فإن الكتاب أود أن أشكر مايكل اندرسون لإقامة في المختبر لي هذه الطرق المقبولة لدراسة الحيوانات المنوية مع مشورة الخبراء من كارين هيلز. H. أودا وY. أكياما-أودا قدمت بسخاء γ-تويولين-GFP تطير الأوراق المالية. وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة R01 منحة لLAL (GM074044).

1. تشريح الخصيتين <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الذباب في زجاجة أو قارورة باستخدام تيار من ثاني أكسيد الكربون 2 ونقل إلى لوحة الطاير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نوع الذباب تحت المجهر تشريح باستخدام الفرشاة الصغيرة، وجمع عدد مناسب (اعتمادا على التجربة) من الذكور ذبابة الفاكهة من المورثات المطلوب. الشباب الذكور (0-2 أيام من العمر) تعتبر مثالية لفحص الخلايا في جميع أنحاء المراحل السابقة من الحيوانات المنوية (مثل أمهات المني، الخلايا المنوية، وأوائل طلائع منوية بعد الانتصافي)، في حين أن الذكور الأكبر سنا قليلا (2-5 يوما) هي مثالية لدراسة الخلايا في المراحل النهائية من الحيوانات المنوية (على وجه الخصوص، تنضج الحيوانات المنوية). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط لإزالة الأجنحة من كل يطير (لمنع الذباب من عائمة في السائل خلال تشريح). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة ~ 500 مل من الفوسفات مخزنة المالحة (130 ملي مول كلوريد الصوديوم، 7 ملم نا 2 هبو 4، 3 ملم ناه 2 ص 4؛ PBS) في قطرة إلى طبق تشريح المغلفة سيليكون علىخلفية سوداء. وقد استخدمت المحاليل المائية الأخرى بنجاح لتشريح الخصيتين 3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقطة ملقط نحو الأمامي للذبابة، فهم من قبل الصدر، وتزج به في الانخفاض برنامج تلفزيوني. أثناء عرض من خلال مجهر تشريح، واستخدام زوج آخر من ملقط لفهم وسحب الأعضاء التناسلية الخارجية (هيكل البني الداكن تقع في نهاية الخلفي من البطن بطني) الخلف حتى يفصل من البطن. في معظم الحالات، سيتم إزالة الخصيتين والحويصلات المنوية، والغدة التبعي من البطن جنبا إلى جنب مع الأعضاء التناسلية الخارجية، وإذا لم يكن كذلك، اضافة الى وجود زوج واحد من ملقط في البطن وندف من الخصيتين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الخصيتين منفصلة من الغدة الإكسسوارات والأعضاء التناسلية الخارجية باستخدام اثنين من أزواج من ملقط في انخفاض PBS (الشكل 2). وتتميز البرية من نوع الخصيتين بسهولة من الأنسجة البيضاء المجاورة عن طريق لونها أصفر. الشروع فورا في الخطوة 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لعزل الخصيتين من الذكور pharate (ط<html> . البريد المغلقة داخل حالة العذراء)، يجب أولا أن يتم تنفيذ خطوة إضافية التي تنطوي على إزالة ذبابة من حالة العذراء، وقد تم هذه الخطوة هو موضح سابقا في مكان آخر 31. المضي قدما في تشريح أما الخصيتين الكبار تبدأ في الخطوة 1.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لعزل الخصيتين من الذكور اليرقات، إجراء تعديل على بروتوكول للعزل المبايض اليرقات ذبابة الفاكهة 32. لفترة وجيزة، يرقات الذكور يمكن تمييزها عن يرقات الإناث من خلال وجود زوج من، واضحة، والهياكل بيضاوية كبيرة (الخصيتين اليرقات) جزءا لا يتجزأ في الثلث الخلفي من الدهون في الجسم. لعزل اليرقات الخصيتين، سلخ جزئيا فتح يرقة الذكور إلى عزل الخصيتين والدهون في الجسم المحيطة من البطن كما هو موضح لعزل اليرقات المبايض. الشروع فورا في الخطوة 2 من بروتوكول الموصوفة هنا، ويمكن في وقت لاحق يتم إزالة الخصيتين من الجسم الدهون فقط قبل تركيب (2.3 أو 3.14 خطوات) كما هو موضح في المبايض 32. </li></ol>ق ق = &quot;jove_title&quot;&gt; 2. تحضير العينة وتصوير لايف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام زوج من ملقط لوضع بلطف 2-3 أزواج من الخصيتين في قطرة من 4-5 مل من برنامج تلفزيوني على غطاء زجاجي مربع الانزلاق. نلاحظ أن نسبة عدد الخصيتين للحجم PBS قد تحتاج إلى تعديل: سوف الكثير من السائل منع الخلايا من الانتشار بشكل صحيح عندما سحق، في حين أن السائل القليل جدا سوف يسبب الخلايا لتنفجر عندما ممرود. اختياري: استخدام الغطاء siliconized زلات لتقليل الالتزام من الأنسجة لتغطية الانزلاق في الخطوة 3.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام زوج من ملقط لتمزيق مفتوحة لكل الخصية في الموقف المناسب وذلك لتحقيق أقصى قدر من وجود أنواع الخلايا سلالة الجرثومية المطلوب في إعداد (لاحظ أن محتويات الخصية سوف معظمهم من الخروج من المنطقة التي مزقتها على الشريحة أثناء السحق الخطوة.) لإثراء لأمهات المني والخلايا المنوية، المسيل للدموع فتح الخصية المجاورة للطرف القمي في (مستوى 1، الشكل 2B). لإثراء لالمنوية وطلائع منوية، المسيل للدموع فتح الخصية في نقاط البيعition القاعدية قليلا إلى المستوى 1 (مستوى 2، الشكل 2B). لإثراء للخلايا سلالة الجرثومية أكثر نضجا، المسيل للدموع مفتوحة الخصية أقرب إلى حيث يبدأ انحناء (المستوى 3، الشكل 2B). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع بلطف شريحة المجهر والزجاج على زلة غطاء لسحق الخصيتين، لا الضغط يدويا كما وزن الغطاء زلة وحده يكفي للحصول على عينة ممرود بشكل صحيح. في محاولة لتجنب احتباس فقاعات الهواء. اختياري: استخدام بولي-L-يسين المغلفة شرائح المجهر لتشجيع الانضمام من الأنسجة إلى الشريحة في الخطوة 3.