 4 درجات مئوية. علما أن كل الدوار يحمل 8 الأنابيب ، وحتى هذه الخطوة يتطلب اثنين الدوارات وطرد مركزي اثنين. بدلا من ذلك ، ينبغي أن تعقد المجموعة الثانية من 8 أنابيب في 4 درجات مئوية حتى طرد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في غضون 10 دقيقة من الانتهاء من تشغيل نابذة فائقة السرعة ، وإعداد تعديل غشاء العازلة إعادة تعليق. نقل 8 مل من الأغشية العازلة تعليق (25 ٪ [وزن / وزن] السكروز ، تريس 5 ملم ، 30 ملم MgCl 2) إلى أنبوب العقيمة وإضافة 1 قرص من EDTA خالية مثبط البروتياز الكوكتيل و 375 من U Benzonase. المزيج بلطف حل لإذابة قرص مثبط البروتياز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنبيذ فائق التالية ، صب بعناية قبالة supernatants ، نابذة فائقة السرعة على عكس أنابيب مادة ماصة ، والاستفادة بحزم لإزالة أنابيب طاف الزائدة. بمناسبة موقع كل بيليه الغشاء مع علامة للمساعدة في التصور. resuspend بلطف غشاء الكريات ثمانية مع 600 ميكرولتر كل من الأغشية العازلة تعديل إعادة تعليق. نقل إعادة تعليق كل الغشاء إلى المجموعة التالية من ثمانية أنابيب resuspend بلطف هذه الكريات ثمانية ، وحمام سباحة وresuspensions الغشاء مما أدى إلى أنبوب العقيمة. الأغشية مكعبات يصعب resuspend ، مواصلة بذلك تمرير تعديل لإعادة تعليق الأغشية العازلة على بيليه حتى القشور بعيدا عن جدار الأنبوب. غالبا ما يكون من الضروري استخدام غيض micropipette لكشط غشاء الكرية قبالة جدار الأنبوب والمساعدة في عملية إعادة تعليق. عندما pipetting ، وتجنب مزبد أو تكوين الفقاعة. علما بأن هذه الخطوة على ما يبدو واحدة من أصعب والحاسمة لتحقيق النجاح الشامل للتجربة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عندما تم معلق الكريات الغشاء وإزالتها من جميع الأنابيب 16 ، يغسل كل الأنابيب الأربعة مع 600 ميكرولتر من الأغشية العازلة تعديل إعادة تعليق. ينبغي أن تركز على غسل جميع أنحاء المنطقة وضع علامة (الغشاء بيليه) لكل أنبوب. نقل يغسل في غشاء أنبوب إعادة تعليق. كرر الخطوة غسل للمجموعات الثلاث المتبقية من أربعة أنابيب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعادة تعليق على احتضان الغشاء مع هزاز لطيف لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة للحط من الحمض النووي والمساعدة في الحد من المواد نديفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة قسامة صغيرة من الغشاء وتعليق تنفيذ البروتين الكمي لتحديد مجموع المحصول الغشاء. المخفف 01:01 نحن عادة إعداد مخفف ، (2.5 ٪ في SDS) ، و01:03 المخفف (2.5 ٪ في SDS) عينات من الغشاء ، تسخين العينات عند 90 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة ، واستخدام البروتين العاصمة BioRad الفحص لقياس بروتين الغشاء إعادة تعليق التركيز. إجمالي محصول البروتين عموما بين 1.0 ملغ / مل و 1.6 ملغ / مل. ويتطلب استخدام الحرارة وSDS للافراج عن خطط إدارة المكاتب من الأغشية المستخرج بحيث يمكن الحصول على البروتين الكمي أكثر دقة القيمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد التدرجات الخطية السكروز 1.8 مل كل طبقات من حلول السكروز (وزن / وزن ، الذي أعد في EDTA 5 مم ، ودرجة الحموضة 7.5) إلى 14 × 95 ملم أنابيب نابذة فائقة السرعة فائقة الوضوح في الترتيب التالي : 55 ٪ ، 50 ٪ ، 45 ٪ ، 40 ٪ ، 35 ٪ ، 30 ٪. طبقات من التدرجات السكروز هو أسهل لأداء عند استخدام pipettor بصلة ، وليس pipettor الآلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استنادا إلى البروتين الكمي غشاء إعادة تعليق (الخطوة 16) ، وطبقة 1.5 ملغ من إعادة تعليق غشاء على رأس كل التدرج. كل 14 × 95 مم أنبوب نابذة فائقة السرعة لديها القدرة القصوى من 12.5 مل ، وبالنظر إلى أن نسبة 10.8 مل من حلول السكروز من الخطوة 17 ، يجب عدم تحميل أكثر من 1.7 مل من إعادة تعليق الغشاء في التدرج. تزن فرديا وضبط دقيق لوزن الأخير من كل أنبوب التدرج السكروز (بإضافة أو إزالة غشاء إعادة تعليق) حتى يتسنى لجميع أنابيب وزن نفسه (± 0.01 غ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل التدرجات السكروز إلى الدوار SW - 40Ti دلو يتأرجح والطرد المركزي في ز س 256000 (38000 دورة في الدقيقة) لمدة لا تقل عن 17 ساعة عند 4 درجات مئوية. </li></ol> 4 اليوم : جمع الكسور التدرج السكروز <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد 17 ساعة من الطرد المركزي ، ووقف تشغيل أجهزة الطرد المركزي ، وإزالة بعناية التدرجات السكروز من الدوار SW - 40Ti. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعناية تنظيف قاع الانحدار السكروز أنبوب مع الايثانول 70 ٪ ، ثقبالجزء السفلي من أنبوب بإبرة 21g ، وجمع متسلسلة كسور 500 ميكرولتر من التدرج في أنابيب microfuge العقيمة. كرر لتدرجات لاحقة. وينبغي أن يسمح التدرج لبالتنقيط تدفق بواسطة الجاذبية ، وحتى لا تعكر صفو التدرج السكروز. ومع ذلك ، إذا كان يقطر من توقف الجزء السفلي من أنبوب التدرج ، قد يتم تطبيقها على كمية صغيرة من الضغط على الجزء العلوي من الأنبوب باستخدام إصبع واحد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد معامل الانكسار في كل جزء السكروز التدرج باستخدام الإنكسار وربط معامل الانكسار مع كثافة محددة في غرام / 1 مل. تقييم الترجمة البروتين من خلال إعداد ممثل الكسور التدرج السكروز (بزيادة كثافة 0.01 ، 1.11 غرام من / الى 1.26 مل جرام / مل) لSDS - PAGE الانفصال ، ونقل إلى النيتروسليلوز ، وimmunoblotting. </li></ol> ممثل النتائج عندما يقوم بشكل صحيح ، فإن هذا الإجراء يؤدي إلى فصل كامل من الدردشة والحويصلات OM من كل نوع (أ) نوع (على سبيل المثال SchuS4) و B (على سبيل المثال LVS) سلالات F. التولارية. كما هو مبين في immunoblots ممثل في الشكل 1 ، F. خطط إدارة المكاتب التولارية توطين بين الكثافة وقدره 1.17 و 1.20 جم / مل. بالمقارنة ، IMPS توطين بين الكثافات من 1.13 و 1.14 جم / مل. <img src="/files/ftp_upload/2044/2044fig1.jpg" alt="الشكل 1" /> الشكل 1. Immunoblotting ف. التدرجات التولارية السكروز الكثافة. وقد تم جمع الكسور متسلسلة من التدرجات والكثافة (جم / مل) حسبت على أساس مؤشرات الانكسار. تم فصل البروتينات بواسطة SDS - PAGE ، ثم نقل إلى النيتروسليلوز ، وimmunoblotted لكشف المرصد المغربي للسجون وتجزيء الوجود العسكري الدولي. prestained ميجاوات ، ومعايير الوزن الجزيئي مع أحجام (في كيلو دالتون) لاحظت على الجانب الأيسر من كل خانة. LVS ، lysates خلية كاملة من F. التولارية LVS. ويلاحظ التدرج الكثافة السكروز جزء المقابلة أعلاه الممرات الخاصة بكل منها. تم الكشف عن خطط إدارة المكاتب وIMPS ، كما لوحظ في الهامش الأيسر ، مع الأمصال الضدية ، النسائل المتعددة أحادي النوعية. وتم الحصول على نتائج مماثلة لF. التولارية SchuS4.

