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요약

우리는 암 환자에게서 말초 혈액의 단지 한 방울을 요구하는 T 세포에 PD-1-차단 항체의 결합을 평가하기 위한 간단한 유동 세포 분석분석서를 개발했습니다.

초록

PD-1-차단 항체를 포함한 면역 체크포인트 억제제는 다양한 유형의 암에서 치료 결과를 크게 개선했습니다. 이 면역 요법의 약리학적 인 효능은 오래 지속되며 지속적인 혈중 농도로 인해 주사 중단을 넘어서도 연장됩니다. 여기서 우리는 PD-1-차단 항체 니볼루맙 및 펨브롤리주맙의 T 세포 결합 상태를 평가하기 위한 간단한 유동 세포 분석기를 개발했다. 포도당 검사같이, 이 분석실험은 말초 혈액의 단지 1 방울을 요구합니다. T 세포에 결합하는 항체를 시각화하는 것은 항체 혈중 농도를 측정하는 것보다 더 신뢰할 수 있습니다. 추가적으로, 필요한 경우에, 우리는 잠재적으로 PD-1-차단 항체에 묶인 T 세포에 많은 특유한 면역 관련 마커를 분석할 수 있습니다. 따라서, 이것은 암 환자에서 PD-1-차단 항체의 약리효과를 분석하기 위한 간단하고 최소침습적인 전략이다.

서문

PD-1-차단 항체는 비소세포 폐암(NSCLC)1,2,3,4를포함하는 다양한 유형의 암치료를 위한 표준 선택이 되고 있다. 그(것)들은 전통적인 세포 독성 화학요법에 반응하지 않은 암 환자의 부분 집합에 있는 현저한 치료 효력을 보여줍니다. 그러나, PD-1-차단 항체를 포함하는 면역 체크포인트 억제제(ICIs)는, 면역 관련 부작용(irAEs)이라고 불리는 특이적 스펙트럼의 독특하고 뚜렷한 스펙트럼을 유발할 수있다 5. irAEs는 거의 모든 조직에 영향을 미칠 수 있지만, 그들은 가장 일반적으로 위장관에서 관찰, 내분비 땀샘, 피부, 간, 그들은 소양증을 일으킬 수 있습니다, 발진, 구역질, 설사, 및 갑상선 질환6,7. 일반적으로 대부분의 iAEs는 ICI가 발생한 후 1~2개월 이내에 나타납니다. 그러나, 어떤 경우에는, 그(것)들은 처리의 시작 후에 1 년 이상 또는 처리중단후에6,7후에 생길 수 있습니다 . 그(것)들은 또한 그밖 병리에서 구별하기 어려울 지도 모르다 각종 현상을 일으키는 원인이 됩니다. 따라서 iAE를 신속하게 진단하고 적절하게 치료하는 것이 어려울 수 있습니다. irAEs는 모든 조직에 영향을 미칠 수 있고, 그들의 개시는 강하게 PD-1-차단 항체에 묶인 면역 세포, 특히 T 세포를 순환에 의해 영향을 받습니다. 따라서 항체 표적 T 세포를 모니터링하는 간단하고 최소 침습적인 방법은 임상 설정에서 중요하다.

여기에서, 우리는 니볼루맙 또는 펨브롤리주맙을 수신한 암 환자에게서 말초 전혈의 한 방울을 사용하여 T 세포에 PD-1-차단 항체의 결합을 평가하는 간단한 방법을 개발했습니다. 이러한 접근법을 사용하여, 우리는 1) T 세포에 결합하는 항체의 지속 시간, 2) 치료 항체에 의한 T 세포 PD-1 분자의 점유, 3) T 세포의 활성화 상태 및 면역학적 특징을 각각 모니터링할 수 있었다. 이 방법은 이전에 보고된 기술8의수정입니다. 필요한 혈액의 양은 포도당 검사에 필요한 것과 거의 동일하며, 접근법은 단핵 세포 농축 또는 PD-1-차단 항체와의 공동 배양을 필요로 하지 않는다. 우리는 이 방법이 또한 말초 혈액 단핵 세포 (PBMC) 및 흉막 삼출액, 심낭 삼출액, 기관지 정맥 세척액 및 뇌척수액에서 세포를 포함하여 동결 된 샘플을 사용하여 수행 될 수 있음을 확인, 이 전략은 다센터 연구의 맥락에서 유용 할 수 있음을 시사. 이 방법은 iAEs의 조기 진단을 용이하게 할 수 있고, 또한 그들의 증상을 통제하고 PD-1 억제제 후에 후속 치료를 개시하기 위한 최적의 시간을 식별하는 적절한 면역 억제 치료를 결정하는 데 도움이 될 수 있다.

