1. عملية المانحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يجب أن تبقى الفئران المانحة الصوم لمدة 24 ساعة (حرية الوصول إلى المياه / الجلوكوز الحل). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للحث على Isoflurane التخدير عن طريق الاستنشاق، وتبدأ مع 2٪ على مستوى رذاذ، ومن ثم خفض إلى 1٪ بعد تنفيذ البطن. أداء قليل إصبع القدم للتحقق من التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق البطن وتنظيف الجلد مع الإعدادية 3 مرات (Kodan). ثم إجراء شق تحت الجلد بعد إعطاء متوسط ​​للمسكن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد ملفوفة في شاش الكسب غير المشروع غارقة المالحة، فصل الالتصاقات الفسيولوجية بين البنكرياس والقولون الصاعد بلطف مع Q-تلميح (تحت المجهر الجراحي مع التكبير 6X). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate وتقسيم السفن مغص اللفائفية والحق والشرق باستخدام الحرير 7-0. بعد نشر القولون الصاعد إلى الجانب الأيمن من الوريد المساريقي العلوي (SMV)، يمكن تحديد الأوعية مغص اللفائفية والأيمن والأوسط لربط وتقسيم باستخدام 7-0 العلاقات بين البلدين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب المعدة إلى أعلى، بحيث يتم تقويمها على SMV بأكملها وعرضة للخطر. استخدام المشبك البعوض لتراجع. وعقد المشبك من الكتلة البلاستيسين شكلت في شكل حسب الحاجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate وتقسيم الأوردة البنكرياس الإثنى عشر القادمة من SMV. يجب على كل صغيرة البنكرياس الإثنى عشر القادمة من الأوردة التي تم تحديدها بعناية SMV، ligated مع الحرير و7-0 مقسمة قبل أن يتم إزالة الأنسجة البنكرياس من الكسب غير المشروع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate وتقسيم النسيج الضام تفقد بما في ذلك جميع الأوعية اللمفاوية بين SMV والشريان الأورطي البطني. مع الكسب غير المشروع لا يزال في الجانب الأيمن من البطن، وفقدان النسيج الضام بما في ذلك جميع الأوعية اللمفاوية بين SMV والشريان الأورطي البطني يمكن الوصول إليها. يجب ligated هذا النسيج الضام باستخدام الحرير 7-0 وينقسم إلى تجنب ثر اللمف بعد الجراحة من الكسب غير المشروع المعوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate وتقسيم الشريان الكلوي الحق. بعد تقسيم النسيج الضام، الشريان الكلوي يصبح الحق ميسرةوligated ه وتقسيم واستخدام 7-0 الحرير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> heparinise للنظام الفئران باستخدام 200 وحدة من الهيبارين الرابع عن طريق الوريد القضيب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate الشرايين الهامشية، وتقسيم الأمعاء الدقيقة عند تقاطع الإثناعشري صائمية وعلى محطة الدقاق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> والشريان الأورطي ligated بشكل قريب إلى أصل SMA. ومقطوع الوريد البابي عند التقاء مع الوريد الطحالي. ثم يتم حصادها الكسب غير المشروع مع يتألف من عنيق الأوعية الدموية في الجزء SMA مع الأبهر. </li></ol> 2. Backtable الداخلي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يروي الكسب غير المشروع باستخدام 3 مل من جامعة ويسكونسن الحل (UW) في 4 درجات مئوية عبر قناة ري الأبهر وتجويف الأمعاء من نهاية صائمية مع 30 مل من محلول N-Nebacetin البولية عند 4 ° C (التجويف الري إلزامي) . </li></ol> مباشرة بعد استخراج الكسب غير المشروع، يتم استخدام قناة الأبهر لنضح مع 3 مل حل UW مبردة. لهذا، 20 قسطرة الرابع G علىيتم استخدام حقنة 10 مل. وجوب مراعاة سائل الإرواء بالتدفق بحرية من الوريد البابي المقسمة. للري المعوية مع Nebacetin، يتم استخدام حقنة 50 مل. <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخزين الكسب غير المشروع في حل UW في C ° 4 أثناء إعداد المتلقي. </li></ol> 3. المتلقي عملية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يجب أن تبقى الفئران المتلقية صيام 24 ساعة (حرية الوصول إلى المياه / الجلوكوز الحل). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للحث على Isoflurane التخدير عن طريق الاستنشاق، وتبدأ مع 2٪ على مستوى رذاذ، ومن ثم خفض إلى 1٪ بعد تنفيذ البطن. أداء قليل إصبع القدم للتحقق من التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق البطن وتنظيف الجلد مع الإعدادية 3 مرات (Kodan). ثم إجراء شق متوسط ​​من تحت الجلد بعد إعطاء SC كاربروفين ملغ / كغ (5) لتسكين أثناء العملية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التفاف الأمعاء المتلقي العادي في الشاش غارقة المالحة ووضعه على صدره المستلم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فتح خلف البريتوان بصراحة مع Q-نصائح، وفضح abdomiونال الأبهر الوريد الأجوف السفلي أقل بقليل من السفن الكلوي وصولا الى مستوى الأوعية الحرقفية، إذا لزم الأمر أيضا استخدام microscissors. Ligate في tribuaries صغيرة أسفل الظهر والعمود الفقري من الشريان الأورطي والوريد الأجوف باستخدام الحرير 7-0 لتجنب فقدان الدم. (للقيام بذلك، قم بتغيير تكبير الميكروسكوب الجراحي لل16X). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عبر المشبك الشريان الأورطي وIVC أدناه السفن الكلوي الأيسر قريب وفوق التشعب الحرقفي باستخدام مقاطع microvessel بشكل أقصى. يتم استخدام واحد فقط المشبك قريب وكذلك بشكل أقصى للقضاء على حد سواء سفن في وقت واحد. شق كل السفن التي تستخدم الأمامية لmicroknife وتغسل الدم المتبقية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إنشاء مفاغرة نهاية إلى الجانب بين الجزء الأبهر والشريان الأبهر الكسب غير المشروع المستلم infrarenal باستخدام المستمر خياطة البرولين 10-0 .. في البداية، يتم وضع الكسب غير المشروع على الجانب الأيمن من البطن (رئيس الفئران وضعه عند الساعة 12 ظهرا) لتنفيذ غرز الجدار الخلفي للمفاغرة شريانية وتعادل للخياطة أقل الإقامة. الEN، يتم تشغيل الكسب غير المشروع إلى الجانب الأيسر من البطن (رئيس الفئران وضعه في الساعة 9 صباحا) لفضح وخياطة الجدار الأمامي للمفاغرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم إجراء مفاغرة نهاية إلى الجانب بين الوريد البابي والكسب غير المشروع IVC المستلم أيضا عن طريق تشغيل الغرز باستخدام 10-0 البرولين. مع الفئران جانبية لا يزال الكذب (الرأس في موضع الساعة 9)، يتم وضع الكسب غير المشروع على الجانب الأيسر من البطن ويتم وضع خياطة أقل الإقامة. بدء تشغيل مفاغرة مع الجدار الخلفي من داخل السفينة. بعد ربط الخيط أقل الإقامة، يمكن إجراء غرز الجدار الأمامي من الخارج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة المشابك البعيدة الأولى، تليها المشابك العليا. يتم التحكم من قبل أي نزيف تفاغري الضغط المباشر باستخدام Q-نصائح. يجب فحص الكسب غير المشروع لضخه متساوية وسريعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يقطع الأمعاء المتلقي الصغير كامل بعد ربط الأوعية المساريقي. المجموع الفرعي المتلقين الخضوع اقتطاع الأمعاء، والحفاظ على 2-3 سم من بروximal الصائم واللفائفي من 1 سم البعيدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استعادة استمرارية المعوية عن طريق الداني (jejuno-فغر الصائم) والبعيدة (فغر اللفائفي اللفائفي) من طرف الى طرف anastomoses المعوية باستخدام طبقة واحدة توقف خياطة مع Monocryl 6-0. وهناك حاجة إلى نحو 16 خيوط لإكمال anastomoses. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ري التجويف البريتوني بمحلول ملحي طبيعي حتى نظيفة. 2 مل من إدارة الغشاء البريتونى المالحة العادية لاستبدال السوائل. ثم أغلق البطن باستخدام الخيط المستمر مع 3-0 Vicryl للطبقة العضلات بالإضافة إلى خياطة الجلد المستمر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وينبغي في فترة ما بعد الجراحة أن تبقى الفئران الصيام (مع إمكانية الحصول على المياه ومحلول الجلوكوز) لآخر على مدار 24 ساعة ثم إعادة تشغيل على مستوى تشاو الجرذان والمياه libitum الإعلانية. ينبغي أن تدار مع تسكين كاربروفين لمدة 3 أيام (انظر أدناه الجرعة). </li></ol>