<ol>
	<li>Price, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Centrifugation+in+density+gradients.">Centrifugation in density gradients.</a> , 335-335 (1982).</li><li>Osborn, M. J., Gander, J. E., Parisi, E., Carson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanism+of+assembly+of+the+outer+membrane+of+Salmonella+typhimurium.+Isolation+and+characterization+of+cytoplasmic+and+outer+membrane.">Mechanism of assembly of the outer membrane of Salmonella typhimurium. Isolation and characterization of cytoplasmic and outer membrane.</a> J Biol Chem. 247 (12), 3962-3962 (1972).</li><li>Nikaido, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+outer+membranes.">Isolation of outer membranes.</a> Methods Enzymol. 235, 225-225 (1994).</li><li>Mizuno, T., Kageyama, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Separation+and+characterization+of+the+outer+membrane+of+Pseudomonas+aeruginosa.">Separation and characterization of the outer membrane of Pseudomonas aeruginosa.</a> J Biochem. 84 (1), 179-179 (1978).</li><li>Huntley, J. F., Conley, P. G., Hagman, K. E., Norgard, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+Francisella+tularensis+outer+membrane+proteins.">Characterization of Francisella tularensis outer membrane proteins.</a> J Bacteriol. 189, 561-561 (2007).</li><li>Huntley, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Native+outer+membrane+proteins+protect+mice+against+pulmonary+challenge+with+virulent+type+A+Francisella+tularensis.">Native outer membrane proteins protect mice against pulmonary challenge with virulent type A Francisella tularensis.</a> Infect Immun. 76 (8), 3664-3664 (2008).</li><li>Bevanger, L., Maeland, J. A., Naess, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agglutinins+and+antibodies+to+Francisella+tularensis+outer+membrane+antigens+in+the+early+diagnosis+of+disease+during+an+outbreak+of+tularemia.">Agglutinins and antibodies to Francisella tularensis outer membrane antigens in the early diagnosis of disease during an outbreak of tularemia.</a> J Clin Microbiol. 26 (3), 433-433 (1988).</li><li>Hubalek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Towards+proteome+database+of+Francisella+tularensis.">Towards proteome database of Francisella tularensis.</a> J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 787 (1), 149-149 (2003).</li><li>Pavkova, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Francisella+tularensis+live+vaccine+strain:+proteomic+analysis+of+membrane+proteins+enriched+fraction.">Francisella tularensis live vaccine strain: proteomic analysis of membrane proteins enriched fraction.</a> Proteomics. 5 (9), 2460-2460 (2005).</li><li>Sandstrom, G., Tarnvik, A., Wolf-Watz, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunospecific+T-lymphocyte+stimulation+by+membrane+proteins+from+Francisella+tularensis.">Immunospecific T-lymphocyte stimulation by membrane proteins from Francisella tularensis.</a> J Clin Microbiol. 25 (4), 641-641 (1987).</li><li>Sjostedt, A., Tarnvik, A., Sandstrom, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+T-cell-stimulating+17-kilodalton+protein+of+Francisella+tularensis+LVS+is+a+lipoprotein.">The T-cell-stimulating 17-kilodalton protein of Francisella tularensis LVS is a lipoprotein.</a> Infect Immun. 59 (9), 3163-3163 (1991).</li><li>Twine, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Francisella+tularensis+proteome:+low+levels+of+ASB-14+facilitate+the+visualization+of+membrane+proteins+in+total+protein+extracts.">Francisella tularensis proteome: low levels of ASB-14 facilitate the visualization of membrane proteins in total protein extracts.</a> J Proteome Res. 4 (5), 1848-1848 (2005).</li></ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

هذا البروتوكول وصف الاختلاف من تحلل ، spheroplasting التناضحي ، والسكروز الطرد المركزي المتدرج الكثافة &quot;المعيار الذهبي&quot; للفصل المادي وإثراء سلبية الغرام OMS بكتيرية من المكونات الخلوية الأخرى 2 ، 3 ، 4. في حين أننا سبق وصفها في تطبيق هذا الأسلوب لعزل OMS من كل نوع A و B سلالات نوع F. التولارية 5 ، يقدم هذا العرض إجراء أكثر تفصيلا والأمثل لعزل OM. في الواقع ، وهذا هو تقدم مهم لتحديد احتمال والسطحية المعرضة للعوامل الفوعة المفترض من هذا الممرض القاتل. وقد تجلى أهمية هذا الإجراء في الدراسات التي تبين ان مختبرنا تحصين الفئران مع خطط إدارة المكاتب المنقى توفير حماية كبيرة ضد نوع ضراوة A F. التولارية التحدي الرئوي 6. كما لوحظ اعلاه مرحلة النمو ، من الخلايا البكتيرية ، والرصد الدقيق خلال تحلل التناضحي ، وإعادة تعليق لطيف من غشاء الكريات هي الخطوات الحاسمة التي تظهر لربط مع نجاح / فشل هذا الغشاء الداخلي الانفصال. في حين أن هذا الأسلوب الأمثل هو دقيق ويخضع لبعض المتغيرات التجريبية ، ونظام إدارة العمليات الناتجة على ما يبدو من النقاء معززة بشكل ملحوظ بالمقارنة مع تلك التي حصل من استخدام المنظفات الصناعية ، وكلوريد الليثيوم ، وكربونات الصوديوم أو 7 ، 8 ، 9 ، 10 ، 11 ، 12.

