JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Biz kemik klimalı ortam (BCM) hazırlamak ve in vitro faaliyetlerini testi nasıl burada açıklamak.

Özet

Otolog kemik greftleri yaygın ağız ve çene cerrahisi, ortopedi, travmatoloji ve kullanılmaktadır. Otolog kemik greftleri tek eksik kemik yerini, aynı zamanda kemik rejenerasyonu karmaşık sürecini desteklemek. Otogreftlerde Bu olumlu davranış üç özelliklerine atfedilen: osteoconductivity, osteogenicity ve Osteoindüktivite. Ancak, başka bir yönü vardır: Kemik kemik rejenerasyonu yer mezenkimal hücreler hedefleyebilir büyüme faktörleri de dahil olmak üzere moleküller, sayısız serbest greft. kemik greftleri parakrin özellikleri kemik koşullu ortam (BCM) kullanılması ile in vitro olarak incelenebilir. Burada ısıl işlem veya demineralizasyonuna uygulanan bir yerel domuz kortikal kemikten kemik klimalı ortam hazırlamak için nasıl protokolü ve kemik sunuyoruz. Hücreler doğrudan BCM maruz ya da kolajen membranların, daha önce BCM ile ıslatılmış olarak biyomalzemeler, üzerine numaralı seribaşı olabilir. Biz in vitro bioassa için örnekler verirTGF-β ayarlı genlerin ifadesi üzerindeki mezenkimal hücreler ys. sunulan protokoller ayrıca kemik rejenerasyonu esnasında kemik grefti parakrin etkileri ortaya koymak ve rekonstrüktif cerrahi geniş alanda translasyonel araştırma için bir yol açmak için teşvik etmelidir.

Giriş

Otolog kemik yaygın bir malformasyon sonucu, rezektif cerrahi, rekonstrüktif travma cerrahisi, ve önceki implant yerleştirme 1,2 olarak meydana gelen kusurları köprü için kullanılır. Kemik greftleri greft konsolidasyon sürecini destekleyen nasıl biyolojik prensiplerini anlamak otogreftleri rekonstrüktif cerrahi altın standart olarak kabul edilir anlamak için tek anahtar değil, aynı zamanda kemik yerine kullanılan 3 geliştirilmiş tasarımı Biyonik olduğunu. Yine, greft konsolidasyon hızlı otolog kemik kemik 4,5 'yerine göre olduğunu. Böylece, kemik rejenerasyonu desteklemek için çok etkili otolog kemik yapmak moleküler ve hücresel mekanizmaları ortaya çıkarmak için zorunludur.

Konsolidasyon süreci 6,7 desteklemek için kabul edilen otogreftlerde üç ders kitabı özellikleri vardır. İlk olarak, otolog kemik büyümesi yeni oluşan kemik için rehberlik sağlayarak, osteokondüktif olduğunudefekt içine. İkincisi, otolog kemik o osteoblast 8 ayırt edebilirsiniz mezenkimal hücreler içerdiğini, yani osteojenik olduğunu. Matris içinde Gömülmüş kemik morfogenetik proteinleri gibi büyüme faktörleri endochondral hatta intramembranöz kemik oluşumu 9 sürecini başlatabilir gibi Üçüncüsü, otolog kemik osteoindüktif olduğunu. Başka bir yönü var: taze hazırlanmış kemik fiş "kemik klimalı ortamda" 10-15 ile in vitro gözlemlere dayalı bir parakrin fonksiyon tutun. Ayrıca miyelopoezle etkisi 16 söz edilmelidir. "Demineralize kemik matriks klimalı ortam" Benzer bir terim zaten demineralizasyon 17 tarafından işlenen bile, 1996 yılında icat ve kemik parakrin fonksiyon genel konsepti destekliyor edildi. Bizim amaçlarımız için, BCM 10,11 altçeneleri taze domuz hazırlanabilir. BCM proteomik analizler büyüme aslında da dahil olmak üzere, karmaşık kompozisyon ortayaors ve hücre dışı matris 10 bileşenleri, aynı zamanda bütün kemik 18,19 proteazomun üzerinde mevcut bilgi uzanan. Böylece, BCM in vitro kemik grefti çeşitli değişiklikler yayımlanan aktivitesini yansıtmalıdır.