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام إعداد فورا (مثالي في غضون 15 دقيقة من إعداد) لمراقبة الخلايا الحية من قبل على النقيض من المرحلة المجهري، على الذباب المعدلة وراثيا مع التعبير عن البروتينات الموسومة fluorescently في الخصيتين، والخلايا الحية يمكن دراستها بواسطة المجهر مضان في هذه الخطوة. بدلا من ذلك، المضي قدما في تثبيت وتلوين الأجسام المضادة (بروتوكول 3). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الفتيل بلطف أي السائل الزائد من تحت ساترة باستخدام تنظيف ثبورصة البترول الدولية للسماح تسطيح من التحضير، حتى الخلايا الجرثومية بشكل واضح في التركيز. </li></ol> 3. الفورمالديهايد تثبيت وتلوين الأجسام المضادة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المفاجئة تجميد كل شريحة تحتوي على الخصيتين ممرود (من البروتوكول 2) باستخدام زوج من ملقط معدني لتزج به لفترة وجيزة في النيتروجين السائل (حتى يتوقف النيتروجين السائل محتدما). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الغطاء زلة فورا باستخدام شفرة حلاقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط معدني لنقل الشرائح إلى رف شريحة زجاجية prechilled مليئة الجليد الباردة الايثانول 95٪ (الصف الطيفي، خالية من الميثانول). تخزينها في -20 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط معدني لنقل الشرائح إلى رف شريحة زجاجية مملوءة 4٪ الفورمالديهايد في برنامج تلفزيوني بالإضافة إلى 0.1٪ تريتون X-100 (PBS-T). تخزين في درجة حرارة الغرفة لمدة 7 دقائق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام ملقط معدني لنقل الشرائح إلى رف شريحة زجاجية مليئة برنامج تلفزيوني. تغسل الشرائح في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. كرر 1X. تنفيذ كافة يغسل عن طريق تجاهل الحل في رف شريحة زجاجية ( <em&gt; مثال. بصب بها) واستبدالها مع حل جديد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجاهل برنامج تلفزيوني وتزج الشرائح في برنامج تلفزيوني-T لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة لpermeabilize أغشية الخلايا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغسل الشرائح في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تكرار 2X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عرقلة الخطوة (اختياري): تزج الشرائح في برنامج تلفزيوني بالإضافة إلى 1٪ BSA لمدة 45 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام القلم حاجز مسعور لرسم دائرة على الشريحة في جميع أنحاء الأنسجة ممرود (مرئية بسهولة بالعين) من أجل حصر الحلول الضد (المضافة في الخطوات 3.9 و 3.11). يجب أن تبقى الأنسجة رطبة في جميع الأوقات أثناء أداء المناعية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 30-40 مل من الأجسام المضادة الأولية (المخفف في PBS-T، 1:400 إلى 1:50، اعتمادا على الضد) إلى الأنسجة داخل الدائرة. إذا تم تنفيذ حظر، تمييع الأجسام المضادة الأولية في برنامج تلفزيوني-T زائد 1٪ BSA. تم تخفيفه المضادة للأشعة غاما تويولين الضد (لتلطيخ centrosomes في الشكل 4) 1:100. احتضان في رطبة، غرفة مظلمة (على سبيل المثال. علبة بلاستيكية مغلقةمع المناشف مبللة ورقة) لمدة 2 ساعة في درجة حرارة الغرفة أو بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغسل الشرائح في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة 3X. إذا تم تنفيذ حظر، يغسل مرتين في برنامج تلفزيوني-T ومرة ​​واحدة في برنامج تلفزيوني (5 دقائق في درجة حرارة الغرفة لكل منهما). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 30-40 مل من fluorophore مترافق الضد الثانوية (1:400 المخفف في برنامج تلفزيوني) إلى الأنسجة واحتضان في الظلام لمدة 1-2 ساعة في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغسل الشرائح في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تكرار 2X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 30-40 مل من دابي الحل (0.2 ملغ / مل في برنامج تلفزيوني) إلى الأنسجة داخل الدائرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع بلطف زلة غطاء زجاجي على الأنسجة، مع الحرص على تجنب احتباس فقاعات الهواء. إذا يجب أن تظهر فقاعات الهواء، تحرك بحذر حول انزلاق الغطاء دون تدمير الاسكواش حتى الفقاعات الهروب من جانبي انزلاق الغطاء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام تنظيف مسح لطخة الزائدة دابي من حواف الشريحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ختم زلة تغطية إلى الشريحة باستخدام طلاء الأظافر واضحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام هذا المستحضرداخل ساعة القادمة 3-4 لعرض الخلايا immunostained بواسطة المجهر الفلورسنت. للتخزين على المدى الطويل من الشرائح (تصل إلى عدة أسابيع على الأقل)، واستخدام وسائل الاعلام من الصعب القائم على جبل الجلسرين مع دابي، وتخزين الشرائح في -20 ˚ C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدلا من ذلك، وتحديد العينات في الميثانول بدلا من الفورمالديهايد (اعتمادا على مستضد). بعد الانتهاء من البروتوكول بأكمله من خلال الخطوة 3.2، تزج الشرائح من الخصيتين ممرود في الميثانول لمدة 10 دقيقة عند درجة حرارة -20 درجة مئوية، والمضي قدما في الخطوة 3.5 فصاعدا. </li></ol>

