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摘要

我们开发了一个简单的流式细胞测定法,用于评估PD-1阻滞抗体与T细胞的结合,只需要癌症患者的一滴外周血。

摘要

免疫检查点抑制剂,包括PD-1-阻断抗体,显著改善了各类癌症的治疗效果。这些免疫疗法的药理疗效是长期的,甚至延伸到停止注射,由于持续的血液浓度。在这里,我们开发了一个简单的流式细胞测定法,以评估PD-1-阻断抗体nivolumab和pembrolizumab的T细胞结合状态。与葡萄糖测试一样,这种检测只需要一滴外周血。可视化抗体结合T细胞比测量抗体血液浓度更可靠。此外,如有必要,我们可以分析与PD-1-阻断抗体结合的T细胞上的许多独特的免疫相关标记。因此,这是一种简单和微创的策略,用于分析PD-1-阻断抗体在癌症患者中的药理作用。

引言

PD-1+阻断抗体已成为治疗各种癌症的标准选择,包括非小细胞肺癌(NSCLC)1、2、3、4。在一部分没有对常规细胞毒性化疗有反应的癌症患者中,它们显示出显著的治疗效果。然而,免疫检查点抑制剂(ICI),包括PD-1-阻断抗体,可以引起独特和不同的不良事件,称为免疫相关不良事件(irAEs)5。虽然irAEs可以影响几乎所有的组织,它们最常观察到在胃肠道,内分泌腺,皮肤和肝脏,他们可能导致瘙痒,皮疹,恶心,腹泻和甲状腺疾病6,7。一般来说,大多数 IrAEs 在 ICIs 启动后的 1 到 2 个月内出现。然而,在某些情况下,它们可能发生在开始治疗后1年,甚至在治疗停止6,7之后。它们也会导致各种症状,可能难以区别于其他疾病。因此,要及时诊断irAEs并对其进行适当治疗可能具有挑战性。irAE 可以影响所有组织,其发病受到循环免疫细胞的强烈影响,尤其是与 PD-1 和阻断抗体结合的 T 细胞。因此,在临床环境中,一种简单和微创的方法来监测抗体靶向T细胞非常重要。

在这里,我们开发了一个简单的方法,用接受尼沃卢巴或皮布吕祖马的癌症患者的一滴外周全血来评估PD-1-阻断抗体与T细胞的结合。使用这种方法,我们能够监测以下各项:1)抗体与T细胞结合的持续时间,2)治疗抗体占用T细胞PD-1分子,3)T细胞的活化状态和免疫特征。此方法是对以前报告的技术8的修改。所需的血液量与葡萄糖测试所需的血液量几乎相同,该方法不需要单核细胞富集或与PD-1-阻断抗体共同培养。我们确认这种方法也可以使用冷冻样品进行,包括外周血单核细胞(PBMC)和来自胸腔输液、心包液、支气管输液和脑脊液的细胞,这表明这种策略在多中心研究的背景下可能有用。这种方法可能有助于irAE的早期诊断,也有助于确定适当的免疫抑制治疗,以控制其症状,并确定在PD-1抑制剂后启动后续治疗的最佳时间。

研究方案

采样是在常规临床过程中进行的。根据《赫尔辛基宣言》,并经日本大阪大学医学院伦理审查委员会批准(15383和752),所有人类样本都是在知情同意后取得的。

1. 全血样制备和染色

  1. 将全血样本收集到含有乙烯二胺四乙酸(EDTA)的血液收集管中。
    注:血收集可以使用常规针头或血柳刀进行。
  2. 将20μL全血样品转移到5mL圆底聚苯乙烯流细胞测定管。
    注:为了减少细胞与管的非特异性结合,在将磷酸盐缓冲盐水(PBS)中的1 mL 2%胎儿牛血清(FBS)加入管中,在样品应用前涡旋10小时。
  3. 在 PBS 中加入 20 μL 的 2% FBS。
  4. 加入10μL的人特异性FcR阻断试剂。混合良好,在室温下孵育15分钟。
  5. 加入500μL红细胞分瓶缓冲液。混合良好,在室温下孵育10分钟。
  6. 在PBS中加入4 mL 2%FBS,在4°C下以400 x g(1,500 rpm)旋转细胞5分钟。通过吸入去除上清液。
  7. 重复步骤 1.6 中描述的洗涤和吸入过程。
  8. 在PBS中重新悬浮在100μL的2%FBS中的细胞,并分成两个管,每个50μL。
  9. 添加表面标记抗体 (表 1).混合良好,在黑暗中室温下孵育20分钟。
    注:在分析T细胞免疫状态时,可以根据流式细胞测量机的质量增加标记的数量。
  10. 如步骤 1.6 所述,将样品洗涤 2 倍。
  11. 在PBS中重新悬浮200μL的2%FBS中的细胞。

2. 流量细胞学分析

  1. 将管插入流式细胞仪并获取细胞,基本上遵循建议的协议9。
  2. 将 10,000 个事件记录为淋巴细胞门(图 1A),并将导出流数据记录为 .fcs 文件进行分析。
  3. 在分析软件中打开文件。在正向散射 (FSC) (A) 与侧散射 (SSC) (A) 绘图和门淋巴细胞(图 1A) 上可视化细胞。
  4. 使用 FSC (H) vs. FSC (W) 和 SSC (H) vs. SSC (W) (图 1B) 选择单个单元并将其显示在 CD3 与 CD8 或 CD3 与 CD4 图后,分别将 CD8 T 单元和 CD4 T 单元(图 1C) 显示。
  5. 选择封闭细胞并将其显示在PD-1与人类IgG4图上后,根据等型对照识别PD-1+阻断抗体结合CD8和CD4 T细胞(图1D)。

结果

门控策略和流式细胞测定分析 (图 1) 可以检测从一滴 NSCLC 患者外周血获得的 PD-1 阻滞抗体结合到 T 细胞。在施用PD-1-阻断抗体之前,不存在人类IgG4阳性CD8或CD4 T细胞,PD-1表达可以通过PD-1+检测抗体(EH12.1)(2A)确认。在尼沃卢马布或pembrolizumab分用后,IgG4(尼沃卢马布,pembrolizumab)可以通过抗IgG4抗体(HP6025)在T细胞上检测到,而PD-...