<ol>
	<li>Abu-Elmagd, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Five+Hundred+Intestinal+and+Multivisceral+Transplantations+at+a+Single+Center:+Major+Advances+With+New+Challenges.">Five Hundred Intestinal and Multivisceral Transplantations at a Single Center: Major Advances With New Challenges.</a> Ann. Surg. 250 (4), 567-56 (2009).</li><li>Berney, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portal+versus+systemic+drainage+of+small+bowel+allografts:+comparative+assessment+of+survival,+function,+rejection,+and+bacterial+translocation.">Portal versus systemic drainage of small bowel allografts: comparative assessment of survival, function, rejection, and bacterial translocation.</a> J. Am. Coll. Surg. 195 (6), 804 (2002).</li><li>Fishbein, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intestinal+transplantation.">Intestinal transplantation.</a> N. Engl. J. Med. 361 (10), 998 (2009).</li><li>Hernandez, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Is+portal+venous+outflow+better+than+systemic+venous+outflow+in+small+bowel+transplantation?+Experimental+study+in+syngeneic+rats.">Is portal venous outflow better than systemic venous outflow in small bowel transplantation? Experimental study in syngeneic rats.</a> J. Pediatr. Surg. 40 (2), 336 (2005).</li><li>Monchik, G. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transplantation+of+small+bowel+in+the+rat:+technical+and+immunological+considerations.">Transplantation of small bowel in the rat: technical and immunological considerations.</a> Surgery. 70 (5), 693 (1971).</li><li>Murase, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graft-versus-host+disease+after+brown+Norway-to-Lewis+and+Lewis-to-Brown+Norway+rat+intestinal+transplantation+under+FK506.">Graft-versus-host disease after brown Norway-to-Lewis and Lewis-to-Brown Norway rat intestinal transplantation under FK506.</a> Transplantation. 55 (1), 1 (1993).</li><li>Murase, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunomodulation+of+intestinal+transplant+with+allograft+irradiation+and+simultaneous+donor+bone+marrow+infusion.">Immunomodulation of intestinal transplant with allograft irradiation and simultaneous donor bone marrow infusion.</a> Transplant Proc. 31 (1-2), 565 (1999).</li><li>Pech, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perioperative+infliximab+application+ameliorates+acute+rejection+associated+inflammation+after+intestinal+transplantation.">Perioperative infliximab application ameliorates acute rejection associated inflammation after intestinal transplantation.</a> Am. J. Transplant. 10 (11), 2431 (2010).</li><li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resident+macrophages+are+involved+in+intestinal+transplantation-associated+inflammation+and+motoric+dysfunction+of+the+graft+muscularis.">Resident macrophages are involved in intestinal transplantation-associated inflammation and motoric dysfunction of the graft muscularis.</a> Am J Transplant. 7 (5), 1062 (2007).</li><li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanism+and+impact+of+organ+harvesting+and+ischemia-reperfusion+injury+within+the+graft+muscularis+in+rat+small+bowel+transplantation.+Transplant.">Mechanism and impact of organ harvesting and ischemia-reperfusion injury within the graft muscularis in rat small bowel transplantation. Transplant.</a> Proc. 38 (6), 1821 (2006).</li><li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+and+the+muscularis+propria+after+intestinal+transplantation:+the+alloresponse,+inflammation,+and+smooth+muscle+function.">Acute rejection and the muscularis propria after intestinal transplantation: the alloresponse, inflammation, and smooth muscle function.</a> Transplantation. 85 (10), 1465 (2008).</li><li>Xue, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+experience+of+refined+3-cuff+technique+for+orthotopic+small-bowel+transplantation+in+rat:+a+report+of+270+cases.">Surgical experience of refined 3-cuff technique for orthotopic small-bowel transplantation in rat: a report of 270 cases.</a> Am. J. Surg. 198 (1), 110 (2009).</li><li>Zhang, X. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+techniques+in+rat+heterotopic+small+bowel+transplantation.">Simplified techniques in rat heterotopic small bowel transplantation.</a> Transplant. Proc. 38 (6), 1840 (2006).</li><li>Zhao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+establishment+of+a+new+en+bloc+combined+liver-small+bowel+transplantation+model+in+rats.+Transplant.">The establishment of a new en bloc combined liver-small bowel transplantation model in rats. Transplant.</a> Proc. 39 (1), 278 (2007).</li></ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