<ol>
	<li>McKim, K. S., Joyce, E. F., Jang, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytological+analysis+of+meiosis+in+fixed+Drosophila+ovaries.">Cytological analysis of meiosis in fixed Drosophila ovaries.</a> Methods Mol. Biol. 558, 197-216 (2009).</li><li>Weil, T. T., Parton, R. M., Davis, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparing+individual+Drosophila+egg+chambers+for+live+imaging.">Preparing individual Drosophila egg chambers for live imaging.</a> J. Vis. Exp. , (2012).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila Protocols. , 87-109 (2000).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunostaining+of+Drosophila+testes.">Immunostaining of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1273-1275 (2011).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methanol-acetone+fixation+of+Drosophila+testes.">Methanol-acetone fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1270-1272 (2011).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+live+testis+squashes+in+Drosophila.">Preparation of live testis squashes in Drosophila.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, (2011).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Formaldehyde+fixation+of+Drosophila+testes.">Formaldehyde fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, (2012).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Paraformaldehyde+fixation+of+Drosophila+testes.">Paraformaldehyde fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 102-104 (2012).</li><li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=F-actin+staining+of+Drosophila+testes.">F-actin staining of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 105-106 (2012).</li><li>Kibanov, M. V., Kotov, A. A., Olenina, L. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multicolor+fluorescence+imaging+of+whole-mount+Drosophila+testes+for+studying+spermatogenesis.">Multicolor fluorescence imaging of whole-mount Drosophila testes for studying spermatogenesis.</a> Anal. Biochem. 436, 55-64 (2013).</li><li>Singh, S. R., Hou, S. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunohistological+techniques+for+studying+the+Drosophila+male+germline+stem+cell.">Immunohistological techniques for studying the Drosophila male germline stem cell.</a> Methods Mol. Biol. 450, 45-59 (2008).</li><li>Zamore, P. D., Ma, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+Drosophila+melanogaster+Testes.">Isolation of Drosophila melanogaster Testes.</a> J. Vis. Exp. (2641), (2011).</li><li>de Cuevas, M., Matunis, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+stem+cell+niche:+lessons+from+the+Drosophila+testis.">The stem cell niche: lessons from the Drosophila testis.</a> Development. 138, 2861-2869 (2011).</li><li>Fabian, L., Brill, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+spermiogenesis:+Big+things+come+from+little+packages.">Drosophila spermiogenesis: Big things come from little packages.</a> Spermatogenesis. 2, 197-212 (2012).</li><li>Giansanti, M. G., Sechi, S., Frappaolo, A., Belloni, G., Piergentili, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokinesis+in+Drosophila+male+meiosis.">Cytokinesis in Drosophila male meiosis.</a> Spermatogenesis. 2, 185-196 (2012).</li><li>Matunis, E. L., Stine, R. R., de Cuevas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+advances+in+Drosophila+male+germline+stem+cell+biology.">Recent advances in Drosophila male germline stem cell biology.</a> Spermatogenesis. 2, 137-144 (2012).</li><li>McKee, B. D., Yan, R., Tsai, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meiosis+in+male+Drosophila.">Meiosis in male Drosophila.</a> Spermatogenesis. 2, 167-184 (2012).</li><li>Zoller, R., Schulz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Drosophila+cyst+stem+cell+lineage:+Partners+behind+the+scenes.">The Drosophila cyst stem cell lineage: Partners behind the scenes.</a> Spermatogenesis. 2, 145-157 (2012).</li><li>Cenci, G., Bonaccorsi, S., Pisano, C., Verni, F., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromatin+and+microtubule+organization+during+premeiotic,+meiotic+and+early+postmeiotic+stages+of+Drosophila+melanogaster+spermatogenesis.">Chromatin and microtubule organization during premeiotic, meiotic and early postmeiotic stages of Drosophila melanogaster spermatogenesis.</a> J. Cell Sci.. 107, 3521-3534 (1994).</li><li>Rebollo, E., Gonzalez, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualizing+the+spindle+checkpoint+in+Drosophila+spermatocytes.">Visualizing the spindle checkpoint in Drosophila spermatocytes.</a> EMBO Rep. 1, 65-70 (2000).</li><li>Castrillon, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toward+a+molecular+genetic+analysis+of+spermatogenesis+in+Drosophila+melanogaster:+characterization+of+male-sterile+mutants+generated+by+single+P+element+mutagenesis.">Toward a molecular genetic analysis of spermatogenesis in Drosophila melanogaster: characterization of male-sterile mutants generated by single P element mutagenesis.</a> Genetics. 135, 489-505 (1993).</li><li>Giansanti, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+dissection+of+meiotic+cytokinesis+in+Drosophila+males.">Genetic dissection of meiotic cytokinesis in Drosophila males.</a> Mol. Biol. Cell. 15, 2509-2522 (2004).</li><li>Wakimoto, B. T., Lindsley, D. L., Herrera, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toward+a+comprehensive+genetic+analysis+of+male+fertility+in+Drosophila+melanogaster.">Toward a comprehensive genetic analysis of male fertility in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 167, 207-216 (2004).</li><li>Fuller, M. T., Bate, M., Martinez-Arias, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Development of Drosophila melanogaster. , 71-147 (1993).</li><li>Wolfner, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tokens+of+love:+functions+and+regulation+of+Drosophila+male+accessory+gland+products.">Tokens of love: functions and regulation of Drosophila male accessory gland products.