讨论

在本文中,我们报道了一种使用流动细胞计检测PD-1-阻断抗体的方法,抗体与从一滴外周血衍生的T细胞结合,我们最初开发用于nivolumab检测10。虽然此技术非常简单且易于执行,但为了获得准确的结果,应注意两个要点。其一是检测PD-1分子,应使用与尼沃卢马布和皮布吕祖马布竞争的适当抗体。这个问题在先前的研究11中进行了评估。另一种是,在表面染色之?...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

这项工作得到了日本科学促进协会(JP17K16045)和日本医学研究发展厅(JP18cm0106335和19cm0106310)对S.K.的资助。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
10X RBC Lysis Buffer (Multi-species)Thermo Fisher Scientific00-4300-5450 mL
APC/Cyanine7 anti-human CD4 AntibodyBioLegend300518Clone RPA-T4
BD FACS Canto II Flow CytometerBD
Brilliant Violet 510 anti-human CD8a AntibodyBioLegend301048Clone RPA-T8
Dulbecco's Phosphate Buffered Salinenacalai tesque14249-95500 mL
Falcon Round-Bottom Polystyrene TubesSTEMCELL Technologies3520585 mL
FcR Blocking Reagent, humanMiltenyi Biotec130-059-9012 mL
FLOWJOBD
Gibco Fetal Bovine SerumThermo Fisher Scientific12676029500 mL
Mouse IgG1 monoclonal - Isotype controlabcamab81200
Mouse monoclonal Anti-Human IgG4 Fcabcamab99825Clone HP6025
Pacific Blue Mouse Anti-Human CD3BD558117Clone UCHT1
PE-Cy7 Mouse anti-Human CD279 (PD-1)BD561272Clone EH12.1
PE-Cy7 Mouse IgG1 κ Isotype ControlBD557646

参考文献

  1. Gong, J., Chehrazi-Raffle, A., Reddi, S., Salgia, R. Development of PD-1 and PD-L1 inhibitors as a form of cancer immunotherapy: a comprehensive review of registration trials and future considerations. Journal for ImmunoTherapy of Cancer. 6 (1), 8 (2018).
  2. Borghaei, H., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Nonsquamous Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (17), 1627-1639 (2015).
  3. Brahmer, J., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Squamous-Cell Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (2), 123-135 (2015).
  4. Herbst, R. S., et al. Pembrolizumab versus docetaxel for previously treated, PD-L1-positive, advanced non-small-cell lung cancer (KEYNOTE-010): a randomised controlled trial. The Lancet. 387 (10027), 1540-1550 (2016).
  5. Postow, M. A., Sidlow, R., Hellmann, M. D. Immune-Related Adverse Events Associated with Immune Checkpoint Blockade. The New England Journal of Medicine. 378 (2), 158-168 (2018).
  6. Weber, J. S., et al. Safety Profile of Nivolumab Monotherapy: A Pooled Analysis of Patients With Advanced Melanoma. Journal of Clinical Oncology. 35 (7), 785-792 (2017).
  7. Champiat, S., et al. Management of immune checkpoint blockade dysimmune toxicities: a collaborative position paper. Annals of Oncology. 27 (4), 559-574 (2016).
  8. Brahmer, J. R., et al. Phase I study of single-agent anti-programmed death-1 (MDX-1106) in refractory solid tumors: safety, clinical activity, pharmacodynamics, and immunologic correlates. Journal of Clinical Oncology. 28 (19), 3167-3175 (2010).
  9. Bommareddy, P. K., Lowe, D. B., Kaufman, H. L., Rabkin, S. D., Saha, D. Multi-parametric flow cytometry staining procedure for analyzing tumor-infiltrating immune cells following oncolytic herpes simplex virus immunotherapy in intracranial glioblastoma. Journal of Biological Methods. 6 (2), 112 (2019).
  10. Osa, A., et al. Clinical implications of monitoring nivolumab immunokinetics in non-small cell lung cancer patients. JCI Insight. 3 (19), 59125 (2018).
  11. Zelba, H., et al. Accurate quantification of T-cells expressing PD-1 in patients on anti-PD-1 immunotherapy. Cancer Immunology, Immunotherapy. 67 (12), 1845-1851 (2018).
  12. Simoni, Y., et al. Bystander CD8(+) T cells are abundant and phenotypically distinct in human tumour infiltrates. Nature. 557 (7706), 575-579 (2018).
  13. Chiu, H. H., et al. Development of a general method for quantifying IgG-based therapeutic monoclonal antibodies in human plasma using protein G purification coupled with a two internal standard calibration strategy using LC-MS/MS. Analytica Chimica Acta. 1019, 93-102 (2018).

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