프로토콜

샘플링은 일상적인 임상 절차 동안 수행되었다. 모든 인간 샘플은 헬싱키 선언에 따라, 일본 오사카 대학(15383 및 752)의 윤리검토위원회의 승인을 받아 피험자가 제공한 동의를 얻은 후 얻어졌습니다.

1. 전혈 샘플 준비 및 염색

  1. 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA)을 포함하는 혈액 수집 튜브로 전체 혈액 샘플을 수집합니다.
    참고: 혈액 수집은 일반 바늘 이나 혈액 랜싯을 사용 하 여 수행할 수 있습니다.
  2. 전혈 샘플 20 μL을 5 mL 바닥 폴리스티렌 유동 세포 분석 튜브로 옮김.
    참고 : 튜브에 대한 세포의 비 특이적 결합을 줄이기 위해 인산염 완충 식염수 (PBS)에서 2 % 태아 소 혈청 (FBS)의 1 mL을 튜브에 첨가하고 샘플에 적용하기 전에 10 s 동안 소용돌이를 제거합니다.
  3. PBS에 2% FBS의 20 μL을 추가합니다.
  4. 10 μL의 인간 전용 FcR 차단 시약을 추가합니다. 잘 섞어서 실온에서 15분 동안 배양합니다.
  5. 적혈구 리시스 완충액 500 μL을 추가합니다. 잘 섞어서 실온에서 10분 동안 배양합니다.
  6. PBS에 2% FBS 의 4 mL을 추가하고 4 °C에서 5 분 동안 400 x g (1,500 rpm)에서 세포를 스핀 다운하십시오. 포부로 상급을 제거하십시오.
  7. 1.6단계에서 설명한 세척 및 흡인 과정을 반복한다.
  8. PBS에서 2% FBS의 100 μL에서 세포를 다시 중단하고 각각 50 μL의 2개의 튜브로 나눕니다.
  9. 표면 마커 항체를 추가합니다(표1). 잘 섞어서 어둠 속에서 실온에서 20 분 동안 배양하십시오.
    참고: T 세포 면역 상태를 프로파일링할 때, 마커의 수는 유세포 측정 기계 품질에 기초하여 증가될 수 있다.
  10. 1.6단계에서 설명한 대로 샘플을 2x 세척합니다.
  11. PBS에서 2% FBS의 200 μL에서 세포를 다시 중단합니다.

2. 유동 세포 측정 분석

  1. 유세포계에 튜브를 삽입하고 기본적으로 권장 프로토콜9에따라 세포를 획득합니다.
  2. 10,000개의 이벤트를 림프구 게이트(그림1A)로기록하고 분석을 위해 .fcs 파일로 흐름 데이터를 내보냅니다.
  3. 분석 소프트웨어에서 파일을 엽니다. 전방 산란(FSC) (A) 대 측면 산란(SSC) (A) 플롯 및 게이트 림프구(도1A)에서세포를 시각화한다.
  4. FSC (H) 대 FSC (H) 및 SSC (H) 대 SSC(W) (그림 1B)를사용하여 단일 셀을 선택하고 CD3 대 CD8 또는 CD3 대 CD4 플롯에 표시한 후, CD8 T 셀 및 CD4 T 셀을 각각 게이트(그림 1C).
  5. 게이트 된 세포를 선택하고 PD-1 대 인간 IgG4 플롯에 표시 한 후, PD-1-차단 항체 바인딩 CD8 및 CD4 T 세포를 이소타입 제어에 기초하여 식별합니다(그림 1D).

