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摘要

我们在这里描述了如何准备骨条件培养基(BCM)和体外测试其活性。

摘要

自体骨移植被广泛应用于口腔颌面外科,骨科,骨伤。自体骨移植不仅取代失去的骨头,它们还支持骨再生的复杂过程。自体移植的这种有利的行为归因于三个特点:骨传导性,osteogenicity,和骨诱导性。然而,还有另外一个方面:骨移植物释放分子,包括生长因子,它可以靶向参与骨再生的间充质细胞的无数。骨移植物的旁分泌性能还可以通过使用骨条件培养基(BCM)来进行体外研究。在这里,我们提出了一个协议就如何从本地猪皮质骨骨准备条件培养基和骨头进行热加工或脱矿。细胞可以直接暴露于BCM或接种于生物材料,如胶原膜,与前面的BCM湿透。我们举例说明体外 bioassaYS上的TGF-β调节基因表达的间质细胞。所提出的协议应该鼓励进一步揭示骨移植的旁分泌影响骨再生期间和重建手术的广阔领域打开了转化型研究的路径。

引言

自体骨被广泛用于桥接发生作为结果畸形,切除手术,重建手术创伤,和之前植入物放置1,2-缺陷。了解骨移植物是如何支持巩固移植的过程中,生物的原则是不理解为什么自体被认为是在重建手术的金标准唯一的关键,这也是仿生骨代用品3的改进设计。尽管如此,移植合并是更快地与自体骨相比,骨替代4,5。因此,当务之急是揭示,使自体骨以便有效地支持骨再生的分子和细胞机制。

还有被认为支持整合过程6,7自体移植三种教科书的特点。首先,自体骨骨传导是,新成立的骨生长提供指导入缺陷。其次,自体骨的成骨,这意味着它包含间充质细胞,能分化成成骨细胞8。第三,自体骨是骨诱导性的像埋葬在基质骨形态发生蛋白的生长因子可以发起软骨内或甚至膜内骨形成9的过程。还有另外一个方面:新鲜制备的骨碎片保持基于在体外观察与"骨条件培养基"10-15旁分泌功能。还骨髓细胞生成的影响应该提到16。与之类似的术语"脱钙骨基质条件培养基"已经创造于1996年,支持骨旁分泌功能的整体概念,即使是由脱盐处理17。对于我们而言,BCM可以从新鲜的猪准备下颌骨10,11。 BCM的蛋白质组学分析显示的成分复杂,包括生长事实口服补液盐和细胞外基质10的成分,也延长对整骨18,19的蛋白酶现有的知识。因此,BCM应该反映骨移植体外的各种修改的发布活动。

当间质细胞,例如来自骨片或口腔软组织中分离,暴露于BCM? 在体外会发生什么,BCM降低了成骨和脂肪细胞分化,并引发IL11表达11的强劲增长。基因组范围的微阵列显示多个基因被差异表达的间充质细胞响应于BCM。在这些基因中有肾上腺髓质素(ADM),IL11,IL33,NADPH氧化酶4(NOX4),蛋白聚糖4(PRG4或润滑素)和五聚环蛋白3(PTX3)15。从高压灭菌骨碎片得到的BCM未能改变各基因14的表达。从骨片的巴氏杀菌经历和冻结BCM能改变基因表达14。脱钙骨基质(DBM-CM)的还条件培养基改变TGF-β调控的基因20的表达。有趣的是,用于从周围的软组织21,22屏蔽骨片胶原阻挡隔膜,吸附BCM的,负责的基因表达的变化23的那些部分。 BCM研究可以扩展到参与骨再生等骨吸收的破骨细胞和内皮细胞的其它细胞类型,仅举几例。总体而言,累积体外数据提供用于临床前研究的设计的科学依据。