في حين وصفت نماذج زرع الأمعاء في الفئران في وقت مبكر كما هو الحال في ال 5 1970ies معظم النماذج المستخدمة مؤخرا تنطوي على زرع الأمعاء منتبذ باستخدام تقنيات مختلفة 13. في حين أن الإجراءات منتبذ بشكل عام لديها ميزة التقنيات المجهرية أسهل وأسهل الوصول إلى الكسب غي?...

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> اسم كاشف </td><td> شركة </td><td> كتالوج رقم </td><td> التعليقات (اختياري) </td></tr><tr><td> جامعة ويسكونسن (UW) الحل (ViaSpan) </td><td> بريستول مايرز سكويب </td><td></td><td></td></tr><tr><td> البولية-N Nebacetin الحل </td><td> NYCOMED </td><td> 6967855 </td><td></td></tr><tr><td> الأمبيسلين </td><td> راتيوفارم </td><td></td><td></td></tr><tr><td> كاربروفين (Rimadyl) </td><td> شركة فايزر </td><td></td><td></td></tr><tr><td> البرولين 10-0 خياطة unresorbable </td><td> Ethicon </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Monocryl 6-0 خياطة resorbable </td><td> Ethicon </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Vicryl 3-0 خياطة resorbable </td><td> Ethicon </td><td></td><td></td></tr><tr><td> رابعا قسطرة G 20 مم 1.1x33 </td><td> براون </td><td></td><td></td></tr><tr><td> رابعا قسطرة مجموعة ال 22 مم 0.9x25 </td><td> براون </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Kodan بالبشرة الإعدادية </td><td> Schülke </td><td></td><td></td></tr><tr><td> كلوريد الصوديوم 0.9٪ حل تسريب </td><td> براون </td><td></td><td></td></tr><tr><td> ملقط المنحني الصغيرة </td><td> FineScienceTools </td><td> 11009-13 </td><td></td></tr><tr><td> ملقط المنحني الصغيرة </td><td> AESCULAP </td><td> BD 333 </td><td></td></tr><tr><td> ملقط المنحني الصغيرة </td><td> AESCULAP </td><td> FD281R </td><td></td></tr><tr><td> ملقط الدقيقة على التوالي 1 </td><td> WPI </td><td> 5 </td><td></td></tr><tr><td> ملقط الدقيقة على التوالي 2 </td><td> WPI </td><td> 2 </td><td></td></tr><tr><td> الدقيقة إبرة حامل </td><td> WPI </td> &lt;TD&gt; 14081 </td><td></td></tr><tr><td> مقص الصغيرة </td><td> FineScienceTools </td><td> 15006-09 </td><td></td></tr><tr><td> الدقيقة مشرط </td><td> MANI </td><td> العيون سكين </td><td></td></tr><tr><td> المشابك الصغيرة </td><td> AESCULAP </td><td> FB329R </td><td></td></tr></tbody></table>

orthotopic small bowel transplantation in rats

أصبح صغيرا زرع الأمعاء خيارا مقبولا السريرية للمرضى الذين يعانون متلازمة الأمعاء القصيرة وفشل التغذية الوريدية (فشل معوي لا رجعة فيه). في مراكز متخصصة واستراتيجيات تحسين إدارة المنطوق أدت إلى المريض القصيرة والمتوسطة الأجل وبقاء ممتازة الكسب غير المشروع مع توفير نوعية عالية من الحياة 1،3. وخلافا للزرع أكثر شيوعا من أجهزة صلبة أخرى (أي القلب والكبد) الآليات الكامنة وظيفة العديد من الكسب غير المشروع والتعديلات المناعية الناجمة عن زرع الأمعاء ليست معروفة تماما 6،7. حلقات الرفض الحاد، والمزمن الفشل الإنتان الكسب غير المشروع هي العقبات الرئيسية التي تسهم نتائج لا تزال مواتية على المدى الطويل أقل وعرقلة لعمل أكثر على نطاق واسع على الرغم من إجراء عدد متزايد من المرضى على التغذية الوريدية الرئيسية التي ستستفيد من المحتمل زرع من هذا القبيل. الأمعاء الدقيقة يحتوي علىعدد كبير من الركاب وكوسيتيس يشار إلى جزء من القناة الهضمية نظام اللمفاوية المرتبطة (GALT) هذا الجزء من كونها السبب في immunogenity عالية من الكسب غير المشروع المعوية. وجود وبالقرب من العديد من commensals ومسببات الأمراض في الأمعاء يفسر شدة الإنتان الحلقات مرة واحدة للخطر سلامة الغشاء المخاطي الكسب غير المشروع (على سبيل المثال، رفض). للمضي قدما في مجال البيانات وزرع الأمعاء multiorgan أكثر المتولدة من النماذج الحيوانية موثوقة ومجدية هو مطلوب. تقديم نموذج يجمع بين كل من الموثوقية وهنا الجدوى متى تم انشاؤه بطريقة موحدة ويمكن أن توفر معلومات قيمة في مجمع آليات الكامنة، الجزيئية الخلوية والوظيفية التي يتم تشغيلها بواسطة زرع الأمعاء. وقد استخدمنا بنجاح وصقل الإجراءات الموصوفة على مدى أكثر من 5 سنوات في مختبرنا 8-11. وإن الرب القائم على الفيديو الشكل هو مفيدة بشكل خاص للتدليل على اإلجراءات المعقدةوتجنب المزالق dure الأولية للجماعات تخطط لإنشاء نموذج القوارض مثلي التحقيق زرع الأمعاء.