Mezenkimal hücreler, örneğin kemik cips veya oral yumuşak dokusundan izole olanlar için, BCM? In vitro maruz kaldığında ne olur, BCM osteojenik ve adipojenik farklılaşma azaltır ve IL11 ifade 11 güçlü bir artış kışkırtır. Genom mikrodizi diferansiyel BCM tepki olarak mezenşimsel hücrelerde ifade edilmesi daha fazla gen ortaya çıkardı. Bu genler arasında adrenomedüllin (ADM) vardır, IL11, IL33, NADPH oksidaz 4 (NOX4), proteoglikan 4 (PRG4 veya lubricin) ve 3 (PTX3) 15 pentraksin. Otoklava kemik cips elde edilen BCM ilgili genlerin 14 ifadesini değiştirmek için başarısız oldu. Pastörizasyon uygulanan ve donma kemik cips BCM başardıGen ekspresyonu 14 değiştirin. Minerali alınmış kemik matrisi (DBM-cm) da koşullandırılmış ortam, TGF-β-ayarlı genlerin 20 ekspresyonunu değiştirir. İlginçtir, çevredeki yumuşak doku 21,22 kemik yongaları korumak için kullanılan kollajen bariyer membranlar, gen ifadesi 23 değişikliklerden sorumlu olan BCM bu parçaların adsorbe. BCM, araştırma birkaç isim, örneğin kemik erimesi ile ilgili osteoklastı ve endotelyal hücreler gibi kemik rejenerasyonu yer alan diğer hücre tipleri için genişletilebilir. Genel olarak, biriken in vitro veriler bir klinik öncesi çalışmanın tasarımı için bilimsel temelini oluşturmaktadır.

Mevcut protokol iki yönlüdür: Birincisi, BCM hazırlamak için nasıl gösterir. İkinci olarak, bu in vitro mezenkimal hücreler göre biyolojik etkinliğini test etmek için nasıl kullanılacağını gösterir.

Protokol

1. BCM Hazırlık

  1. Mümkün olduğunca taze yerel kasap domuz çene kemiklerini edinin. Sağlam bir yüzeye yerleştirin altçeneleri ve tam kalınlıkta flep herhangi bir yumuşak doku bırakın veya kemiğe bağlı periost değil özel dikkat bırakın. Akış kaputu altında çalışmak gerek kalmadan temiz bir ortamda çalışın.
  2. Tam kalınlıkta flep yayımlandıktan sonra, bukkal taraftan kemik cips hasat kemik kazıyıcı kullanın. Kemik kazıyıcı keskin olması gerektiğini lütfen unutmayınız. Sıkıca kemik kazıyıcı Kulp ve uzun hareketler kemik toplamak ile. Daha küçük o 1mm kemik cips atın.
    1. Doğal kemik parçası muhafaza edilmesi için,% 1 antibiyotik ve bunları kurumasına izin vermeden antimikotik ile takviye edilmiş Dulbecco Modified Eagle ortamı (DMEM) olan 10 cm çaplı plastik tabaklar doğrudan kemik parçası yerleştirin.
    2. Isıl işlem etkisini değerlendirmek için, söz konusu kemik cipsi, 80 ° C'de 30 dakika boyunca pastörizasyon ya da121 ° C'de 20 dakika süreyle otoklav.
    3. , Mineralden arındırma etkisini değerlendirmek, 4 ° C'de 4-6 saat boyunca 1 M HCI kemik yongaları çalkalayın ve pH nötr olana kadar, kültür ortamı ile tekrar tekrar yıkamak için.
  3. Yeni bir plastik çanak içine% 1 antibiyotik ve antimikotik ile desteklenmiş 10 ml taze DMEM başına kemik yongaları 5 g toplam yerleştirin.
  4. 24 saat boyunca 37 ° C'de nemli bir atmosferde plastik tabaklar yerleştirin. Sonra, hasat BCM. Santrifüj, artığın ayrılması steril (0.2 mil) filtre ve -80 ° C'de dondurulur alikotları tutmak için 10 dakika boyunca 200 x g'de BCM.
  5. Kullanımdan hemen önce, BCM stok çözülme ve dondurma ve eritme tekrar döngülerinden kaçınmak.
  6. Belirtilen deneyler için, oda sıcaklığında, 1 saat süre ile, BCM ya da serum içermeyen ortam ile kolajen zarları ıslatın. PBS ile kuvvetli bir şekilde membranlar yıkayın ve 96 gözlü levhalar içine yerleştirin. Islak membranlar hücreleri ile tohumlanır.
  7. BCM hazırlık süreci Şekil 1'de özetlenmiştir.