</a> Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 179-192 (1997).</li><li>Tram, U., Wolfner, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Male+seminal+fluid+proteins+are+essential+for+sperm+storage+in+Drosophila+melanogaster.">Male seminal fluid proteins are essential for sperm storage in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 153, 837-844 (1999).</li><li>Kemphues, K. J., Raff, E. C., Raff, R. A., Kaufman, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutation+in+a+testis-specific+beta-tubulin+in+Drosophila:+analysis+of+its+effects+on+meiosis+and+map+location+of+the+gene.">Mutation in a testis-specific beta-tubulin in Drosophila: analysis of its effects on meiosis and map location of the gene.</a> Cell. 21, 445-451 (1980).</li><li>Gunsalus, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutations+in+twinstar,+a+Drosophila+gene+encoding+a+cofilin/ADF+homologue,+result+in+defects+in+centrosome+migration+and+cytokinesis.">Mutations in twinstar, a Drosophila gene encoding a cofilin/ADF homologue, result in defects in centrosome migration and cytokinesis.</a> J. Cell Biol. 131, 1243-1259 (1995).</li><li>Anderson, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asunder+is+a+critical+regulator+of+dynein-dynactin+localization+during+Drosophila+spermatogenesis.">Asunder is a critical regulator of dynein-dynactin localization during Drosophila spermatogenesis.</a> Mol. Biol. Cell. 20, 2709-2721 (2009).</li><li>Sitaram, P., Anderson, M. A., Jodoin, J. N., Lee, E., Lee, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+dynein+localization+and+centrosome+positioning+by+Lis-1+and+asunder+during+Drosophila+spermatogenesis.">Regulation of dynein localization and centrosome positioning by Lis-1 and asunder during Drosophila spermatogenesis.</a> Development. 139, 2945-2954 (2012).</li><li>Martins, A. R., Machado, P., Callaini, G., Bettencourt-Dias, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microscopy+methods+for+the+study+of+centriole+biogenesis+and+function+in+Drosophila.">Microscopy methods for the study of centriole biogenesis and function in Drosophila.</a> Methods in cell biology. 97, 223-242 (2010).</li><li>Maimon, I., Gilboa, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissection+and+staining+of+Drosophila+larval+ovaries.">Dissection and staining of Drosophila larval ovaries.</a> J. Vis. Exp. (10), (2011).</li><li>Gonzalez, C., Casal, J., Ripoll, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+between+chromosome+content+and+nuclear+diameter+in+early+spermatids+of+Drosophila+melanogaster.">Relationship between chromosome content and nuclear diameter in early spermatids of Drosophila melanogaster.</a> Genet. Res. 54, 205-212 (1989).</li><li>Liebrich, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+cytochalasin+B+and+colchicine+on+the+morphogenesis+of+mitochondria+in+Drosophila+hydei+during+meiosis+and+early+spermiogenesis.+An+in+vitro+study.">The effects of cytochalasin B and colchicine on the morphogenesis of mitochondria in Drosophila hydei during meiosis and early spermiogenesis. An in vitro study.</a> Cell Tissue. Res. 224, 161-168 (1982).</li><li>Wong, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PIP2+hydrolysis+and+calcium+release+are+required+for+cytokinesis+in+Drosophila+spermatocytes.">PIP2 hydrolysis and calcium release are required for cytokinesis in Drosophila spermatocytes.</a> Curr. Biol. 15, 1401-1406 (2005).</li><li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes.">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118, 401-415 (1993).</li><li>White-Cooper, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+cell+type+and+stage-specific+ectopic+gene+expression+and+RNAi+induction+in+the+Drosophila+testis.">Tissue cell type and stage-specific ectopic gene expression and RNAi induction in the Drosophila testis.</a> Spermatogenesis. 2, 11-22 (2012).</li><li>Rebollo, E., Llamazares, S., Reina, J., Gonzalez, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+noncentrosomal+microtubules+to+spindle+assembly+in+Drosophila+spermatocytes.">Contribution of noncentrosomal microtubules to spindle assembly in Drosophila spermatocytes.</a> PLoS Biol. 2, (2004).</li><li>Cheng, J., Hunt, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-lapse+live+imaging+of+stem+cells+in+Drosophila+testis.">Time-lapse live imaging of stem cells in Drosophila testis.</a> Curr. Protoc. Stem Cell. Biol.. 2, 10-1002 (2009).</li><li>Sheng, X. R., Matunis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live+imaging+of+the+Drosophila+spermatogonial+stem+cell+niche+reveals+novel+mechanisms+regulating+germline+stem+cell+output.">Live imaging of the Drosophila spermatogonial stem cell niche reveals novel mechanisms regulating germline stem cell output.</a> Development. 138, 3367-3376 (2011).</li><li>Belloni, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutations+in+Cog7+affect+Golgi+structure,+meiotic+cytokinesis+and+sperm+development+during+Drosophila+spermatogenesis.">Mutations in Cog7 affect Golgi structure, meiotic cytokinesis and sperm development during Drosophila spermatogenesis.</a> J. Cell Sci. 125, 5441-5452 (2012).</li><li>Moon, S., Cho, B., Min, S. H., Lee, D., Chung, Y. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+THO+complex+is+required+for+nucleolar+integrity+in+Drosophila+spermatocytes.">The THO complex is required for nucleolar integrity in Drosophila spermatocytes.</a> Development. 138, 3835-3845 (2011).</li><li>Wang, Z., Mann, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Requirement+for+two+nearly+identical+TGIF-related+homeobox+genes+in+Drosophila+spermatogenesis.">Requirement for two nearly identical TGIF-related homeobox genes in Drosophila spermatogenesis.</a> Development. 130, 2853-2865 (2003).</li></ol>

