JoVE Logo

登录

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 研究方案
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

在一个活的动物研究干细胞分化的一个有吸引力的模式是涡虫扁虫。再生是由简单的截肢手术,很容易在一个基本的实验室进行的实验研究和药理学和基因(适合在体内 RNAi)的操纵,在这篇文章中的协议详细。

摘要

自由生活涡虫扁虫有一个历史悠久的实验使用,因为他们非凡的再生能力 1 。从这些动物切除的小片断,改革原体计划,缺少的车身结构的再生。例如,如果一个“主干”的片段是从一个完整的蠕虫切割,一个新的“头”将再生前方一个“尾巴”后方将重新恢复了原有的“头部到尾部的车身结构的极性截肢前(图1A)。

涡虫被称为“neoblasts'〜30种不同类型的细胞分化,在正常的身体动态平衡和执行组织再生的干细胞,是由再生。这种再生过程是可靠和容易证明。由于几个创业实验室,许多工具和功能基因的方法的奉献精神,现在已经为这个模型系统进行了优化。因此,相当最近已经取得了进展,在理解和操作基础 2-9涡虫的发育可塑性的分子事件。

涡模型系统将会以一个科学家的广泛利益。神经学家,模型给予机会研究整个神经系统的再生,而不是简单的再生/修复单个神经细胞的过程中,通常是在许多已建立的模型研究的重点。涡虫表达的神经递质10过多,代表的一项重要制度,为研究中枢神经系统的11,12的演变,行为甄别潜在的13,14

再生的结果是经得起药理和遗传apparoaches操纵。例如,可以进行筛选药物对再生的影响,只需放置在身体片段的药物含截肢后在不同时间点的解决方案。使用击倒方法( 在体内的RNAi),这可以实现,通过显微注射周期或喂食细菌表达双链RNA的结构8,9,15,可以研究单个基因的作用。这两种方法都可以产生高外显率,例如,双极动物16-21再生的视觉冲击的表型。为了便于采用这种模式和实施这种方法,我们将展示使用涡虫日本三角涡虫的药理学和基因检测(在体内RNAi技术通过喂食)的视频在这条协议。

研究方案

1。中继片段再生实验

  1. 再生实验前至少5天停喂的蠕虫病毒的队列,以确保动物废物和摄取食物(30〜完整的蠕虫,每个蠕虫〜8-10毫米长的饥饿后)的。
  2. 在检测的一天,冲洗与水预先冷冻的平整的冰盘,并用保鲜膜覆盖平的冰面。使用镊子,一个滤纸上的保鲜膜。
  3. 几滴泉水浸湿的滤纸。转移到过滤器使用的移液管(<20%过滤蠕虫)涡虫。蠕虫过滤器,如果有必要可以重新定位,通过与更多的泉水repipetting。删除多余的液体。
  4. 使用手术刀,截肢动物的前尖,咽( 图1A)前结束之间约中途一个单切头。
  5. 使用手术刀,截去尾部区域,由一个单一的削减约中间动物的尾部和后咽( 1A)结束。删除多余的粘液,用手术刀切割后蘸用70%乙醇的纸巾。用手术刀多余的乙醇。
  6. 转移到培养皿中(100 x 25毫米深)通过含有泉水钳过滤器。等待〜3分钟(伤口缝合,观察一个捏和伤口变黑)。
  7. 冲洗干净,滤纸的Petri菜含有所需再生法和转移到恒温培养箱(24℃)介质的主干片段。
  8. 分数再生表型〜1周后,当再生结构识别( 1A) 。

2。吡喹酮诱导再生:两极药理操纵

  1. 准备溶药物在DMSO(62.4mg 1ML PZQ 200MM股票)吡喹酮(PZQ)的股票。当天使用。
  2. 设为50毫升含药溶液中缓冲Montjuch盐(PZQ 90微米)。涡〜1分钟,以确保分散。
  3. 执行主干片段[#1],露出的树干碎片队列的最后一步[1.7] PZQ协议的详细以上的再生法。
  4. 24-48小时后,交换PZQ含有温泉水的媒体,洗衣机蠕虫(> 3)次。
  5. 返回蠕虫孵化器。分数两极(两个头, 图1B)切割后的一周。

3。再生的基因操作:在体内RNAi的喂养协议

  1. 检测前,准备鸡肝匀浆。丢弃从foodstock脂肪,黄颜色的部分,菜泥其余肝。过滤菜泥通过滤网和存储等分悬浮液(1.5ml离心管,-20℃)。
  2. 检测之前,准备aliquoting到1ML样品供应,储存于-20 ° C牛的红血细胞(红细胞)
  3. 选择用于RNAi的蠕虫病毒。三个同伙:感兴趣的基因,阳性对照组(基因与已知的RNA干扰表型;图1C,D和 E)和负控制(无RNAi的表型的基因,也有用的评估击倒水平相比,实验队列)。对于每个队列,使用〜250的蠕虫(〜8-10毫米长至少5天的饥饿后)。存放在塑料桶泉水。
  4. 对于每个RNAi的队列中,大肠杆菌表达dsRNA的目标感兴趣的基因大肠杆菌解冻股票[8],随着鸡肝匀浆管[3.1]和红细胞管[3.2]。
  5. 佩莱细菌(13000克,1分钟)。移除上清液2xYT媒体(〜700μl)和重新悬浮颗粒。 Recentrifuge,在冰上,丢弃上清液,沉淀的地方。
  6. 创建大缸径P200的枪头,切断提示结束。在鸡肝匀浆(150μL)和红细胞(50μL)的混合物创建RNAi的喂养混合彻底重悬细菌沉淀。取出离心中的气泡。
  7. 觅食,删除包含蠕虫的塑料浴盆的水多数(离开〜1英寸深入)。涡流浴缸集中在这个容器中的中心的蠕虫,和吸管RNAi在一个网罗蠕虫圈饲养的组合。请使用移液管,仔细同轴电缆上的RNAi喂养混合逃出,没有其他食客的干扰!
  8. 喂奶后(约1小时),确定,美联储以及涡虫。这些蠕虫从摄入的红细胞深红色着色。丢弃他人。
  9. 小心地更换新鲜的泉水喂养的解决方案,最大限度地减少干扰,防止食物的排泄。要做到这一点,轻轻地本地化蠕虫使用移液管的管的一侧,倒入水混浊,并仔细地用清水取代倾盆而下的浴缸对面的墙上。长时间暴露在空气Resubmerge涡虫很快也会导致食物排泄。
  10. 松散SE铝容器的盖子,并返回到培养箱(24℃)
  11. 重复RNAi在多个周期中喂养协议(〜2-3天),穿插协议#1]屏幕RNAi的表型再生周期。许多基因的有效供料和再生的一个标准协议显示在图2〜1个月,总工期。

修改这个计划,针对不同的基因作为最佳的协议将取决于mRNA的稳定性,组织定位,蛋白质perdurance,或排除多个喂养周期后再生一个表型的发展等因素。评估只是表型的显性筛选(明显),或定量PCR方法,有针对性的mRNA水平与阴性对照队列击倒水平。

4。代表性的成果:

主干片段再生实验是健壮的所有蠕虫应重新正常前后(“头到尾”)极性。这可以切割后的5天,前眼点(asterixed图1A)的出现,促成尽快拿下。然而,一周后完成恢复失去结构的形态发生。药理操纵主干片段再生PZQ产量双头蠕虫( 图1B)也很强大(欧共体50 = 87(+ - )11%的双极片段,70μM为48 小时 20 PZQ) 。两极发生在一个单一的再生周期。下在这些实验的疗效可能与药物的溶解度和/或存储,或使用不同的扁虫种PZQ是无效的问题。对于外显率较 ​​低的药物,通常用于anteriorization指数得分 22完整的两极的中间表型搁置。表型从积极的控制结构的RNAi, 如图1所示:RNAi 的日本三角涡虫6 - 1(D J六个- 1)的结果,在无眼型23( 1C),日本三角涡虫PC2的RNAi(DJ - PC2)在损失厌恶的光响应24( 图1D)和RNAi的结果, 日本三角涡虫βcatenin- 1(βcateninDJ - 1)的结果在两个为首的表型16-19日,从主干片段( 1E)21。这些表型,可以实现用下面这个简单的RNA干扰协议:DJ -六(FFxFx),DJ - PC2(FFFx),DJ -βcatenin- 1(FFxFx),其中F =饲养周期和x =分别再生周期。