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Donor calf serum</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Mediatech</td>
<td>35-022-CV</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>IsoVitaleX</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Becton Dickinson</td>
<td>211876</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cellgro molecular grade dH2O</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Mediatech</td>
<td>46-000-CM</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>38.5 ml polycarbonate bottle</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FiberLite</td>
<td>010-0514</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>F50L-8x39 ultracentrifuge rotor</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FiberLite</td>
<td>096-087051</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Complete mini EDTA-free protease inhibitor cocktail</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Roche Diagnostics</td>
<td>04693132001</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Benzonase</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Novagen</td>
<td>70664-3</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DC protein assay</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BioRad</td>
<td>500-0116</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Ultra-Clear 14x95mm centrifuge tubes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Beckman</td>
<td>344060</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>SW-40Ti swinging bucket rotor</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Beckman Coulter</td>
<td>331301</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Abbe benchtop refractometer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>13-964-10 </td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

method for the isolation of francisella tularensis outer membranes

الفرنسيسيلة التولارية هو عصورة سلبية الغرام بين الخلايا والعامل المسبب للمرض التلريات الحيوانية المنشأ. بالمقارنة مع غيرها من مسببات الأمراض البكتيرية ، وجرعة منخفضة للغاية المعدية (&lt;10 CFU) ، تطور المرض بسرعة ، وارتفاع معدلات المراضة والوفيات تشير إلى أن سلالات قاتلة من الفرنسيسيلة ترميز لعوامل الفوعة الرواية. وقد تبين أن السطح المعرضة للجزيئات وبروتينات الغشاء الخارجي هي : (خطط إدارة المكاتب) ، لتعزيز البكتيرية الخلية المضيفة ملزمة ، دخول ، والبقاء داخل الخلايا ، والتهرب من الفوعة المناعي. وشدد كذلك على أهمية لدراسة خطط إدارة المكاتب من حقيقة أنها يمكن أن تكون بمثابة لقاحات واقية ضد عدد من الأمراض البكتيرية. في حين يمكن استخلاصها من خطط إدارة المكاتب البكتيريا سالبة الجرام من خلال غشاء معظم تقنيات الاستخراج ، بما في ذلك الخلايا صوتنة تليها الطرد المركزي و / أو استخراج مواد التنظيف ، وغالبا ما تكون ملوثة مع هذه الاستعدادات محيط بالجبلة و / أو حشوية (الداخلية) الملوثات (IM) الغشاء. لسنوات ، ان &quot;المعيار الذهبي&quot; طريقة لفصل الكيمياء الحيوية والفيزياء الحيوية من سلبية الغرام والأغشية IM الخارجي (OM) تم رهنا للبكتيريا تحلل spheroplasting والتناضحي ، تليها كثافة السكروز الطرد المركزي التدرج. مرة واحدة على طبقات متدرجة السكروز ، يمكن فصل OMS من الرسائل الفورية على أساس الاختلافات في كثافة مرتفعة ويعتقد أن يستند إلى حد كبير على وجود lipopolysaccharide (LPS) في مرسيليا. هنا ، نحن تصف طريقة صارمة والأمثل لاستخراج وتخصيب ، وعزل F. الأغشية الخارجي التولارية وخطط إدارة المكاتب المرتبطة بها.

Watch this Scientific Journal Video about Method for the Isolation of Francisella tularensis Outer Membranes at JoVE.com

Method for the Isolation of Francisella tularensis Outer Membranes

بروتوكول لفصل الأغشية الداخلية والخارجية من<em&gt; الفرنسيسيلة التولارية</em&gt; عن طريق تحلل ، spheroplasting التناضحي ، والسكروز تنبيذ فائق التدرج الكثافة.