Mezenkimal Hücreler dayanarak 2. biyolojik tayinler

  1. / Cm2 30,000 hücrelik bir konsantrasyonda olan bir 12-çukurlu plaka içinde (örneğin, kemik hücreleri, diş eti ve periodontal ligament fibroblastlar için) Tohum insan mezenkimal hücreler. Hücreler DMEM oluşan büyüme ortamı,% 10 fetal buzağı serumu ve antibiyotiklerin kullanımı tohum. Hücreler plaka O / N eklemek edelim.
  2. Kültür ortamı atılır ve 37 ° C'de önceden ısıtılmış hücrelerin PBS ile yıkayın. Ve% 20 BCM olmayan önceden ısıtılmış serum içermeyen kültür ortamı eklenerek hücrelerini uyarır. 24 saat boyunca 37 ° C'de nemli bir atmosferde hücreleri yerleştirin.
  3. , Kültür ortamı atın önceden ısıtılmış PBS ile hücreleri durulayın ve tercih protokole göre RNA ayıklayın.
  4. Her örnek için RNA ile aynı miktarda olması için RNA konsantrasyonu ayarlayın. CDNA'lar hazırlayın ve Tablo 1 'de gösterilen primerler kullanılarak seçilen genleri analiz etmek için QRT-PCR işlemi gerçekleştirmek.
    NOT: Bu her bileşenin seyreltmeleri şunlardır: 2x SYBR Green, 20x astar ileri, 20x primer ters, 5x steril DD su, 5x cDNA. QRT-PCR ile 95 ° C 15 saniye 40 döngü, 60 ° C 1 dakika içinde gerçekleştirilir.
  5. CT GAPDH ve Δ (ACt) ACt uyarılmış olduğunu - - ACt kontrol ACt BT hedef Δ (ACt) yöntemini kullanarak temizlik gen GAPDH'ye normalleştirilmesi ile bağıl ifade seviyelerini hesaplayın.
  6. Bu kalite kontrolü sonra, mezenkimal hücreler, hematopoietik hücreleri ya da endotel hücreleri dahil olmak üzere bütün hücre tipleri uyarmak için, kültür ortamına BCM ekleyin.

Sonuçlar

Kemik koşullandırılmış ortam, taze domuz kemik parçacıkları hazırlanır. Işlem genel bakış BCM hazırlamak ve BCM ile kombinasyon halinde biyomalzemeleri kullanımı, Şekil 1, sırasıyla, Şekil 2 'de gösterilmiştir. BCM hazırlanması sırasında, nihai BCM kalitesini etkileyebilir kısa hareketler ya da çok küçük kemik cips sürece hareketlerle büyük kemik cips elde etmek önemlidir. ADM, PTX3, IL11, IL33, NOX4 ve PRG4 (Şekil 3): BCM Kalitesi BCM, hedef genl...

Tartışmalar

Kemik klimalı ortam kemik rejenerasyonu erken evrelerinde kemik grefti yayımlanan aktivitesini yansıtır. Burada açıklanan protokol kemik rejenerasyonu dahil çeşitli hücre tipleri tepkisini incelemek için adapte edilebilir. Bundan başka, protokol işleme kemik veya kemik dolgu kıvamlandırılmış ortam hazırlamak için de kullanılabilir. Çeşitli yerli ve işlenmiş kemik salınan faktörler: yöntemler gerçekleştirmek ve basit bir kavram güvenmek kolaydır. Nasıl BCM anlamak mezenkimal hücreler gref...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok. Jordi Caballé-Serrano Diş Araştırma ve Eğitim, Basel, İsviçre Vakfı burs aldı.