بعد العملية الجراحية الاعتيادية ينبغي أن الحيوانات المزروعة التعافي سريعا من الإجراء تحت مصباح الحرارة لحوالي 1 ساعة. انخفاض حرارة الجسم هو أحد الأسباب الرئيسية لوفيات ما بعد الجراحة وينبغي تجنب بعناية داخل وبعد العمل الجراحي. يج...

Watch this Scientific Journal Video about Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats at JoVE.com

Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats

أصبح صغيرا زرع الأمعاء خيار العلاج المقبولة لمرضى الفشل المعوية لا رجعة فيه. نموذجنا التجريبي لزرع مثلي الأمعاء الدقيقة في الفئران بمثابة أداة موثوقة لمعالجة المناعية الأساسية والعمليات الالتهابية التي تعقد زرع الأمعاء.

زرع مثلي الأمعاء الصغيرة في الفئران

Small  bowel transplantation has become an accepted clinical option for patients with  short gut syndrome and failure of parenteral nutrition ...

orthotopic-small-bowel-transplantation-in-rats

Research

JoVE Journal

Medicine

14.1K Views.  University of Bonn, Germany. أصبح صغيرا زرع الأمعاء خيار العلاج المقبولة لمرضى الفشل المعوية لا رجعة فيه. نموذجنا التجريبي لزرع مثلي الأمعاء الدقيقة في الفئران بمثابة أداة موثوقة لمعالجة المناعية الأساسية والعمليات الالتهابية التي تعقد زرع الأمعاء.

Video: Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats

Development of Obliterative Bronchiolitis in a Murine Model of Orthotopic Lung Transplantation

Orthotopic lung transplantation in rats was first reported by Asimacopoulos and colleagues in 1971 1. Currently, this method is well accepted and standardized not only for the study of allo-rejection but also between syngeneic strains for examining mechanisms of ischemia-reperfusion injury after lung transplantation. Although the application of the rat and other large animal model 2 contributed significantly to the elucidation of these studies, the scope of those investigations is limited by the scarcity of knockout and transgenic rats. Due to no effective therapies for obliterative bronchiolitis, the leading cause of death in lung transplant patients, there has been an intensive search for pre-clinical models that replicate obliterative bronchiolitis. The tracheal allograft model is the most widely used and may reproduce some of the histopathologic features of obliterative bronchiolitis 3. However, the lack of an intact vasculature with no connection to the recipient's conducting airways, and incomplete pathologic features of obliterative bronchiolitis limit the utility of this model 4. Unlike transplantation of other solid organs, vascularized mouse lung transplants have only recently been reported by Okazaki and colleagues for the first time in 2007 5. Applying the basic principles of the rat lung transplant, our lab initiated the obliterative bronchiolitis model using minor histoincompatible antigen murine orthotopic single-left lung transplants which allows the further study of obliterative bronchiolitis immunopathogenesis6.

Obliterative bronchiolitis is the key impediment to the long-term survival of lung transplant recipients and the lack of a robust preclinical model precludes examining obliterative bronchiolitis immunopathogenesis. Unlike other solid organ transplants, vascularized mouse lung transplantation has only recently been developed. Here we show our independently developed obliterative bronchiolitis model after murine orthotopic single-lung transplantation.