طريقة لعزل الفرنسيسيلة التولارية الأغشية الخارجي

Francisella tularensis is a Gram-negative intracellular coccobacillus and the causative agent of the zoonotic disease tularemia. When compared with other ...

method-for-the-isolation-of-francisella-tularensis-outer-membranes

Research

JoVE Journal

Biology

Method for the Isolation of Francisella tularensis Outer Membranes

17.0K Views.  University of Texas Southwestern Medical Center. بروتوكول لفصل الأغشية الداخلية والخارجية من الفرنسيسيلة التولارية عن طريق تحلل ، spheroplasting التناضحي ، والسكروز تنبيذ فائق التدرج الكثافة.

Video: Method for the Isolation of Francisella tularensis Outer Membranes

A Method for Mouse Pancreatic Islet Isolation and Intracellular cAMP Determination

Uncontrolled glycemia is a hallmark of diabetes mellitus and promotes morbidities like neuropathy, nephropathy, and retinopathy. With the increasing prevalence of diabetes, both immune-mediated type 1 and obesity-linked type 2, studies aimed at delineating diabetes pathophysiology and therapeutic mechanisms are of critical importance. The &#946;-cells of the pancreatic islets of Langerhans are responsible for appropriately secreting insulin in response to elevated blood glucose concentrations. In addition to glucose and other nutrients, the &#946;-cells are also stimulated by specific hormones, termed incretins, which are secreted from the gut in response to a meal and act on &#946;-cell receptors that increase the production of intracellular cyclic adenosine monophosphate (cAMP). Decreased &#946;-cell function, mass, and incretin responsiveness are well-understood to contribute to the pathophysiology of type 2 diabetes, and are also being increasingly linked with type 1 diabetes. The present mouse islet isolation and cAMP determination protocol can be a tool to help delineate mechanisms promoting disease progression and therapeutic interventions, particularly those that are mediated by the incretin receptors or related receptors that act through modulation of intracellular cAMP production. While only cAMP measurements will be described, the described islet isolation protocol creates a clean preparation that also allows for many other downstream applications, including glucose stimulated insulin secretion, [3H]-thymidine incorporation, protein abundance, and mRNA expression.

Assaying in vitro &#946;-cell function using isolated mouse islets of Langerhans is an important component in the study of diabetes pathophysiology and therapeutics. While many&#160;downstream applications are available, this protocol specifically describes the measurement of intracellular cyclic adenosine monophosphate (cAMP) as an essential parameter determining &#946;-cell function.

وهناك طريقة للماوس البنكرياس جزيرة العزلة وبين الخلايا المخيم تقدير

Uncontrolled glycemia is a hallmark of diabetes mellitus and promotes morbidities like neuropathy, nephropathy, and retinopathy. With the increasing ...

Isolation of Neonatal Extrahepatic Cholangiocytes

The intra and extrahepatic bile ducts of the liver are developmentally distinct, and may be differentially affected by certain diseases. However, differences between intra and extrahepatic cholangiocytes, and between neonatal and adult cells, are not well understood.
Methods for the isolation of cholangiocytes from intrahepatic bile ducts are well established1-4. Isolation of extrahepatic ductal cells, especially from the neonate, has not yet been described, although this would be of great benefit in understanding the differences between distinct cholangiocyte populations and in studying diseases such as biliary atresia that appear to target the extrahepatic ducts. Described here is an optimized technique to isolate both neonatal and adult mouse extrahepatic bile duct cells. This technique yields a pure cell population with minimal contamination from mesenchymal cells like fibroblasts.
This method is based on the removal of the extrahepatic ducts and gallbladder, followed by meticulous dissection and scraping to remove fat and fibroblast layers. Structures are embedded in thick layers of collagen and cultured for approximately 3 weeks to allow outgrowth of cholangiocytes in monolayers, which can then be trypsinized and re plated for experimental use.

A technique to isolate cholangiocytes from the extrahepatic bile ducts of neonatal mice is described. The ducts are meticulously dissected, and then cells are isolated by outgrowth in thick collagen gels. This method provides a useful tool for studying extrahepatic bile duct development and pathology.

عزل الأطفال حديثي الولادة خارج الكبد Cholangiocytes

The intra and extrahepatic bile ducts of the liver are developmentally distinct, and may be differentially affected by certain diseases. However, ...