결과

게이팅 전략 및 유세포분석분석(도1)은NSCLC 환자 말초 혈액의 한 방울로부터 수득된 T 세포에 결합하는 PD-1-차단 항체를 검출할 수 있다. PD-1-차단 항체가 투여되기 전에, 인간 IgG4 양성 CD8 또는 CD4 T 세포가 존재하지 않으며, PD-1-검출 항체(EH12.1)에 의해 PD-1 발현이 확인될 수있다(그림 2A). 니볼루맙 또는 펨브롤리주맙 투여 후, IgG4(니볼루맙, ?...

토론

이 기사에서는, 우리는 우리가 원래 nivolumab 검출을 위해 개발한 말초 혈액의 한 방울에서 파생된 T 세포에 결합된 PD-1-차단 항체를 검출하기 위하여 유세포계를 이용한 방법을 보고합니다10. 이 기술은 매우 간단하고 수행하기 쉽지만 정확한 결과를 얻으려면 두 가지 중요한 사항을 주목해야합니다. 하나는 PD-1 분자를 검출하기 위해 니볼루맙 및 펨브롤리주맙과 경쟁하는 적절한 ...

공개

저자는 공개 할 것이 없다.

감사의 말

이 작품은 일본과학진흥회(JP17K16045)와 일본의학연구개발원(JP18cm0106335, 19cm0106310)의 보조금을 지원받았습니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
10X RBC Lysis Buffer (Multi-species)Thermo Fisher Scientific00-4300-5450 mL
APC/Cyanine7 anti-human CD4 AntibodyBioLegend300518Clone RPA-T4
BD FACS Canto II Flow CytometerBD
Brilliant Violet 510 anti-human CD8a AntibodyBioLegend301048Clone RPA-T8
Dulbecco's Phosphate Buffered Salinenacalai tesque14249-95500 mL
Falcon Round-Bottom Polystyrene TubesSTEMCELL Technologies3520585 mL
FcR Blocking Reagent, humanMiltenyi Biotec130-059-9012 mL
FLOWJOBD
Gibco Fetal Bovine SerumThermo Fisher Scientific12676029500 mL
Mouse IgG1 monoclonal - Isotype controlabcamab81200
Mouse monoclonal Anti-Human IgG4 Fcabcamab99825Clone HP6025
Pacific Blue Mouse Anti-Human CD3BD558117Clone UCHT1
PE-Cy7 Mouse anti-Human CD279 (PD-1)BD561272Clone EH12.1
PE-Cy7 Mouse IgG1 κ Isotype ControlBD557646

참고문헌

  1. Gong, J., Chehrazi-Raffle, A., Reddi, S., Salgia, R. Development of PD-1 and PD-L1 inhibitors as a form of cancer immunotherapy: a comprehensive review of registration trials and future considerations. Journal for ImmunoTherapy of Cancer. 6 (1), 8 (2018).
  2. Borghaei, H., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Nonsquamous Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (17), 1627-1639 (2015).
  3. Brahmer, J., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Squamous-Cell Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (2), 123-135 (2015).
  4. Herbst, R. S., et al. Pembrolizumab versus docetaxel for previously treated, PD-L1-positive, advanced non-small-cell lung cancer (KEYNOTE-010): a randomised controlled trial. The Lancet. 387 (10027), 1540-1550 (2016).
  5. Postow, M. A., Sidlow, R., Hellmann, M. D. Immune-Related Adverse Events Associated with Immune Checkpoint Blockade. The New England Journal of Medicine. 378 (2), 158-168 (2018).
  6. Weber, J. S., et al. Safety Profile of Nivolumab Monotherapy: A Pooled Analysis of Patients With Advanced Melanoma. Journal of Clinical Oncology. 35 (7), 785-792 (2017).
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  8. Brahmer, J. R., et al. Phase I study of single-agent anti-programmed death-1 (MDX-1106) in refractory solid tumors: safety, clinical activity, pharmacodynamics, and immunologic correlates. Journal of Clinical Oncology. 28 (19), 3167-3175 (2010).
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  13. Chiu, H. H., et al. Development of a general method for quantifying IgG-based therapeutic monoclonal antibodies in human plasma using protein G purification coupled with a two internal standard calibration strategy using LC-MS/MS. Analytica Chimica Acta. 1019, 93-102 (2018).

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