يعلن الكتاب أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

على الرغم من أن الخصيتين من نوع البرية الذباب يمكن تحديدها بسهولة بسبب اللون الأصفر بهم (على النقيض من الأنسجة البيضاء المجاورة)، الخصيتين متحولة من الذباب الأبيض هم من البيض، وبالتالي يمكن أحيانا أن الخلط بينه وبين القناة الهضمية. سلالات معظم المعدلة وراثيا، ا...

الخصيتين ذبابة الفاكهة هي نظام نموذج مثالي لدراسة العديد من العمليات البيولوجية بما في ذلك تنظيم الخلايا الجذعية، والانقسام الاختزالي، وتطوير الحيوانات المنوية 13-18. والخلايا المنوية ومغزل على الانتصافي كبيرة وبالتالي مريحة للتحليل الخلوي، واسترخاء نقاط التفتيش خلال دورة الخلية الحيوانات المنوية تيسير دراسة الطفرات في الجينات دورة الخلية. أنواع مختلفة من الخلايا يمكن ملاحظة التقدم في أمر على طول الخصيتين، وأي خلل في الحيوانات المنوية يمكن أن يؤدي إلى تغييرات في هذا الترتيب العام. هذه الميزات جنبا إلى جنب مع الأدوات الوراثية ذبابة الفاكهة قد سهلت تحليل طفرية من الحيوانات المنوية 21-23. وقد تم تحديد مراحل تكوين الحيوانات المنوية ذبابة الفاكهة جيدا. خلايا سلالة الجرثومية التي تتطور بشكل متزامن داخل الخراجات بالتتابع تقدم من خلال مراحل تكوين الحيوانات المنوية على طول الخصية. خلال بوعشر والإنقسامية والانقسامات الانتصافي من الخلايا الجرثومية الذكور، يحدث الانقسام السيتوبلازمي مثل هذه غير كامل أن الخلايا الوليدة لا تزال متصلة بواسطة جسور حشوية المعروفة باسم قنوات حلقة (الشكل 1). غيض من قمية الخصية يحتوي على السكان من الخلايا الجذعية سلالة الجرثومية التي تؤدي إلى خلايا النطفة، التي تخضع لأربعة أقسام الإنقسامية مع الانقسام السيتوبلازمي غير مكتملة لتوليد الخراجات 16 خلية من الخلايا المنوية الأولية. بعد المرحلة S السابق للانتصاف، الخلايا المنوية الأولية أدخل G2، وهي فترة طويلة من النمو الذي يزيد من حجم ~ ~ الخلوية 25 أضعاف خلال 90 ساعة. التقدم من خلال الانقسام الاختزالي الأول والانقسام الاختزالي الثاني النتائج في تشكيل الخراجات 32 خلية من الخلايا المنوية الثانوية والخراجات 64 خلية من طلائع منوية فرداني، على التوالي. غير ناضجة، طلائع منوية الجولة الخضوع لإعادة عرض الخلوية واسعة لتشكيل الحيوانات المنوية الناضجة. الخلايا بعد الانتصافي، ولا سيما حزم من التمطيط وطلائع منوية ناضجة، تحتل جزءا كبيرا من حجم الخصية. Tوقال انه نقل ناجحة من الحيوانات المنوية وظيفية لالذباب الإناث يتطلب التنسيق بين أجزاء مختلفة من الجهاز التناسلي الذكري، والتي تتألف من العديد من الهياكل تقرن (الخصيتين والحويصلات المنوية والغدد ملحق) والقناة قذفي واحد (الشكل 2). ويتم إنتاج الحيوانات المنوية داخل الخصيتين وتخزينها داخل الحويصلات المنوية حتى الجماع 24. الغدد التبعي تحتوي على خلايا إفرازية التي تنتج السائل المنوي. الحيوانات المنوية المهاجرة من الحويصلات المنوية تختلط مع السائل المنوي داخل القناة قذفي، التي يتم توصيلها إلى كل من الحويصلات المنوية والغدد التبعي. هذا الخليط من الحيوانات المنوية والسائل المنوي ويتم ضخ في نهاية المطاف للخروج من الذكور في المهبل من الإناث تطير من خلال لمبة قذفي تقع في نهاية الخلفي من البطن الذكور 25. البروتينات داخل السائل المنوي ضرورية لتخزين لفترة طويلة من الحيوانات المنوية داخل الأجهزة المتخصصة المعروفة باسم spermathecae في مندوبالمسالك roductive الإناث ذبابة الفاكهة 26. تتوفر طرق ممتازة لعزل الخصيتين ذبابة الفاكهة والتصور من الخلايا في مراحل مختلفة من الحيوانات المنوية في الكتابات العلمية 3-12. نحن هنا لإضافة هذه الهيئة من المعرفة من خلال تقديم أمثلة من هذه البروتوكولات مع مظاهرة الفيديو المرفقة. ويستند بروتوكول لإعداد الخصيتين الحية عينات للمرحلة التباين المجهري على الطريقة الموصوفة سابقا 27. ويستند بروتوكول لتثبيت الفورمالديهايد والمناعية من الخصيتين أيضا على الطريقة الموصوفة سابقا 28. وقد استخدمت الأساليب الموصوفة هنا في العديد من الدراسات من ذبابة الفاكهة الحيوانات المنوية (على سبيل المثال، لتقييم أدوار داينين، أنيبيب المحركات الموجهة ناقص نهاية، خلال ذبابة الفاكهة الحيوانات المنوية). بالإضافة إلى البروتوكولات الأساسية، وتقدم اقتراحات لvaryinز تشريح وذلك لإثراء للأمهات المني، الخلايا المنوية، أو الحيوانات المنوية الناضجة. طرق مختلفة لمعالجة الخصيتين بحيث الخراجات إما لا تزال سليمة أو تتعطل حسب الحاجة موصوفة. ميزة في استخدام الخصيتين ذبابة الفاكهة كنظام نموذج هو أنه، بالمقارنة مع البويضات والأجنة ذبابة الفاكهة، والأجسام المضادة والأصباغ يمكن بسهولة اختراق الخلايا التالية تشتتهم من الخصيتين، وأقل مطلوبة الخطوات الغسيل، وبالتالي، لا يمكن أن يؤديها البروتوكولات في نسبيا وقت قصير.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1013">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:351px;">Sylgard</td>
			<td style="width:215px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:127px;">SYLG184</td>
			<td style="width:321px;">Two-part silicon elastomer for making silicone-coated dissection dish from Kimax Petri dish</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">PAP pen</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">NC9888126</td>
			<td style="width:321px;">Ted Pella #22309</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Clear nail protector</td>
			<td style="width:215px;">Wet n Wild</td>
			<td style="width:127px;">7780235001</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI</td>
			<td style="width:215px;">Life Technologies</td>
			<td>P36931</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Mouse anti-gamma-tubulin antibody (clone GTU-88)</td>
			<td style="width:215px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>T6557</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cy3-AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG&#160;</td>
			<td style="width:215px;">Jackson ImmunoResearch</td>
			<td>115-165-003</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Triton X-100</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">BP151-100</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ethanol</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">AC61511-0040</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Methanol</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">A412-4</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">16% Formaldehyde</td>
			<td style="width:215px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">28908</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:351px;">Sigmacote</td>
			<td style="width:215px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:127px;">SL2</td>
			<td style="width:321px;">Use according to manufacturer&#39;s directions to siliconize cover slips</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">DAPI</td>
			<td style="width:215px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:127px;">D-9542</td>
			<td style="width:321px;">0.5 mg/ml in 75% ethanol; store at -20&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:351px;">NaCl</td>
			<td style="width:215px;">Research Products International Corp.</td>
			<td style="width:127px;">S23020</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Na2HPO4</td>
			<td style="width:215px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:127px;">S9763</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">NaH2PO4</td>
			<td style="width:215px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:127px;">S0751</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Kimwipes delicate task wipers</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td>S47299</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:351px;">BSA</td>
			<td style="width:215px;">Research Products International Corp.</td>
			<td style="width:127px;">A30075</td>
			<td style="width:321px;">Molecular biology grade</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;">Glass Coplin staining jar, screw cap</td>
			<td style="width:215px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>70315</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Single frosted microscope slides</td>
			<td>Corning</td>
			<td>2948-75X25</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;">Poly-L-lysine coated microscope slides</td>
			<td>Polysciences, Inc.</td>
			<td>22247-1</td>
			<td style="width:321px;">Optional (to replace untreated microscope slides )</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Square cover glass</td>
			<td>Corning</td>
			<td style="width:127px;">2865-22</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Razor blades</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">12-640</td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Kimax Petri dish</td>
			<td style="width:215px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:127px;">S31473</td>
			<td style="width:321px;">Kimble #23060 10015 EMD</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>52100-51S</td>
			<td>Pattern 5 INOX</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;"></td>
			<td style="width:215px;"></td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;"></td>
			<td style="width:215px;"></td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Name of Equipment</td>
			<td style="width:215px;">Company</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Stemi 2000-CS stereoscope</td>
			<td style="width:215px;">Carl Zeiss</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Eclipse 80i</td>
			<td style="width:215px;">Nikon</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Plan-Fluor 40x objective</td>
			<td style="width:215px;">Nikon</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Axiophot</td>
			<td style="width:215px;">Carl Zeiss</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:351px;">Plan-Neofluar Ph2 40x objective</td>
			<td style="width:215px;">Carl Zeiss</td>
			<td style="width:127px;"></td>
			<td style="width:321px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cytological analysis of spermatogenesis: live and fixed preparations of drosophila testes