تطوير النزلات الشعبية مسد في نموذج الفئران من زرع الرئة Orthotopic

Orthotopic lung transplantation in rats was first reported by Asimacopoulos and colleagues in 1971 1. Currently, this method is well accepted and ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

زراعة كبد في الفئران

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Orthotopic Aortic Transplantation in Mice for the Study of Vascular Disease

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. This is largely true, but there are a number of important principles that can reduce the difficulty of these procedures and enhance reproducibility. Orthotopic aortic transplantation is an excellent procedure in which to learn these principles because it involves only two end-to-end anastomoses, but requires good suturing technique and handling of the vessels for consistent success. This procedure begins with the procurement of a length of abdominal aorta from a donor animal, followed by division of the native aorta in the recipient. The procured aorta is then placed between the divided ends of the recipient aorta and sutured into place using end-to-end anastomoses. To accomplish this objective successfully requires a high degree of concentration, good tools, a steady hand, and an appreciation of how easily the vasculature of a mouse can be damaged, resulting in thrombosis. Learning these important principles is what occupies most of the beginner's time when learning microsurgery in small rodents. Throughout this protocol, we refer to these important points. This model can be used to study vascular disease in a variety of different experimental systems1-8. In the context shown here, it is most often used for the study of post-transplant vascular disease, a common long-term complication of solid organ transplantation in which intimal hyperplasia occurs within the allograft. The primary advantage of the model is that it facilitates quantitative morphometric analyses and the transplanted vessel lies contiguous to the endogenous vessel, which can serve as an additional control9. The technique shown here is most often used for mice weighing 18-25 grams. We have accumulated most of our experience using the C57BL/6J, BALB/cJ, and C3H/HeJ strains.

We describe a technique in which a section of the abdominal aorta from a mouse is transplanted orthotopically to just below the renal arteries in an allogeneic or syngeneic recipient. This technique can be useful in studies in which transplantation of large arteries of uniform size is deemed advantageous.

زرع مثلي الشريان الأورطي في الفئران لدراسة أمراض الأوعية الدموية

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. ...

Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and translational research in the field of transplantation medicine. A vast array of reagents is available exclusively in this setting, including mono- and polyclonal antibodies for both diagnostic and interventional applications. In addition, a vast number of genotyped, inbred, transgenic, and knock out strains allow detailed investigation of the individual contributions of humoral and cellular components to the complex interplay of an immune response and make the mouse the gold standard for immunological research. 
Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) delineates a novel field of transplantation using allografts to replace "like with like" in patients suffering traumatic or congenital tissue loss. This surgical methodological protocol shows the use of a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis in an orthotopic mouse hind limb transplantation model. The model specifically allows for comparison between established paradigms in solid organ transplantation with a novel form of transplants consisting of various different tissue components. Uniquely, this model allows for the transplantation of a viable vascularized bone marrow compartment and niche that have the potential to exert a beneficial effect on the balance of immune acceptance and rejection. This technique provides a tool to investigate alloantigen recognition and allograft rejection and acceptance, as well as enables the pursuit of functional nerve regeneration studies to further advance this novel field of transplantation.

This novel model for orthotopic hind limb transplantation in the mouse, applying a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis, provides a powerful tool for in&#160;vivo mechanistic immunological research related to vascularized composite allotransplantation (VCA).

مثلي هند الاطراف زرع في ماوس

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and ...

Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis. In recent years, oncolytic virotherapies have proven themselves to be potentially powerful tools to fight malignancy. Due to the unique dual blood supply in the liver, it is possible to apply therapies locally to orthotopic liver tumors, which are predominantly fed by arterial blood flow. We have previously demonstrated that hepatic arterial delivery of oncolytic viruses results in safe and efficient transduction efficiency of multifocal HCC lesions, resulting in significant prolongation of survival in immune competent rats. This procedure closely mimics the application of transarterial embolization in patients, which is the standard palliative care provided to many HCC patients. The ability to administer tumor therapies through the hepatic artery in rats allows for a highly sophisticated preclinical model for evaluating novel viral vectors under development. Here we describe the detailed protocol for microdissection of the hepatic artery for infusion of oncolytic virus vectors to treat orthotopic HCC.

Oncolytic virotherapies are under development as novel therapeutics for the treatment of hepatocellular carcinoma (HCC). Here we describe a method for locoregional therapy of HCC via hepatic arterial administration of oncolytic virus.