本协议是两方面:首先,它显示了如何准备BCM。其次,它显示了如何基于骨髓间质细胞在体外测试其生物活性。

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研究方案

1. BCM准备

  1. 从获得当地的屠户尽可能新鲜的猪的下颌骨。将下颚骨到坚硬的表面,并释放一个全厚皮瓣特别注意不要留下任何软组织或骨膜附着于骨。在清洁的环境,而不需要的流罩下工作的工作。
  2. 一旦全厚瓣被释放,使用骨刮板从颊侧收获了碎骨片。请注意,骨刮板必须锐利。处理坚决骨刮板和长运动收集骨头。弃骨碎片越小1毫米。
    1. 维持天然骨片,直接将骨碎片直径10厘米与补充有1%抗生素和抗真菌剂不能让它们变干的Dulbecco氏改良的Eagle氏培养基(DMEM)的塑料盘中。
    2. 为了评价热加工的影响,受骨芯片在80℃巴氏灭菌30分钟或高压釜20分钟,121℃。
    3. 为了评价脱矿质的影响,摇骨碎片在1M HCL为4-6小时,在4℃,并用培养基反复洗涤直到pH为中性。
  3. 总共5克每10ml新鲜的DMEM补充有1%抗生素和抗真菌剂的骨片的放置到一个新的塑料盘。
  4. 将塑料皿在湿润气氛中,在37℃下放置24小时。然后,收获BCM。离心机BCM的在200×g离心10分钟以除去碎片,将其过滤灭菌(0.2纳米),并保持等份冷冻在-80℃。
  5. 在即将使用前解冻BCM股票和避免冷冻和解冻的重复循环。
  6. 为指示的实验中,浸泡胶原膜与BCM或无血清培养基进行1小时,在室温。用PBS洗涤大力膜并将它们放入96孔板。湿膜用细胞接种。
  7. BCM的制备方法概述于图1中

基于间充质细胞生物测定2

  1. 种子的人类间充质细胞(例如成骨细胞,牙龈和牙周膜细胞)到12孔板用30,000个细胞/ cm 2的浓度。种子细胞用生长培养基由DMEM,10%胎牛血清和抗生素。让细胞附着到板O / N。
  2. 弃去培养液,用预温的PBS在37℃下洗涤细胞。通过加入预热的无血清培养基中有和没有20%BCM刺激细胞。将细胞在湿润气氛中,在37℃下放置24小时。
  3. 弃去培养液,冲洗细胞与预热PBS,并根据您的首选协议提取RNA。
  4. 调节RNA的浓度,以使每个样品中的RNA的量相同。制备的cDNA和执行定量RT-PCR分析,使用表1所示的引物的选择的基因。
    注:这是每一个组件的稀释液:2X SYBR绿,20X引着,20X引反向,5倍无菌水DD,5倍的cDNA。的定量RT-PCR在95℃15秒40个循环和60℃1分钟进行。
  5. CT GAPDH和Δ(ΔCT)是ΔCT刺激 - - ΔCT控制通过标准化来使用Δ(ΔCT)方法,其中ΔCT是CT目标看家基因GAPDH计算相对表达水平。
  6. 这种质量控制后,添加BCM到培养基来刺激所有类型的细胞,包括间充质细胞,造血细胞或内皮细胞。

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结果

骨条件培养基从新鲜猪碎骨片制成。该方法的一般概述,制备BCM和用于与BCM组合的生物材料示于图1图2分别。在BCM制备,重要的是要获得大的骨片,长动作短的运动或非常小的骨片可以影响最终BCM的质量。霉素,PTX3,IL11,IL33,NOX4和PRG4( 图3):BCM的质量可以通过分析BCM靶基因的基因表达的控制。 ADM和PTX3都下调至0.4倍,IL11,IL33,NOX4和PRG4可以是上调至200倍...

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讨论

骨条件培养基反映骨移植物的过程中的骨再生的早期阶段的释放活性。这里描述的协议可以适于研究不同类型参与骨再生的细胞的反应。此外,该协议可以用于制备从加工骨或骨填充剂的条件培养基。该方法很容易执行,并依靠一个简单的概念:从各种天然和加工骨释放的因素。如何理解BCM影响间充质细胞可以帮助更多地了解移植整合和自体骨的性质。基于这种理念,我们已经积累了BCM从本土1...

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披露声明

作者什么都没有透露。霍尔迪卡巴耶 - 塞拉诺获得奖学金的牙科研究和教育,巴塞尔,瑞士的基金会。

致谢

Authors would like to thank Catherine Solioz for her skillful assistance.