ذبابة الفاكهة السوداء البطن هو نظام نموذجي القوية التي استخدمت على نطاق واسع لتوضيح مجموعة متنوعة من العمليات البيولوجية. على سبيل المثال، ساهمت الدراسات كل من الإناث والذكور خطوط الجرثومية من ذبابة الفاكهة إلى حد كبير في الفهم الحالي للالانقسام الاختزالي وكذلك بيولوجيا الخلايا الجذعية. تتوفر بروتوكولات ممتازة في الأدب لعزل والتصوير من المبيضين والخصيتين ذبابة الفاكهة 3-12. هنا، يتم وصف طرق للتشريح وإعداد الخصيتين ذبابة الفاكهة لتحليل مجهري مع مظاهرة الفيديو المرفقة. يتم عرض بروتوكول للعزل الخصيتين من البطن من الذكور البالغين وإعداد الشرائح من الأنسجة الحية لتحليلها من قبل على النقيض من المرحلة المجهري وكذلك بروتوكول لتحديد والمناعية الخصيتين لتحليلها من قبل مضان المجهري. هذه التقنيات يمكن تطبيقها في توصيف المسوخ ذبابة الفاكهة الذي يحمل دefects في الحيوانات المنوية وكذلك في تصور تعريب التحت خلوية من البروتينات.

ويرد مثال على الزوج تشريح بشكل صحيح من ذبابة الفاكهة الذكور الأجهزة التناسلية في الشكل 2A. وترد الخصيتين إزالتها من البطن من الكبار ذبابة الذكور عادة إلى القناة قذفي (البني والشكل 2A &#39;) وزوج من الغدد التبعي (الأخضر والشكل 2A&#39;) عن طريق ز...

Watch this Scientific Journal Video about Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes at JoVE.com

Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes

وصفت وسائل لعزل وإعداد ذبابة الفاكهة الخصيتين عينات (العيش وثابتة) للتصوير من قبل على النقيض من المرحلة ومضان المجهري في هذه الوثيقة.

تحليل الخلوي الحيوانات المنوية: الأعمال التحضيرية لايف والثابتة من<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; الخصية

Drosophila melanogaster is a powerful model system that has been widely used to elucidate a variety of biological processes. For example, studies of both ...

cytological-analysis-spermatogenesis-live-fixed-preparations

Research

JoVE Journal

Biology

Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes

25.9K Views.  Vanderbilt University Medical Center.  وصفت وسائل لعزل وإعداد ذبابة الفاكهة الخصيتين عينات (العيش وثابتة) للتصوير من قبل على النقيض من المرحلة ومضان المجهري في هذه الوثيقة. 

Video: Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes

Thin Sectioning of Slice Preparations for Immunohistochemistry

Many investigations in neuroscience, as well as other disciplines, involve studying small, yet macroscopic pieces or sections of tissue that have been preserved, freshly removed, or excised but kept viable, as in slice preparations of brain tissue.  Subsequent microscopic studies of this material can be challenging, as the tissue samples may be difficult to handle.  Demonstrated here is a method for obtaining thin cryostat sections of tissue with a thickness that may range from 0.2-5.0 mm.  We routinely cut 400 micron thick Vibratome brain slices serially into 5-10 micron coronal cryostat sections.  The slices are typically first used for electrophysiology experiments and then require microscopic analysis of the cytoarchitecture of the region from which the recordings were observed.  We have constructed a simple device that allows controlled and reproducible preparation and positioning of the tissue slice.  This device consists of a cylinder 5 cm in length with a diameter of 1.2 cm, which serves as a freezing stage for the slice.  A ring snugly slides over the cylinder providing walls around the slice allowing the tissue to be immersed in freezing compound (e.g., OCT).  This is then quickly frozen with crushed dry ice and the resulting  wafer  can be position easily for cryostat sectioning.  Thin sections can be thaw-mounted onto coated slides to allow further studies to be performed, such as various staining methods, in situ hybridization, or immunohistochemistry, as demonstrated here.

The present method allows reproducible cryostat sectioning of small, difficult-to-manage, tissue pieces, such as biopsies and brain slices. We utilize a simple aluminum freezing stage to facilitate handling of tissue and a standard cryostat to routinely produce 5-10 micron serial sections from 400 micron thick brain slices.

Sectioning رقيقة من الاستعدادات لشريحة المناعية

Many investigations in neuroscience, as well as other disciplines, involve studying small, yet macroscopic pieces or sections of tissue that have been ...

Live Imaging Of Drosophila melanogaster Embryonic Hemocyte Migrations

Many studies address cell migration using in vitro methods, whereas the physiologically relevant environment is that of the organism itself. Here we present a protocol for the mounting of Drosophila melanogaster embryos and subsequent live imaging of fluorescently labeled hemocytes, the embryonic macrophages of this organism. Using the Gal4-uas system1 we drive the expression of a variety of genetically encoded, fluorescently tagged markers in hemocytes to follow their developmental dispersal throughout the embryo. Following collection of embryos at the desired stage of development, the outer chorion is removed and the embryos are then mounted in halocarbon oil between a hydrophobic, gas-permeable membrane and a glass coverslip for live imaging. In addition to gross migratory parameters such as speed and directionality, higher resolution imaging coupled with the use of fluorescent reporters of F-actin and microtubules can provide more detailed information concerning the dynamics of these cytoskeletal components.

Live Imaging Of Drosophila melanogaster Embryonic Hemocyte Migrations

Drosophila hemocytes disperse over the entirety of the developing embryo. This protocol demonstrates how to mount and image these migrations using embryos with fluorescently labelled hemocytes.

يعيش تصوير ذبابة الفاكهة السوداء البطن هجرات كرية دموية الجنينية

Many studies address cell migration using in vitro methods, whereas the physiologically relevant environment is that of the organism itself. Here we ...

Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging

The Drosophila brain and visual system are widely utilized model systems to study neuronal development, function and degeneration. Here we show three preparations of the brain and visual system that cover the range from the developing eye disc-brain complex in the developing pupae to individual eye and brain dissection from adult flies. All protocols are optimized for the live culture of the preparations. However, we also present the conditions for fixed tissue immunohistochemistry where applicable. Finally, we show live imaging conditions for these preparations using conventional and resonant 4D confocal live imaging in a perfusion chamber. Together, these protocols provide a basis for live imaging on different time scales ranging from functional intracellular assays on the scale of minutes to developmental or degenerative processes on the scale of many hours.

Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging

This protocol describes three Drosophila preparations: 1) adult brain dissection, 2) adult retina dissection and 3) developing eye disc- brain complexes dissection. Emphasis is laid on special preparation techniques and conditions for live imaging, although all preparations can be used for fixed tissue immunohistochemistry.

إعداد وتطوير الكبار ذبابة الفاكهة الأمخاخ والشبكية للتصوير لايف

The Drosophila brain and visual system are widely utilized model systems to study neuronal development, function and degeneration. Here we show three ...

Isolation of Drosophila melanogaster Testes

The testes of Drosophila melanogaster provide an important model for the study of stem cell maintenance and differentiation, meiosis, and soma-germline interactions. Testes are typically isolated from adult males 0-3 days after eclosion from the pupal case. The testes of wild-type flies are easily distinguished from other tissues because they are yellow, but the testes of white mutant flies, a common genetic background for laboratory experiments are similar in both shape and color to the fly gut. Performing dissection on a glass microscope slide with a black background makes identifying the testes considerably easier. Testes are removed from the flies using dissecting needles. Compared to protocols that use forceps for testes dissection, our method is far quicker, allowing a well-practiced individual to dissect testes from 200-300 wild-type flies per hour, yielding 400-600 testes. Testes from white flies or from mutants that reduce testes size are harder to dissect and typically yield 200-400 testes per hour.

Isolation of Drosophila melanogaster Testes

Drosophila melanogaster testes can be rapidly and efficiently isolated from adult males using dissecting needles. With practice, one can readily isolate in one or two days an amount of testes sufficient for the analysis of DNA or RNA by high throughput sequencing or more traditional molecular biology methods or of protein for antibody- or enzyme-based assays.

عزلة ذبابة الفاكهة السوداء البطن الخصيات

The testes of Drosophila melanogaster provide an important model for the study of stem cell maintenance and differentiation, meiosis, and soma-germline ...

Quantitative Live Cell Fluorescence-microscopy Analysis of Fission Yeast

Several microscopy techniques are available today that can detect a specific protein within the cell. During the last decade live cell imaging using fluorochromes like Green Fluorescent Protein (GFP) directly attached to the protein of interest has become increasingly popular 1. Using GFP and similar fluorochromes the subcellular localisations and movements of proteins can be detected in a fluorescent microscope. Moreover, also the subnuclear localisation of a certain region of a chromosome can be studied using this technique. GFP is fused to the Lac Repressor protein (LacR) and ectopically expressed in the cell where tandem repeats of the lacO sequence has been inserted into the region of interest on the chromosome2. The LacR-GFP will bind to the lacO repeats and that area of the genome will be visible as a green dot in the fluorescence microscope. Yeast is especially suited for this type of manipulation since homologous recombination is very efficient and thereby enables targeted integration of the lacO repeats and engineered fusion proteins with GFP 3. Here we describe a quantitative method for live cell analysis of fission yeast. Additional protocols for live cell analysis of fission yeast can be found, for example on how to make a movie of the meiotic chromosomal behaviour 4. In this particular experiment we focus on subnuclear organisation and how it is affected during gene induction. We have labelled a gene cluster, named Chr1, by the introduction of lacO binding sites in the vicinity of the genes. The gene cluster is enriched for genes that are induced early during nitrogen starvation of fission yeast 5. In the strain the nuclear membrane (NM) is labelled by the attachment of mCherry to the NM protein Cut11 giving rise to a red fluorescent signal. The Spindle Pole body (SPB) compound Sid4 is fused to Red Fluorescent Protein (Sid4-mRFP) 6. In vegetatively growing yeast cells the centromeres are always attached to the SPB that is embedded in the NM 7. The SPB is identified as a large round structure in the NM. By imaging before and 20 minutes after depletion of the nitrogen source we can determine the distance between the gene cluster (GFP) and the NM/SPB. The mean or median distances before and after nitrogen depletion are compared and we can thus quantify whether or not there is a shift in subcellular localisation of the gene cluster after nitrogen depletion.

The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe, is a good model system to study basic cellular processes. Here we describe a method to perform quantitative live cell analysis of fission yeast. In this particular experiment we focus on organisation of the genome within the cell nucleus, but the method can also be used to study cytosolic factors.

الكمية خلية حية الإسفار - المجهري تحليل الخميرة الانشطار

Several microscopy techniques are available today that can detect a specific protein within the cell. During the last decade live cell imaging using ...

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

Live cell imaging is an important technique applied to a number of Drosophila tissues used as models to investigate topics such as axis specification, cell differentiation and organogenesis 1. Correct preparation of the experimental samples is a crucial, often neglected, step. The goal of preparation is to ensure physiological relevance and to establish optimal imaging conditions. To maintain tissue viability, it is critical to avoid dehydration, hypoxia, overheating or medium deterioration 2. 
 The Drosophila egg chamber is a well established system for examining questions relating, but not limited, to body patterning, mRNA localization and cytoskeletal organization 3,4. For early- and mid-stage egg chambers, mounting in halocarbon oil is good for survival in that it allows free diffusion of oxygen, prevents dehydration and hypoxia and has superb optical properties for microscopy. Imaging of fluorescent proteins is possible through the introduction of transgenes into the egg chamber or physical injection of labeled RNA, protein or antibodies 5-7. For example, addition of MS2 constructs to the genome of animals enables real time observation of mRNAs in the oocyte 8. These constructs allow for in vivo labeling of mRNA through utilization of the MS2 bacteriophage RNA stem loop interaction with its coat protein 9. 
 Here, we present a protocol for the extraction of ovaries as well as isolating individual ovarioles and egg chambers from the female Drosophila. For a detailed description of Drosophila oogenesis see Allan C. Spradling (1993, reprinted 2009) 10.

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

The Drosophila egg chamber is an excellent model for studying the mechanisms of mRNA localization. In order to capture the dynamic events that underpin the processes of localization, rapid high resolution imaging of live tissue is required. Here, we present a protocol for dissection and imaging of live samples with minimal disruption.

إعداد فردية ذبابة الفاكهة البيض غرف للتصوير لايف

Live cell imaging is an important technique applied to a number of Drosophila tissues used as models to investigate topics such as axis specification, ...