figure-protocol-3011
图1:主干片段再生检测涡虫(上)和原理图(中) ,形象地展现切除主干片段的位置右键,躯干片段再生timecourse显示外观再生片段在指定的时间(天乙PZQ曝光产生。双头涡虫的图像C“无眼”DJ -六- 1 RNA干扰,D动的DJ - PC2的RNAi蠕虫(染成红色)轻厌恶反应,亏损相比,移动控制蠕虫(染色产生的蠕虫绿色),E双极型涡虫的DJ -βcatenin1的RNAi 。在Be,原来的RNAi蠕虫前到底是面向左侧。

figure-protocol-3467
图2:典型RNAi的协议包括多个喂养(F)和再生周期(X)是有效 D.许多基因敲除喂养和切割周期序列粳稻 。本议定书的个体基因可能需要修改,​​以产生最佳的结果,使用例如一个较少(括号)或更大数量的喂养和再生周期。

讨论

这里描述协议详细分析,研究和操纵涡虫三角涡再生的粳稻。他们很简单,不需要专用设备等,他们可以很容易地在实验室或教室进行。分析可以单独进行,或合并化学药物药效在体内的基因筛查,可以在候选基因水平上进行,或适应无偏见的,高通量筛选 8 。无论是耐人寻味的涡虫的生物学研究自己的权利,或在体内功能在哺乳动物的同源性研究组织再生的替代模型的评估,这些方法应推动多元化的研究人员的兴趣。

披露声明

没有利益冲突的声明。

致谢

在实验室的工作是由NSF(MCB0919933)和国立卫生研究院(GM088790)的支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
试剂供应商目录编号评论
泉水 Kandiyohi。高级沃特公司明尼苏达州明尼阿波利斯 N / A 其他形式的泉水也很好。审判第一的可行性分析。
1 ×缓冲蒙特伊克(Montjuich)盐:氯化钠(1.6毫米),氯化钙(1MM),硫酸镁(1MM),氯化镁(0.1MM),氯化钾(0.1毫米),碳酸氢钠(1.2MM),HEPES(1.5)。 pH值7.4在24 ° C。 多个供应商 N / A 人工水再生实验期间的药物治疗,以确保pH缓冲。 5 / 8 Holtfreter的解决方案是一个另类。
2xYT肉汤 Fisher Scientific则 BP2467 - 500 媒体= 31 g / L的。高压灭菌。
培养皿(100x25mm) Fisher Scientific则 08-757-11 在再生周期的房屋蠕虫
广场菜(100x100x15mm) Fisher Scientific则 08 - 757 - 11A 与水,冻结填补蠕虫切割面的冰盘
塑料桶:密保诺拉链式扭'N LOC(16盎司)。 各种零售商 N / A 便民水密封容器内的RNAi同伙
鸡肝商业杂货店 N / A 偏见,对有机用品,由于避免抗生素。
手搅拌机任何厨房供应商 N / A 使用鸡肝脏原浆
电线1毫米滤网任何厨房供应商 N / A 使用使劲鸡肝脏原浆
牛红细胞 Lampire生物实验室 7240807 冲到100%,并汇集了红细胞悬浮液
圆形滤纸的Whatman#3 1003 055
移液管 Fisher Scientific则 13-711-41
无菌,手术刀多个供应商 N / A
±吡喹酮西格玛爱秩序 P4668 在黑暗中商店粉末分装在4 ° C变干。
DJ -六1 GenBank中AJ557022.1 RNAi的“眼”23表型阳性对照
DJ -βcatenin- 1 GenBank中AB181913.1 RNAi的阳性对照两个为首的表 17
DJ - PC2 RNAi的阳性对照光厌恶表型24损失