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Pig MandiblesLocal bucher
Bone ScraperHu-FriedyPPBUSE2/36
Antibiotics & AntimicoticsAll life Technologies15240-062
Collagen Membranes (Bio-Gide)Geistlich
Fetal Calf SerumInvitrogen Corporation16030074
DMEMInvitrogen Corporation21885-025

High Pure RNA Isolation Kit
Roche11828665001
Transcriptor First Strand cDNA Synthesis KitRoche4379012001
PrimersMicrosynth
SYBR Green (for Q-RT-PCR)Roche4673484001
PBSRoche11666789001

参考文献

  1. Buser, D. Long-term Stability of Early Implant Placement with Contour Augmentation. Journal of dental research. , (2013).
  2. Chiapasco, M., Casentini, P., Bone Zaniboni, M. augmentation procedures in implant dentistry. The International journal of oral & maxillofacial implants. 24 Suppl. , 237-259 (2009).
  3. Giannoudis, P. V., Dinopoulos, H., Bone Tsiridis, E. substitutes: an update. Injury. 36, Suppl 3. S20-S27. , (2005).
  4. Jensen, S. S., Broggini, N., Hjorting-Hansen, E., Schenk, R., Bone Buser, D. healing and graft resorption of autograft, anorganic bovine bone and beta-tricalcium phosphate. A histologic and histomorphometric study in the mandibles of minipigs. Clinical oral implants research. 17, 237-243 (2006).
  5. Jensen, S. S. Evaluation of a novel biphasic calcium phosphate in standardized bone defects: a histologic and histomorphometric study in the mandibles of minipigs. Clinical oral implants research. 18, 752-760 (2007).
  6. Grabowski, G., Bone Cornett, C. A. graft and bone graft substitutes in spine surgery: current concepts and controversies. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 21, 51-60 (2013).
  7. Khan, S. N. The biology of bone grafting. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 13, 77-86 (2005).
  8. Bohr, H., Ravn, H. O., Werner, H. The osteogenic effect of bone transplants in rabbits. The Journal of bone and joint surgery. British. 50, 866-873 (1968).
  9. Bone Urist, M. R. formation by autoinduction. Science. 150, 893-899 (1965).
  10. Caballé-Serrano, J. D., Buser, D., Gruber, R. Proteomic analysis of porcine bone conditioned medium. The International journal of oral & maxillofacial implants. , (2014).
  11. Peng, J. Bone-Conditioned Medium Inhibits Osteogenic and Adipogenic Differentiation of Mesenchymal Cells In Vitro. Clinical implant dentistry and related research. , (2014).
  12. Brolese, E., Buser, D., Kuchler, U., Schaller, B., Gruber, R. Human bone chips release of sclerostin and FGF-23 into the culture medium: an in vitro pilot study. Clinical oral implants research. , (2014).
  13. Caballé-Serrano, J., Bosshardt, D. D., Gargallo-Albiol, J., Buser, D., Bone Gruber, R. conditioned medium enhances osteoclastogenesis in murine bone marrow cultures. Clin Oral Impl Res; in. Int J Oral Maxillofac Surg. , (2015).
  14. Zimmermann, M. Bone-conditioned medium changes gene expression in bone-derived fibroblasts). IJOMI accepted. , (2014).
  15. Fulzele, K. Myelopoiesis is regulated by osteocytes through Gsalpha-dependent signaling. Blood. 121, 930-939 (2013).
  16. Becerra, J., Andrades, J. A., Ertl, D. C., Sorgente, N., Nimni, M. E. Demineralized bone matrix mediates differentiation of bone marrow stromal cells in vitro: effect of age of cell donor. Journal of. 11, 1703-1714 (1996).
  17. Kupcova Skalnikova,, H, Proteomic techniques for characterisation of mesenchymal stem cell secretome. Biochimie. , (2013).
  18. Romanello, M. Osteoblastic cell secretome: A novel role for progranulin during risedronate treatment. , Bone. (2013).
  19. Schuldt Filho,, G, Conditioned medium of demineralized bone matrix activates TGF-β signaling pathways in mesenchymal cells in vitro. J Cranio Maxill Surg. , (2015).
  20. Buser, D., Chen, S. T., Weber, H. P., Belser, U. C. Early implant placement following single-tooth extraction in the esthetic zone: biologic rationale and surgical procedures). The International journal of periodontics & restorative dentistry. 28, 441-451 (2008).
  21. Stoecklin-Wasmer, C. Absorbable collagen membranes for periodontal regeneration: a systematic review. Journal of dental research. 92, progress. 773-781 (2013).

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