Teşekkürler

Authors would like to thank Catherine Solioz for her skillful assistance.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Pig MandiblesLocal bucher
Bone ScraperHu-FriedyPPBUSE2/36
Antibiotics & AntimicoticsAll life Technologies15240-062
Collagen Membranes (Bio-Gide)Geistlich
Fetal Calf SerumInvitrogen Corporation16030074
DMEMInvitrogen Corporation21885-025

High Pure RNA Isolation Kit
Roche11828665001
Transcriptor First Strand cDNA Synthesis KitRoche4379012001
PrimersMicrosynth
SYBR Green (for Q-RT-PCR)Roche4673484001
PBSRoche11666789001

Referanslar

  1. Buser, D. Long-term Stability of Early Implant Placement with Contour Augmentation. Journal of dental research. , (2013).
  2. Chiapasco, M., Casentini, P., Bone Zaniboni, M. augmentation procedures in implant dentistry. The International journal of oral & maxillofacial implants. 24 Suppl. , 237-259 (2009).
  3. Giannoudis, P. V., Dinopoulos, H., Bone Tsiridis, E. substitutes: an update. Injury. 36, Suppl 3. S20-S27. , (2005).
  4. Jensen, S. S., Broggini, N., Hjorting-Hansen, E., Schenk, R., Bone Buser, D. healing and graft resorption of autograft, anorganic bovine bone and beta-tricalcium phosphate. A histologic and histomorphometric study in the mandibles of minipigs. Clinical oral implants research. 17, 237-243 (2006).
  5. Jensen, S. S. Evaluation of a novel biphasic calcium phosphate in standardized bone defects: a histologic and histomorphometric study in the mandibles of minipigs. Clinical oral implants research. 18, 752-760 (2007).
  6. Grabowski, G., Bone Cornett, C. A. graft and bone graft substitutes in spine surgery: current concepts and controversies. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 21, 51-60 (2013).
  7. Khan, S. N. The biology of bone grafting. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 13, 77-86 (2005).
  8. Bohr, H., Ravn, H. O., Werner, H. The osteogenic effect of bone transplants in rabbits. The Journal of bone and joint surgery. British. 50, 866-873 (1968).
  9. Bone Urist, M. R. formation by autoinduction. Science. 150, 893-899 (1965).
  10. Caballé-Serrano, J. D., Buser, D., Gruber, R. Proteomic analysis of porcine bone conditioned medium. The International journal of oral & maxillofacial implants. , (2014).
  11. Peng, J. Bone-Conditioned Medium Inhibits Osteogenic and Adipogenic Differentiation of Mesenchymal Cells In Vitro. Clinical implant dentistry and related research. , (2014).
  12. Brolese, E., Buser, D., Kuchler, U., Schaller, B., Gruber, R. Human bone chips release of sclerostin and FGF-23 into the culture medium: an in vitro pilot study. Clinical oral implants research. , (2014).
  13. Caballé-Serrano, J., Bosshardt, D. D., Gargallo-Albiol, J., Buser, D., Bone Gruber, R. conditioned medium enhances osteoclastogenesis in murine bone marrow cultures. Clin Oral Impl Res; in. Int J Oral Maxillofac Surg. , (2015).
  14. Zimmermann, M. Bone-conditioned medium changes gene expression in bone-derived fibroblasts). IJOMI accepted. , (2014).
  15. Fulzele, K. Myelopoiesis is regulated by osteocytes through Gsalpha-dependent signaling. Blood. 121, 930-939 (2013).
  16. Becerra, J., Andrades, J. A., Ertl, D. C., Sorgente, N., Nimni, M. E. Demineralized bone matrix mediates differentiation of bone marrow stromal cells in vitro: effect of age of cell donor. Journal of. 11, 1703-1714 (1996).
  17. Kupcova Skalnikova, ., H, Proteomic techniques for characterisation of mesenchymal stem cell secretome. Biochimie. , (2013).
  18. Romanello, M. Osteoblastic cell secretome: A novel role for progranulin during risedronate treatment. , (2013).
  19. Schuldt Filho, ., G, Conditioned medium of demineralized bone matrix activates TGF-β signaling pathways in mesenchymal cells in vitro. J Cranio Maxill Surg. , (2015).
  20. Buser, D., Chen, S. T., Weber, H. P., Belser, U. C. Early implant placement following single-tooth extraction in the esthetic zone: biologic rationale and surgical procedures). The International journal of periodontics & restorative dentistry. 28, 441-451 (2008).
  21. Stoecklin-Wasmer, C. Absorbable collagen membranes for periodontal regeneration: a systematic review. Journal of dental research. 92, 773-781 (2013).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Molek ler BiyolojiSay 101Kemik Klima OrtaBCMkemik otogrefy nlendirilmi kemik rejenerasyonuNGdental implantmembrans pernatantb y me fakt rlerikontur b y tmeotolog kemik

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır