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串联亲和纯化的蛋白结合合作伙伴的标识是稳健的做法。由于概念证明,这种方法的应用以及特色的翻译起始因子eIF4E共沉淀的宿主细胞因子参与翻译起始。这种方法是很容易适应任何细胞或病毒蛋白。
一个经常限制的关键一步,在了解主机和病毒蛋白的功能是相互作用的细胞或病毒蛋白伙伴的标识。有许多方法,使识别的互动合作伙伴,包括酵母双杂交系统,以及下拉检测用重组蛋白免疫沉淀和内源性蛋白质质谱鉴定1。最近的研究都强调实用的双亲和力标签介导的净化,再加上两个相互作用的蛋白质鉴定的具体洗脱步骤。这种方法称为串联亲和纯化(TAP)的,最初用于酵母2,3,但最近已经适应在哺乳动物细胞中的使用4-8。
作为证据的概念,我们已经建立了串联亲和纯化(TAP)的方法,利用良好的特点真核翻译起始因子TOR eIF4E的9,10。细胞翻译因子eIF4E是一个蜂窝eIF4F复杂的重要组成部分,涉及帽依赖的翻译起始10。在目前的研究中使用的TAP标签是两个G蛋白单位组成,由烟草蚀纹病毒(TEV)蛋白酶切割序列1链亲和素结合肽的分离。在目前的研究中使用的TAP标签组成的两个G蛋白单位和1链亲和素结合肽的分离,由烟草蚀纹病毒(TEV)蛋白酶切割序列8。放弃代克隆细胞系的需要,我们开发了一种快速的系统依赖于从episomally保持质粒的TAP标签的诱饵在pMEP4(Invitrogen公司)为基础蛋白表达。使用氯化镉诱导金属硫蛋白启动子控制的标签从这个质粒的小鼠eIF4E的表达。
通过结合到R的表达和随后的亲和纯化的裂解abbit抗体琼脂糖,TEV蛋白酶裂解,结合链霉联系琼脂糖和生物素洗脱随后确定了许多蛋白质显然是具体的eIF4E的下拉(时相比,控制细胞株单独表达TAP标签)。蛋白质的身份获得了从一维的SDS-PAGE和随后的串联质谱带切除。确定的组件包括知名eIF4E的结合蛋白eIF4G和4EBP-1。此外,eIF4F复杂的其他组成部分,其中eIF4E的是一个组件被确定,即eIF4A和聚A结合蛋白。识别能力,不仅直接约束力的合作伙伴以及二级相互作用的蛋白质,进一步突出了在未知功能的蛋白质的特性,这种方法的效用。
1。代细胞系:pMEP4转/表达
2。细胞裂解液的准备
3。结合兔IgG-琼脂糖
(注:应进行所有的自旋1200XĞ在冷冻离心机1分钟,在4°C,除非另有说明)
4。 TEV蛋白酶切割
(注:应进行所有的自旋1200XĞ在冷冻离心机在4℃1分钟,除非另有说明)
5。结合ULTRALINK固定的链霉加珠
(注:应进行所有的自旋1200XĞ在冷冻离心机1分钟,在4°C,除非另有说明)
6。素的链亲和素的结合肽和诱饵蛋白的洗脱
(注:应进行所有的自旋1200XĞ在冷冻离心机1分钟,在4°C,除非另有说明)
7。蛋白质浓度
8。分析
9。代表结果
1D的SDS-PAGE分析,从该协议的最终洗脱(样本7)确定的TAP标签eIF4E的结合伙伴的一个例子是在图2。这代表凝胶反映的复杂和丰富的自然与其他蛋白质在细胞中eIF4E的相互作用。在图2所示的阴性对照,从一个细胞只表达TAP标签生成的比较,说明这eIF4E的诱饵下拉的特殊性。在这种情况下集中的最终洗脱15%(样本7)使用Invitrogen公司从Silverquest银染色试剂盒染色前1D使用市售的预制梯度凝胶的SDS-PAGE分析。
通常50-85%,其余集中的最终洗脱(样本7)进行了分析与胶体考马斯染色(Invitrogen公司)。从整个车道的样品(凝胶片/条),然后提取和分析,质谱分析。
eIF4E的下拉鉴定的蛋白质进行过滤对从阴性对照,以确定非特异性结合合作伙伴的具有约束力的合作伙伴。确定最终的蛋白质使用这个TAP标签eIF4E的过程可以看出,在图2中,这是正常的蛋白质确定使用这种技术的代表。此外,还确定了一些eIF3亚基(数据未显示)。
图1。示意图串联亲和纯化过程。六步串联亲和纯化(TAP),协议涉及细胞的生成,细胞裂解,兔IgG琼脂糖凝胶免疫沉淀,TEV蛋白酶裂解,链霉亲和素磁珠亲和纯化,并终于素洗脱。
图2。串联亲和纯化的小鼠eIF4E的蛋白质。互动合作伙伴的N末端 抽头标签eIF4E的使用所附的协议,从真核细胞转染HEK293细胞进行纯化。一个20%的分数,最后洗脱(样本7),通过SDS-PAGE分析,预铸的4-12%梯度凝胶电泳的TAP-eIF4E的车道上。一个单独的标签(TAP车道)进行等效分析。用银染蛋白。随后通过对同一样品质量法确定的蛋白质强调这种凝胶。