Live Imaging of GFP-labeled Proteins in Drosophila Oocytes

The Drosophila oocyte has been established as a versatile system for investigating fundamental questions such as cytoskeletal function, cell organization, and organelle structure and function. The availability of various GFP-tagged proteins means that many cellular processes can be monitored in living cells over the course of minutes or hours, and using this technique, processes such as RNP transport, epithelial morphogenesis, and tissue remodeling have been described in great detail in Drosophila oocytes1,2.
The ability to perform video imaging combined with a rich repertoire of mutants allows an enormous variety of genes and processes to be examined in incredible detail. One such example is the process of ooplasmic streaming, which initiates at mid-oogenesis3,4. This vigorous movement of cytoplasmic vesicles is microtubule and kinesin-dependent5 and provides a useful system for investigating cytoskeleton function at these stages.
Here I present a protocol for time lapse imaging of living oocytes using virtually any confocal microscopy setup.

Live Imaging of GFP-labeled Proteins in Drosophila Oocytes

A protocol for live imaging of GFP-tagged proteins or autofluorescent structures in individual Drosophila oocytes is described.

يعيش التصوير من البروتينات التي تحمل علامات GFP في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; البويضات

The  Drosophila oocyte has been established as a versatile system for investigating  fundamental questions such as cytoskeletal function, cell ...

Live Imaging of Apoptotic Cell Clearance during Drosophila Embryogenesis

The proper elimination of unwanted or aberrant cells through apoptosis and subsequent phagocytosis (apoptotic cell clearance) is crucial for normal development in all metazoan organisms. Apoptotic cell clearance is a highly dynamic process intimately associated with cell death; unengulfed apoptotic cells are barely seen in vivo under normal conditions. In order to understand the different steps of apoptotic cell clearance and to compare 'professional' phagocytes - macrophages and dendritic cells to 'non-professional' - tissue-resident neighboring cells, in vivo live imaging of the process is extremely valuable. Here we describe a protocol for studying apoptotic cell clearance in live Drosophila embryos. To follow the dynamics of different steps in phagocytosis we use specific markers for apoptotic cells and phagocytes. In addition, we can monitor two phagocyte systems in parallel: 'professional' macrophages and 'semi-professional' glia in the developing central nervous system (CNS). The method described here employs the Drosophila embryo as an excellent model for real time studies of apoptotic cell clearance.

Live Imaging of Apoptotic Cell Clearance during Drosophila Embryogenesis

Here we describe an effective method for studying dynamics of apoptotic cell clearance in vivo. This method employs live Drosophila embryos as a powerful model for monitoring phagocytosis of apoptotic cells using specific labeling of apoptotic cells and phagocytes.

يعيش التصوير من تخليص الخلية أفكارك أثناء<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; مرحلة التطور الجنيني

The  proper elimination of unwanted or aberrant cells through apoptosis and  subsequent phagocytosis (apoptotic cell clearance) is crucial for normal  ...

Live Cell Cycle Analysis of Drosophila Tissues using the Attune Acoustic Focusing Cytometer and Vybrant DyeCycle Violet DNA Stain

Flow cytometry has been widely used to obtain information about DNA content in a population of cells, to infer relative percentages in different cell cycle phases. This technique has been successfully extended to the mitotic tissues of the model organism Drosophila melanogaster for genetic studies of cell cycle regulation in vivo. When coupled with cell-type specific fluorescent protein expression and genetic manipulations, one can obtain detailed information about effects on cell number, cell size and cell cycle phasing in vivo. However this live-cell method has relied on the use of the cell permeable Hoechst 33342 DNA-intercalating dye, limiting users to flow cytometers equipped with a UV laser. We have modified this protocol to use a newer live-cell DNA dye, Vybrant DyeCycle Violet, compatible with the more common violet 405nm laser. The protocol presented here allows for efficient cell cycle analysis coupled with cell type, relative cell size and cell number information, in a variety of Drosophila tissues. This protocol extends the useful cell cycle analysis technique for live Drosophila tissues to a small benchtop analyzer, the Attune Acoustic Focusing Cytometer, which can be run and maintained on a single-lab scale.

Live Cell Cycle Analysis of Drosophila Tissues using the Attune Acoustic Focusing Cytometer and Vybrant DyeCycle Violet DNA Stain

A protocol for cell cycle analysis of live Drosophila tissues using the Attune Acoustic Focusing Cytometer is described. This protocol simultaneously provides information about relative cell size, cell number, DNA content and cell type via lineage tracing or tissue specific expression of fluorescent proteins in vivo.

تحليل دورة الخلية الحية من<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; الأنسجة باستخدام الصوتية أقلم التركيز عداد الكريات وVybrant DyeCycle البنفسج الحمض النووي وصمة عار

Flow cytometry has  been widely used to obtain information about DNA content in a population of  cells, to infer relative percentages in different cell ...

Analysis of Embryonic and Larval Zebrafish Skeletal Myofibers from Dissociated Preparations

The zebrafish has proven to be a valuable model system for exploring skeletal muscle function and for studying human muscle diseases. Despite the many advantages offered by in vivo analysis of skeletal muscle in the zebrafish, visualizing the complex and finely structured protein milieu responsible for muscle function, especially in whole embryos, can be problematic. This hindrance stems from the small size of zebrafish skeletal muscle (60 &mu;m) and the even smaller size of the sarcomere. Here we describe and demonstrate a simple and rapid method for isolating skeletal myofibers from zebrafish embryos and larvae. We also include protocols that illustrate post preparation techniques useful for analyzing muscle structure and function. Specifically, we detail the subsequent immunocytochemical localization of skeletal muscle proteins and the qualitative analysis of stimulated calcium release via live cell calcium imaging. Overall, this video article provides a straight-forward and efficient method for the isolation and characterization of zebrafish skeletal myofibers, a technique which provides a conduit for myriad subsequent studies of muscle structure and function.

Zebrafish are an emerging system for modeling human disorders of the skeletal muscle. We describe a fast and efficient method to isolate skeletal muscle myofibers from embryonic and larval zebrafish. This method yields a high-density myofiber preparation suitable for study of single skeletal muscle fiber morphology, protein subcellular localization, and muscle physiology.

تحليل الجنينية واليرقات الزرد الهيكل العظمي Myofibers من الاستعدادات فصلها

The zebrafish has  proven to be a valuable model system for exploring skeletal muscle function and  for studying human muscle diseases. Despite  the many ...