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条块分割,无论是在细胞膜或蛋白质进入细胞内的位置是一个监管机制,可以极大地影响信号的成果;因此,了解信号,重要的是要学习的时间和空间的行为,所涉及的蛋白质。我们描述1 TIRF显微镜为基础的系统研究在T细胞信号转导在这里的,而且是广泛适用的。
它是由从事势必由主要组织相容性复合体(住房抵押贷款公司)表面抗原提呈细胞(APC)蛋白表达的抗原肽片段时,信号是通过T细胞受体(TCR)发起。 T细胞受体复合物由配体结合TCRαβ异,联营公司的非共价键与CD3二聚体(εδ和εγ异和ζζ二聚体)1。受体接触后,为CD3ζ链磷酸化Src家族激酶,LCK。这将导致Syk的家族激酶,ZAP70,然后将其磷酸化和激活由LCK招聘。在此之后,ZAP70磷酸化接头蛋白LAT和SLP76,开始形成近端信令复杂,含有大量的不同的信号分子2。
在这个复杂的最终结果形成钙和依赖的Ras-TRAnscription因子激活和由此引发的一系列复杂的基因表达程序,引起T细胞分化2。 T细胞受体信号(和分化状态)是由许多其他因素,包括抗原与co-stimulatory/co-inhibitory的效力和串扰,趋化因子,细胞因子受体3-4调制。因此,学习的时间和空间的各种刺激条件下的近端信号复杂的组织,是了解TCR信号通路以及其他信号通路调控的关键。
一个非常有用的模型系统研究的TCR信号在T细胞的细胞膜发起玻璃支持的脂双层,以前5-6。他们可以利用抗原复合物的住房抵押贷款公司,附着力,共刺激分子,T为细胞人工装甲运兵车服务。由成像与T细胞相互作用利用全内反射荧光显微镜(TIRFM)脂双层,我们可以限制激励100纳米的玻璃和细胞表面的7-8之间的空间内。这使我们的图像,主要信令事件发生在细胞膜。正如我们在成像感兴趣的信号蛋白的TCR复杂的招聘,我们描述了两个摄像头TIRF成像系统,其中H57的抗体标记的TCR,荧光灯厂(片段抗原结合)的片段(纯化杂交瘤细胞的H57-597 ATCC,ATCC编号:HB-218),这是具体的TCRβ,信号蛋白与GFP标签,可同时成像和实时。这一战略是必要的,由于双方的T细胞和信号事件是发生在TCR高度的动态性。这种成像方式,使研究人员9-11图像的单配体激活受体信号分子以及招聘是一个很好的系统研究原位 12-16生物化学。
实验步骤:
1。转用Amaxa小鼠T细胞Nucleofector套件
我们在这里描述转任天真或在体外激活原代T细胞表达质粒编码绿色荧光蛋白标记的信号分子,使用的Amaxa小鼠T细胞Nucleofector套件。在体外激活T细胞肽装脾装甲运兵车进行前7。在我们的研究中使用的所有T细胞表达和TCR识别冶肽MHC分子即 K(88-103)约束。染是开展基本上是根据制造商的建议,但是,我们提出了一些建议,促进T细胞转染后的生存能力。可行性和转染效率远远高于幼稚细胞在体外激活T细胞。
- 中期预平衡是非常重要的,因为细胞死亡会导致重新悬浮细胞转染后在培养基,要么是感冒或有其他pH值大于7.2。
-重要的是要执行每个结构,可用于转染的细胞固定数量的质粒剂量滴定。对于一些较大的结构,可能需要更多的DNA。 DNA应该是免费的内毒素。
- 制造商建议纺纱在小于90XĞ的细胞;在我们的例子中,这个速度相当于75XĞ。选定的相对离心力(RCF)获得一个细胞沉淀也许是最关键的变量,在低离心力离心排除细胞膜的损害。
- 电穿孔的细胞后,最好是立即将它们传输到预平衡的培养基。制造商建议的细胞保持在不超过15分钟nucleofector介质。
- 三四个小时的潜伏期一般为T细胞,足以detectably表达绿色荧光蛋白标记的蛋白质。我们选择在这个时间点图像细胞由于表达水平低,应尽量减少过度表达的产物。然而,如果需要一种特定的蛋白质过度表达,T细胞应该被删除4个小时后从Amaxa介质。这是通过在低离心力再次pelletting细胞重新悬浮在预平衡的T细胞培养介质密度在2万细胞/ mL与50的U / mL的白细胞介素2(IL-2)补充。
2。 TIRF显微镜
的TIRF显微镜的描述:
下面,我们描述了如何使两个通道同时成像显微镜。涉及的步骤调整的TIRF照明,激光功率的调整,以及调整使用分辨率子微球的两个输出图像。
-T细胞是极为敏感的激光辐射,照明有限共50μW。
3。成像
一旦成立后,在显微镜下一个任务是准备流室,含玻璃支持呈现抗原和粘附分子的脂质双层如前所述6和T与相互作用转染细胞,然后执行TIRFM基板上。随后公布的双层协议5-6除外,脂质体流室组装后孵育20分钟的玻璃罩发表。相反,哈佛商学院-BSA的缓冲流在流动细胞后立即组装。