缩写:eIF4G;真核翻译起始f演员4伽马,PABP认证;多聚腺苷酸结合蛋白,eIF4A:真核翻译起始因子4α,收缩压,eIF4E的;其余的TAP诱饵蛋白,含有融合的真核翻译起始因子4E,4EBPs;真核生物翻译起始因子4E结合的链亲和素的结合肽蛋白质,eIF4eNiF1l真核翻译起始因子4E核进口因子1,收缩压(SBP),其余的从TEV非稠合的TAP肽链霉结合肽。
说明这里的TAP标签技术演示为诱饵蛋白在真核细胞中分离的具有约束力的合作伙伴的高度特异性和严格的方法。这种方法可应用于细胞和病毒蛋白。据我们所知,这是第一次,这种技术已被应用到翻译起始因子eIF4E。知名eIF4E的结合蛋白eIF4G和使用这种技术的4EBPs鉴定,证实了这种方法的有效性。此外,鉴定eIF4F复杂的剩余部分,即eIF4A和PABP至证实,间接的互动关系和大专院校的复合物留在净化过程中的完整。 eIF4E的结合蛋白的典型多个亚型的识别也很明显。图2中更详细地描述了这些。
至于该方法的局限性,某些保健应采取的选择与问候诱饵蛋白和是否放置在N-或C-末端的TAG标签。这可能是最好进行功能检测,或本地化融合蛋白通过显微镜检查,以确保标签的衍生工具是功能完整的大规模纯化。积分膜或核蛋白质不一定被释放裂解步骤中所述的条件相对温和的洗涤剂。与所有免疫沉淀和类似拉下来分析,修改,可以在提高效率的裂解裂解液的性质和浓度的洗涤剂。离子浓度的溶解和洗涤缓冲也可以修改,增加或减少净化的严格。它也可以执行初步净化温和条件下标准(如上所述),但随后分裂的链亲和素珠(5.8节)为4-5等份,随后被冲下离子浓度增加ditions。这可能使用户能够确定的最佳条件,消除非特异性相互作用的蛋白质。整个过程中也可以使用互动的合作伙伴被称为瞬时转染和随后印迹确定其存在或不存在。在这种情况下,我们建议各8微克的表达质粒转染细胞100厘米2菜。这个修改过程是研究突变衍生物的TAP融合蛋白与已知的具有约束力的合作伙伴互动的能力时,特定用途。
分析样品1,通过银染SDS-PAGE凝胶(或印迹,如果抗体是可用的)8,是一个很好的方法排除故障,技术故障产生可接受的结果。使用此系统抽样的方法,可以分析的基于每个亲和力的降水和具体洗脱效率。样品应采取一至八个期间OPTIM化的协议,为每个新的诱饵。
TAP标签技术提供了一个强大和稳健的替代其他方法,如GST拉,酵母双杂交实验等双亲和纯化和具体洗脱步骤(TEV酶切和生物素洗脱)提供特异性和严格保持在整个净化过程中的较高水平。批判这种技术可以应用到任何蛋白质,因此确定为目标蛋白结合合作伙伴的一个极好的方法。
没有利益冲突的声明。
这项研究是由威康信托高级奖学金颁发给伊恩·古德费洛博士。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
试剂名称 | 公司 | 目录编号 | |
潮霉素B | 罗氏公司 | 10843555001 | |
兔IgG的琼脂糖 | 西格玛 | A2909 | |
AC-TEV蛋白酶 | Invitrogen公司 | 12575-015 | |
蛋白酶抑制剂 | Calbiochem公司 | 539134 | |
ULTRALINK链霉亲和素固定加珠 | 刺穿 | 53116 | |
vivaspin 500离心选矿(5KDa) | vivaspin | V50112 | |
SilverQuest银染试剂盒 | Invitrogen公司 | LC6070 | |
NOVEX蓝色胶体考马斯染色试剂盒 | Invitrogen公司 | LC6025 | |
1.7毫升预润滑管 | COSTAR | 3207 | |
微毛细管移液器提示 | 厂商VWR | 37001-150 | |
NuPage 4-12%二,三梯度凝胶 | Invitrogen公司 | NP0322BOX | |
CDCL 2 | 西格玛 | 202908 | |
5X SDS样品缓冲 | 费舍尔 | PN39000 |
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