Isolation of Murine Valve Endothelial Cells

Normal valve structures consist of stratified layers of specialized extracellular matrix (ECM) interspersed with valve interstitial cells (VICs) and surrounded by a monolayer of valve endothelial cells (VECs). VECs play essential roles in establishing the valve structures during embryonic development, and are important for maintaining life-long valve integrity and function. In contrast to a continuous endothelium over the surface of healthy valve leaflets, VEC disruption is commonly observed in malfunctioning valves and is associated with pathological processes that promote valve disease and dysfunction. Despite the clinical relevance, focused studies determining the contribution of VECs to development and disease processes are limited. The isolation of VECs from animal models would allow for cell-specific experimentation. VECs have been isolated from large animal adult models but due to their small population size, fragileness, and lack of specific markers, no reports of VEC isolations in embryos or adult small animal models have been reported. Here we describe a novel method that allows for the direct isolation of VECs from mice at embryonic and adult stages. Utilizing the Tie2-GFP reporter model that labels all endothelial cells with Green Fluorescent Protein (GFP), we have been successful in isolating GFP-positive (and negative) cells from the semilunar and atrioventricular valve regions using fluorescence activated cell sorting (FACS). Isolated GFP-positive VECs are enriched for endothelial markers, including CD31 and von Willebrand Factor (vWF), and retain endothelial cell expression when cultured; while, GFP-negative cells exhibit molecular profiles and cell shapes consistent with VIC phenotypes. The ability to isolate embryonic and adult murine VECs allows for previously unattainable molecular and functional studies to be carried out on a specific valve cell population, which will greatly improve our understanding of valve development and disease mechanisms.

The ability to isolate heart valve endothelial cells (VECs) is critical for understanding mechanisms of valve development, maintenance, and disease. Here we describe the isolation of VECs from embryonic and adult Tie2-GFP mice using FACS that will allow for studies determining the contribution of VECs in developmental and disease processes.

عزل خلايا الفئران صمام غشائي

Normal valve structures consist of stratified layers of specialized extracellular matrix (ECM) interspersed with valve interstitial cells (VICs) and ...

Isolation and Primary Culture of Mouse Aortic Endothelial Cells

The vascular endothelium is essential to normal vascular homeostasis. Its dysfunction participates in various cardiovascular disorders. The mouse is an important model for cardiovascular disease research. This study demonstrates a simple method to isolate and culture endothelial cells from the mouse aorta without any special equipment. To isolate endothelial cells, the thoracic aorta is quickly removed from the mouse body, and the attached adipose tissue and connective tissue are removed from the aorta. The aorta is cut into 1 mm rings. Each aortic ring is opened and seeded onto a growth factor reduced matrix with the endothelium facing down. The segments are cultured in endothelial cell growth medium for about 4 days. The endothelial sprouting starts as early as day 2. The segments are then removed and the cells are cultured continually until they reach confluence. The endothelial cells are harvested using neutral proteinase and cultured in endothelial cell growth medium for another two passages before being used for experiments. Immunofluorescence staining indicated that after the second passage the majority of cells were double positive for Dil-ac-LDL uptake, Lectin binding, and CD31 staining, the typical characteristics of endothelial cells. It is suggested that cells at the second to third passages are suitable for in vitro and in vivo experiments to study the endothelial biology. Our protocol provides an effective means of identifying specific cellular and molecular mechanisms in endothelial cell physiopathology.

The vascular endothelial cells play a significant role in many important cardiovascular disorders. This article describes a simple method to isolate and expand endothelial cells from the mouse aorta without using any special equipment. Our protocol provides an effective means of identifying mechanisms in endothelial cell physiopathology.

العزلة والثقافة الابتدائية من خلايا الفأر الأورطي غشائي

The vascular endothelium is essential to normal vascular homeostasis. Its dysfunction participates in various cardiovascular disorders. The mouse is an ...

Isolation of Murine Coronary Vascular Smooth Muscle Cells

While the isolation and culture of vascular smooth muscle cells (VSMCs) from large vessels is well established, we sought to isolate and culture VSMCs from the coronary circulation. Hearts with intact aortic arches were removed and perfused via retrograde Langendorff with digestion solution containing 300 Units/ml of collagenase type II, 0.1 mg/ml soybean trypsin inhibitor and 1 M CaCl2. The perfusates were collected at 15 min intervals for 90 min, pelleted by centrifugation, resuspended in plating media, and plated on tissue culture dishes. VSMCs were characterized by presence of SM22&#945;, &#945;-SMA, and vimentin. One of the main advantages of using this technique is the ability to isolate VSMCs from the coronary circulation of mice. Although the small number of cells obtained can limit some of the applications for which the cells can be utilized, isolated coronary VSMCs can be used in a variety of well-established cell culture techniques and assays. Studies investigating VSMCs from genetically modified mice can provide further information about structure-function and signaling processes associated with vascular pathologies.