参考文献

  1. Morgan, T. H. Experimental studies of the regeneration of Planaria maculata. Arch Entwm Org. 7, 364-397 .
  2. Robb, S. M., Ross, E., Sánchez Alvarado, A. SmedGD: the Schmidtea mediterranea genome database. Nucleic Acids Res. 36, 599-606 (2008).
  3. Forsthoefel, D. J., Newmark, P. A. Emerging patterns in planarian regeneration. Curr Opin Genet Dev. 19, 412-4120 (2009).
  4. Adell, T., Cebrià, F., Saló, E. Gradients in Planarian Regeneration and Homeostasis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2, (2010).
  5. Agata, K., Watanabe, K. Molecular and cellular aspects of planarian regeneration. Semin Cell Dev Biol. 10, 377-383 (1999).
  6. Newmark, P. A. &. a. m. p. ;. a. m. p., Sánchez-Alvarado, A. Not your father's planarian: a classic model enters the era of functional genomics. Nat Rev Genet. 3, 210-219 (2002).
  7. Reddien, P. W., Sánchez-Alvarado, A. Fundamentals of planarian regeneration. Ann Rev Cell Dev Biol. 20, 725-757 (2004).
  8. Reddien, P. W., Bermange, A. L., Murfitt, K. J., Jennings, J. R., Sánchez-Alvarado, A. Identification of genes needed for regeneration, stem cell function, and tissue homeostasis by systematic gene perturbation in planaria. Dev Cell. 8, 635-649 (2005).
  9. Newmark, P. A., Reddien, P. W., Cebria, F. &. a. m. p. ;. a. m. p., Sánchez-Alvarado, A. Ingestion of bacterially expressed double-stranded RNA inhibits gene expression in planarians. Proc Natl Acad Sci USA. 100, 11861-11865 (2003).
  10. Collins, J. J. Genome-Wide Analyses Reveal a Role for Peptide Hormones in Planarian Germline Development. PLoS Biology. 8, e10000509-e10000509 (2010).
  11. Cebrià, F. Regenerating the central nervous system: how easy for planarians!. Dev Genes Evol. , 733-748 (2007).
  12. Mineta, K. Origin and evolutionary process of the CNS elucidated by comparative genomics analysis of planarian ESTs. Proc Natl Acad Sci USA. 100, 7666-7671 (2003).
  13. Oviedo, N. J., Nicolas, C. L., Adams, D. S., Levin, M. Emerging Model Organisms. A Laboratory Manual Chapter. 8, (2009).
  14. Buttarelli, F. R., Pellicano, C., Pontieri, F. E. Neuropharmacology and behavior in planarians: translations to mammals. Comp Biochem Physiol. 147, 399-408 (2008).
  15. Sánchez-Alvarado, A., Newmark, P. A. Double-stranded RNA specifically disrupts gene expression during planarian regeneration. Proc Natl Acad Sci U S A. 96, 5049-5054 (1999).
  16. Gurley, K. A., Rink, J. C., Sánchez-Alvarado, A. Beta-catenin defines head versus tail identity during planarian regeneration and homeostasis. Science. 319, 323-327 (2008).
  17. Yazawa, S., Umesono, Y., Hayashi, T., Tarui, H., Agata, K. Planarian Hedgehog/Patched establishes anterior-posterior polarity by regulating Wnt signaling. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 22329-22334 (2009).
  18. Petersen, C. P., Reddien, P. W. Smed-betacatenin-1 is required for anteroposterior blastema polarity in planarian regeneration. Science. 319, 327-330 (2008).
  19. Iglesias, M., Gomez-Skarmeta, J. L., Saló, E., Adell, T. Silencing of Smed-betacatenin1 generates radial-like hypercephalized planarians. Development. 135, 1215-1221 (2008).
  20. Nogi, T., Zhang, D., Chan, J. D., Marchant, J. S., S, J. A novel biological activity of praziquantel requiring voltage-operated Ca2+ channel beta subunits: subversion of flatworm regenerative polarity. PLoS Negl Trop Dis. 3, e464-e464 (2009).
  21. Oviedo, N. J. Long-range neural and gap junction protein-mediated cues control polarity during planarian regeneration. Dev Biol. 339, 188-199 (2010).
  22. Nogi, T., Levin, M. Characterization of innexin gene expression and functional roles of gap-junctional communication in planarian regeneration. Dev Biol. 287, 314-335 (2005).
  23. Mannini, L. Djeyes absent (Djeya) controls prototypic planarian eye regeneration by cooperating with the transcription factor Djsix-1. Dev Biol. 269, 346-359 (2004).
  24. Agata, K. Structure of the planarian central nervous system (CNS) revealed by neuronal cell markers. Zoolog Sci. 15, 433-440 (1998).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

54

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。