إدارة Transarterial من حال الورم فيروسات للعلاج العلاج الموضعي من مثلي HCC في الجرذان

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis.  In recent years, oncolytic virotherapies have proven ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

نموذج بورسين ما قبل السريرية لزراعة القلب التقويمي

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

زرع الكلي الفئران العظام: نهج الجراحية الجديدة والمبسطة

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...

Reduced Complications after Arterial Reconnection in a Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation of human liver transplantation due to the absence of arterial reconnection. Described here is a modified transplantation procedure that includes the incorporation of hepatic artery (HA) reconnection, leading to a marked improvement in transplant outcomes. With a mean anhepatic time of 12 min and 14 s, HA reconnection results in improved perfusion of the transplanted liver and an increase in long-term recipient survival from 37.5% to 88.2%. This protocol includes the use of 3D-printed cuffs and holders to connect the portal vein and infrahepatic inferior vena cava. It can be implemented for studying multiple aspects of liver transplantation, from immune response and infection to technical aspects of the procedure. By incorporating a simple and practical method for arterial reconnection using a microvascular technique, this modified rat OLT protocol closely mimics aspects of human liver transplantation and will serve as a valuable and clinically relevant research model.

The goal of this study is to modify the rat orthotopic liver transplant model to better represent human liver transplantation and improve recipient survival. The presented method reestablishes hepatic arterial inflow by connecting the donor liver&#39;s common hepatic artery to the recipient liver&#39;s proper hepatic artery.

مضاعفات مخفضة بعد إعادة الاتصال الشرياني في نموذج الجرذ من زرع الكبد العظام

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation ...

Orthotopic Kidney Auto-Transplantation in a Porcine Model Using 24 Hours Organ Preservation And Continuous Telemetry

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for kidney transplantation (KT). Even though, the use of allografts from extended criteria donors (ECD) could partially ease the shortage of organ donors, ECD organs carry a potentially higher risk for inferior outcomes and postoperative complications. Dynamic organ preservation techniques, modulation of ischemia-reperfusion and preservation injury, and allograft therapies are in the spotlight of scientific interest in an effort to improve allograft utilization and patient outcomes in KT.
Preclinical animal experiments are playing an essential role in translational research, especially in the medical device and drug development. The major advantage of the porcine orthotopic auto-transplantation model over ex vivo or small animal studies lies within the surgical-anatomical and physiological similarities to the clinical setting. This allows the investigation of new therapeutic methods and techniques and ensures a facilitated clinical translation of the findings. This protocol provides a comprehensive and problem-oriented description of the porcine orthotopic kidney auto-transplantation model, using a preservation time of 24 hours and telemetry monitoring. The combination of sophisticated surgical techniques with highly standardized and state-of-the-art methods of anesthesia, animal housing, perioperative follow up, and monitoring ensure the reproducibility and success of this model.

Large animal models play an essential role in preclinical transplantation research. Due to its similarities to the clinical setup, the porcine model of orthotopic kidney auto-transplantation described in this article provides an excellent in vivo setting for the testing of organ preservation techniques and therapeutic interventions.

عملية زرع الكلى التلقائية في نموذج بورسين باستخدام 24 ساعة لحفظ الأعضاء والقياس المستمر عن بعد

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for ...

Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. However, lung transplantation is limited by a shortage of available donor organs. As such, there is high waitlist mortality. Ex situ lung perfusion (ESLP) has increased donor lung utilization rates in some centers by 15%-20%. ESLP has been applied as a method to assess and recondition marginal donor lungs and has demonstrated acceptable short- and long-term outcomes following transplantation of extended criteria donor (ECD) lungs. Large animal (in vivo) transplantation models are required to validate ongoing in vitro research findings. Anatomic and physiologic differences between humans and pigs pose significant technical and anesthetic challenges. An easily reproducible transplant model would permit the&#160;in vivo&#160;validation of current ESLP strategies and the preclinical evaluation of various interventions designed to improve donor lung function. This protocol describes a porcine model of orthotopic left lung allotransplantation. This includes anesthetic and surgical techniques, a customized surgical checklist, troubleshooting, modifications, and the benefits and limitations of the approach.

This protocol describes a juvenile porcine model of orthotopic left lung allotransplantation designed for use with ESLP research. Focus is made on anesthetic and surgical techniques, as well as critical steps and troubleshooting.

زرع تقويم الرئة اليسرى في نموذج خنزير الأحداث ل ESLP

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. ...