The purpose of this protocol is to demonstrate the isolation and culture techniques of murine primary vascular smooth muscle cells (VSMCs) from the coronary circulation. Once VSMCs have been isolated, they can be used for many standard culture techniques.

عزل الفئران التاجي الأوعية الدموية خلايا العضلات الملساء

While the isolation and culture of vascular smooth muscle cells (VSMCs) from large vessels is well established, we sought to isolate and culture VSMCs ...

Filtration Isolation of Nucleic Acids:  A Simple and Rapid DNA Extraction Method

FINA, filtration isolation of nucleic acids, is a novel extraction method which utilizes vertical filtration via a separation membrane and absorbent pad to extract cellular DNA from whole blood in less than 2 min. The blood specimen is treated with detergent, mixed briefly and applied by pipet to the separation membrane. The lysate wicks into the blotting pad due to capillary action, capturing the genomic DNA on the surface of the separation membrane. The extracted DNA is retained on the membrane during a simple wash step wherein PCR inhibitors are wicked into the absorbent blotting pad. The membrane containing the entrapped DNA is then added to the PCR reaction without further purification. This simple method does not require laboratory equipment and can be easily implemented with inexpensive laboratory supplies. Here we describe a protocol for highly sensitive detection and quantitation of HIV-1 proviral DNA from 100 &#181;l whole blood as a model for early infant diagnosis of HIV that could readily be adapted to other genetic targets.

We describe here a simple and rapid paper-based DNA extraction method of HIV proviral DNA from whole blood detected by quantitative PCR. This protocol can be extended for use in detecting other genetic markers or using alternative amplification methods.

عزل الترشيح من الأحماض النووية: وبسيطة وسريعة استخراج الحمض النووي الطريقة

FINA, filtration isolation of nucleic acids, is a novel extraction method which utilizes vertical filtration via a separation membrane and absorbent pad ...

A Rapid, Scalable Method for the Isolation, Functional Study, and Analysis of Cell-derived Extracellular Matrix

The extracellular matrix (ECM) is recognized as a diverse, dynamic, and complex environment that is involved in multiple cell-physiological and pathological processes. However, the isolation of ECM, from tissues or cell culture, is complicated by the insoluble and cross-linked nature of the assembled ECM and by the potential contamination of ECM extracts with cell surface and intracellular proteins. Here, we describe a method for use with cultured cells that is rapid and reliably removes cells to isolate a cell-derived ECM for downstream experimentation.
Through use of this method, the isolated ECM and its components can be visualized by in situ immunofluorescence microscopy. The dynamics of specific ECM proteins can be tracked by tracing the deposition of a tagged protein using fluorescence microscopy, both before and after the removal of cells. Alternatively, the isolated ECM can be extracted for biochemical analysis, such as sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and immunoblotting. At larger scales, a full proteomics analysis of the isolated ECM by mass spectrometry can be conducted. By conducting ECM isolation under sterile conditions, sterile ECM layers can be obtained for functional or phenotypic studies with any cell of interest. The method can be applied to any adherent cell type, is relatively easy to perform, and can be linked to a wide repertoire of experimental designs.

The extracellular matrix plays a major role in defining the microenvironment of cells and in modulating cell behavior and phenotype. We describe a rapid method for the isolation of cell-derived extracellular matrix, which can be adapted to different scales for microscopic, biochemical, proteomic, or functional studies.

والسريعة، طريقة قابلة للعزل، دراسة وظيفية، وتحليل المصفوفة خارج الخلية المشتقة من خلية

The extracellular matrix (ECM) is recognized as a diverse, dynamic, and complex environment that is involved in multiple cell-physiological and ...