4。图像处理和数据分析
软件在一个单一的框架从两个摄像头的图像输出。每个摄像头的输出是512 x 512像素,因此,输出图像为1024×512像素大小。首先需要分割成单个帧对应的两个摄像头的图像。决议子珠从两个通道的图像叠加和校准参数的确定。具体到我们的系统的一个功能是其他方面的一个通道1度旋转( 见图3)。这个旋转的最可能的来源是相机的立场。进一步相对X和Y的线性变换,这种旋转后需要进行相互尊重,完全配合珠。珠的图片,在每一个实验,以确定精确的参数调整两个通道。这些线性和旋转变换,然后应用到所有的图像和分割算法和共定位分析,他们是受。
5。代表结果
这里描述的系统,可适应任何受体信号的下游,在细胞膜研究。这是特别是在信息研究TCR信号,因为信号在光学解决集群的TCR microclusters或发生在内涵体作为最近描述了18。如果信令子受体的决议集群或在联合国聚集受体发生更多的实验来解释数据,就必须做。如前面提到的TCR复杂的CD3链进行Src家族激酶的磷酸化,LCK后的TCR肽-MHC复合物的参与。磷酸化CD3ζ链,然后招募阻滞家庭激酶ZAP70。可视化杂招聘P70报告CD3ζ链的磷酸化状态。 TCR刺激的强度可以改变使用的TCR接触残留突变肽。这些肽被称为改变肽配体(杀伤人员地雷)。一个有代表性的实验激动剂肽有力招募ZAP70到受体microclusters而效价降低肽T102L未能以招募ZAP70到受体microclusters,表明CD3ζ链不磷酸化,在这种情况下,在图4所示。我们可以得出这样的结论,因为我们只是观察ZAP70招聘TIRFM很容易被检测到的TCR集群。一个自动分割算法被用来计算ZAP70个microclusters细胞的数目。同时TCR和ZAP70相关荧光成像也显示,在补充电影。注意动态lamelipodium性质。
图1。图像和定制的TIRF推出的示意图。小组A显示了安装在显微镜上的TIRF推出的照片,B组的TIRF发射演示光路示意图。原理图和图像显示收集透镜,分光镜,光纤推出分色立方体的TIRF目标在安装X,Y和Z的调整,准直透镜L1和聚焦透镜L2的位置。插图显示了聚焦透镜安装在分色立方体。
图2。图像和两个摄像系统原理图。 A组的两个摄像系统连接到显微镜的照片,B组是相同的原理。原理图和图像显示的目标位置,镜,分色,管镜片TL1和TL2,排放过滤器F1和F2,C1和C2两个摄像头对T继承人代表与各自的X,Y和Z的调整。
图3。使用分决议珠,对齐两个通道。面板和分决议珠的B显示覆盖前(A组),后(B组)对齐。 A组的渠道之一是与其他旋转。板C和D是一个图像的子节在A和B.面板E显示了两个通道的叠加图像,未经处理的细胞。面板D使用的对齐参数被应用到从两个渠道lamelipodium完美面板中的F和不对齐面板E.比例尺4微米所有的面板如何在面板号公告中显示的图像。
图4。ZAP70招聘在响应不同的杀伤人员地雷到受体microclusters。 在体外激活和T细胞转染质粒编码绿色荧光蛋白融合ZAP70和玻璃支持双层镍NTA包含6个分子/ 2微米肽孵育装载了他的标签, 即 K,100分子/微米的Alexa647结合他的标签2细胞ICAM- 1和100分子/ 2微米的GPI锚定CD80的。加载肽插图表示。 ICAM-1的是细胞双层包含100个分子/μm的网站-647结合他的标记细胞ICAM-1 2。双通道同步采集TIRF显微镜进行持续存在的Alexa546结合H57的Fab片段(非阻塞)染色的TCR。细胞成像一小时后,初次接触的双层。 ZAP70细胞簇的数字进行了分析,使用一个自动化的集群计算软件。每个案例进行了分析,至少有40个细胞。比例尺为2微米的所有图像。
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图5。两个相机系统,使用两个不同类型的相机对准。此面板显示了使用两个摄像系统,两个摄像头的地方有不同的像素大小(绿色:6.45微米像素尺寸2x2的分级和红成像:在没有分级成像16微米的像素尺寸)“分决议珠的排列叠加成像。插图显示了在该领域的中心方框的放大视图。比例尺5微米。
补充电影。ZAP70招聘受体激动剂肽microclusters。在体外激活和T细胞转染质粒编码绿色荧光蛋白融合ZAP70和玻璃支持双层镍NTA包含6个分子/ 2微米肽孵育加载他的标签, 即 K,100个分子/微米的Alexa647 2结合他的标签ICAM-1和100分子GPI锚定CD80分子/微米2。双通道同步A在持续存在Alexa546结合H57的Fab片段(非阻塞)染色的TCR cquisition TIRF显微镜。曾多次用了10秒每帧的时间分辨率成像领域的转染细胞的40倍。比例尺2微米。 点击这里查看补充电影 。
我们在这里描述TIRFM和玻璃支持的脂质双层人工装甲运兵车使用的抗原特异性的主要小鼠T细胞信号系统的研究。该技术依赖于成功地在这些细胞中表达绿色荧光蛋白标记蛋白。转染T细胞始终是一个具有挑战性的任务。通常情况下,电或使用逆转录病毒或慢病毒基因传递。一种方法是不是比其他优越,同时也有其局限性和优势。我们发现,电,具有以下优点:1)它是不需要的细胞积极除以逆转录病毒,但不慢病毒,和2)的表达水平,可以通过不同的细胞成像前孵育时间控制。最大的缺点是,我们很难表达的蛋白质,是在原代细胞的大小大。我们已经提出了一个方法,给我们电非常良好的细胞活力。因此,它是applicab勒到用它来实现的siRNA介导的基因沉默。
我们还描述了在这里定制的两个通道同步采集的TIRF显微镜色纠正,不需要单独调整不同波长。这些功能;然而,市场上可以买到。我们的系统是基于TIRF显微镜发表在该领域的专家和较便宜的商业选择的原则。我们设计的一个可能的批评是,我们正在使用的发病率相同的角度,不同的激发波长。这将导致在不同的TIRF穿透深度不同的激发波长。我们认为,这些影响很小,因为渐逝波是一个指数衰减的领域和深度的TIRF领域是波长的线性函数。靠近玻璃表面的荧光会遇到两种波长的激光强度之间没有差异。对于附近的PE荧光netration深度,强度差,将是两个两个波长488和561 nm的波长488和640 nm和1.15倍1.3倍。在同一系统可用于超分辨率技术的结合,使使用的TIRF照明。
我们还介绍了两个摄像系统是定制的。 TIRF系统一样,类似的器具,也市售。我们的系统提供了灵活性,允许其使用不同波长的组合,以改变过滤器和dichroics。我们的系统的缺点是需要调整两个图像的旋转度。解决这个问题可以通过使用摄像头是压电驱动,并提供旋转,对齐度看台。我们还成功地实施这种显微镜上两个摄像系统,在该相机是不同的,有不同的像素大小。像这样的系统将是有益的,如果需要在一个通道的灵敏度和一个大型的DY在另一个NAMIC范围内,这两者是相同的相机很少提供。我们使用2x2的分级Photometrics HQ-2摄像头,给我们的有效像素,12.9微米的Photometrics QUANT-EM的摄像头,其中有一个16微米的像素尺寸大小。一个180毫米焦距镜头用于管QUANT-EM的HQ-2摄像头和145毫米焦距管镜头使用。 HQ-2使用MetaMorph软件和QUANT-EM的控制是通过微观管理软件在单独的计算机外部触发模式控制。外部触发提供了QUANT-EM的相机使用数字输出的测量计算DAC板,这是作为一个额外的的Metamorph配置照明设置快门实施。管镜头的焦距比有效像素大小的比例匹配。一个有代表性的对齐, 如图5所示。
在无特定病原体的环境,并保持在这些实验中使用的所有动物的实验,由国家研究院健康的动物护理和使用委员会批准。
这项研究是支持的国立过敏和传染病,国立卫生研究院院内研究司。我们非常感谢为我们提供的H57在这些研究中使用的抗体约翰内斯Huppa和马克·戴维斯。房车想感谢凯尔·纽曼在这项技术的发展有益的讨论。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
试剂名称 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
小鼠T细胞amaxa Nucleofector套件 | 龙沙公司 | VPA-1006 | |
PureLink HiPure质粒Midiprep套件 | 生命科技 | K2100-05 | 内毒素的DNA PREPS |
amaxa Nucleofector设备 | 龙沙公司 | 反倾销协定,1001 | |
重组小鼠IL-2 | PeproTech公司公司 | 212-12 | |
fluoresbrite Multifluorescent微0.20μm | polysciences,公司 | 24050-5 | |
实验室TEK二8腔玻璃罩 | Thermo Scientific的,NUNC | 155409 |
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