Standardized Method for High-throughput Sterilization of Arabidopsis Seeds

Arabidopsis thaliana (Arabidopsis) seedlings often need to be grown on sterile media. This requires prior seed sterilization to prevent the growth of microbial contaminants present on the seed surface. Currently, Arabidopsis seeds are sterilized using two distinct sterilization techniques in conditions that differ slightly between labs and have not been standardized, often resulting in only partially effective sterilization or in excessive seed mortality. Most of these methods are also not easily scalable to a large number of seed lines of diverse genotypes. As technologies for high-throughput analysis of Arabidopsis continue to proliferate, standardized techniques for sterilizing large numbers of seeds of different genotypes are becoming essential for conducting these types of experiments. The response of a number of Arabidopsis lines to two different sterilization techniques was evaluated based on seed germination rate and the level of seed contamination with microbes and other pathogens. The treatments included different concentrations of sterilizing agents and times of exposure, combined to determine optimal conditions for Arabidopsis seed sterilization. Optimized protocols have been developed for two different sterilization methods: bleach (liquid-phase) and chlorine (Cl2) gas (vapor-phase), both resulting in high seed germination rates and minimal microbial contamination. The utility of these protocols was illustrated through the testing of both wild type and mutant seeds with a range of germination potentials. Our results show that seeds can be effectively sterilized using either method without excessive seed mortality, although detrimental effects of sterilization were observed for seeds with lower than optimal germination potential. In addition, an equation was developed to enable researchers to apply the standardized chlorine gas sterilization conditions to airtight containers of different sizes. The protocols described here allow easy, efficient, and inexpensive seed sterilization for a large number of Arabidopsis lines.

The objective of this study was to determine the effects of bleach and chlorine gas sterilization on seed germination of a range of Arabidopsis genotypes grown on sterile media. Optimized sterilization protocols have been developed to prevent the growth of microbial contaminants while providing satisfactory seed survival.

طريقة موحدة للتعقيم الفائق من بذور نبات

Arabidopsis thaliana (Arabidopsis) seedlings often need to be grown on sterile media. This requires prior seed sterilization to prevent the growth of ...

Adipo-Clear: A Tissue Clearing Method for Three-Dimensional Imaging of Adipose Tissue

Adipose tissue plays a central role in energy homeostasis and thermoregulation. It is composed of different types of adipocytes, as well as adipocyte precursors, immune cells, fibroblasts, blood vessels, and nerve projections. Although the molecular control of cell type specification and how these cells interact have been increasingly delineated, a more comprehensive understanding of these adipose-resident cells can be achieved by visualizing their distribution and architecture throughout the whole tissue. Existing immunohistochemistry and immunofluorescence approaches to analyze adipose histology rely on thin paraffin-embedded sections. However, thin sections capture only a small portion of tissue; as a result, the conclusions can be biased by what portion of tissue is analyzed. We have therefore developed an adipose tissue clearing technique, Adipo-Clear, to permit comprehensive three-dimensional visualization of molecular and cellular patterns in whole adipose tissues. Adipo-Clear was adapted from iDISCO/iDISCO+, with specific modifications made to completely remove the lipid stored in the tissue while preserving native tissue morphology. In combination with light-sheet fluorescence microscopy, we demonstrate here the use of the Adipo-Clear method to obtain high-resolution volumetric images&#160;of an entire adipose tissue.

Due to the high lipid content, adipose tissue has been challenging to visualize using traditional histological methods. Adipo-Clear is a tissue clearing technique that allows robust labeling and high-resolution volumetric fluorescent imaging of adipose tissue. Here, we describe the methods for sample preparation, pretreatment, staining, clearing, and mounting for imaging.

أديبو--واضحة: منديل مسح طريقة لتصوير ثلاثي الأبعاد للأنسجة الدهنية

Adipose tissue plays a central role in energy homeostasis and thermoregulation. It is composed of different types of adipocytes, as well as adipocyte ...

Fluorescence-Activated Cell Sorting for the Isolation of Scleractinian Cell Populations

Coral reefs are under threat due to anthropogenic stressors. The biological response of coral to these stressors may occur at a cellular level, but the mechanisms are not well understood. To investigate coral response to stressors, we need tools for analyzing cellular responses. In particular, we need tools that facilitate the application of functional assays to better understand how cell populations are reacting to stress. In the current study, we use fluorescence-activated cell sorting (FACS) to isolate and separate different cell populations in stony corals. This protocol includes: (1) the separation of coral tissues from the skeleton, (2) creation of a single cell suspension, (3) labeling the coral cells using various markers for flow cytometry, and (4) gating and cell sorting strategies. This method will enable researchers to work on corals at the cellular level for analysis, functional assays, and gene expression studies of different cell populations.

Corals create biodiverse ecosystems important for both humans and marine organisms. However, we still do not understand the full potential and function of many coral cells. Here, we present a protocol developed for the isolation, labeling, and separation of stony coral cell populations.

فلورسينس تنشيط فرز الخلايا لعزل سكان الخلايا Scleractinian

Coral reefs are under threat due to anthropogenic stressors. The biological response of coral to these stressors may occur at a cellular level, but the ...