猪模型中闭合胸部双心室压力-体积循环记录与导管

摘要

在这里，我们提出了一种闭合胸部方法，用于急性右心室功能不全猪的基于入院的双室压力 - 体积环记录。

摘要

压力容积 （PV） 回路记录可对心室表现的负荷无关变量进行最先进的研究。单心室评估通常在临床前研究中进行。然而，由于左右心室的平行和连续连接，左右心室发挥功能上的相互依存性，鼓励同时评估两个心室。此外，各种药物干预可能会以不同的方式影响心室及其前负荷和后负荷。

我们描述了在急性右心室 （RV） 超负荷的猪模型中，对基于入院的双心室 PV 环记录的闭胸方法。我们利用微创技术，所有血管通路均由超声波引导。PV导管在荧光镜引导下放置，以避免动物开胸，因为闭合胸部进路可维持相关的心肺生理学。导纳技术提供实时PV环路记录，无需事后处理。此外，我们还解释了在所介绍过程的关键时间点的一些基本故障排除步骤。

所提出的方案是一种可重复且生理相关的方法，可在大型动物模型中获得双心室心脏PV环记录。这可以应用于各种各样的心血管动物研究。

引言

压力-容积 （PV） 回路包含大量血流动力学信息，包括收缩末期和舒张末期压力和血容量、射血分数、卒中量和卒中功¹。此外，瞬态预载荷降低创建了一系列环路，从中可以导出与负载无关的变量^2，3。这种与负荷无关的心室功能评估使PV环路记录成为血流动力学评估中最先进的。PV环路记录可以在人类身上进行，但主要用于并推荐用于临床前研究^4，5，6。

压力-容积环路可从右心室 （RV） 和左心室 （LV） 获得。大多数研究假设都集中在单个心室上，导致仅记录单心室PV环^{7，8，9，10}。然而，左右心室由于在紧绷心包内有连续和平行连接而导致收缩期和舒张期相互依赖^性11。一个心室的输出量或大小的变化将影响另一个心室的大小、负荷条件或灌注。因此，双心室PV环记录可以更全面地评估心脏总表现。药物干预也可能对两个心室及其负荷状况产生不同的影响，进一步强调了双心室评估的重要性。

PV 导管可通过多种途径进入任一心室，包括从心脏顶端或通过 RV 流出道进入的开胸入路^{7、10、12、13、14}。然而，胸部的开口会影响生理状况，并可能引入偏倚。

根据我们先前研究的经验^{15，16，17，18}，我们的目标是在急性房车衰竭的大型动物模型中展示我们的闭胸双心室PV环记录方法，对心肺生理学的影响最小（图1）。

研究方案

该协议是根据丹麦和机构关于动物福利和伦理的指导方针制定和使用的。丹麦动物研究监察局批准了该研究（许可证号:2016-15-0201-00840）。使用了约60公斤的丹麦雌性屠宰猪（Landrace，Yorkshire和Duroc的杂交品种）。

1. 麻醉和通气

1. 用Zoletil混合物1 mL / kg（ 见材料表）作为肌内注射预先麻醉清醒的猪，以减少动物在运输过程中的压力，疼痛和焦虑。
2. 将动物从农场设施运送到研究设施。
3. 在耳静脉中建立静脉通路。
   1. 为此，请轻轻止血带耳朵以引起静脉血瘀。用乙醇在可见的直静脉上消毒皮肤。
   2. 用20 G静脉导管刺穿静脉并释放止血带。确保用胶带固定通道，以避免移位。
   3. 用等渗盐水冲洗，以确保静脉导管的正确定位。观察盐水通过时静脉的轻微脱色。
      注意:如果出现皮下隆起，静脉导管处于皮下位置，必须将其取出。考虑建立第二次静脉通路作为备用。
4. 将动物移到手术台上。将其置于仰卧位。
5. 通过7号管的直接喉镜检查猪插管。将管子固定在动物的鼻子/头部，以避免任何意外拔管。通过在通气、听诊和/或足够的呼气二氧化碳上寻找相等的胸腔运动，确保导管的正确定位。
6. 将管道连接到预先测试的机械通风机并开始通气。使用压力控制、容积门控通风，潮气量为 8 mL/kg，低流量通风。对于正常氧或更高，吸入氧（_FiO2）的比例可以为0.21。调整呼吸频率以达到5 kPa的潮气末二氧化碳。
7. 通过丙泊酚3mg / kg / h和芬太尼6.25g / kg / h开始全静脉麻醉。通过缺乏角膜反射和对疼痛刺激的反应来确保足够的麻醉。如有必要，增加输注。
   注意:在动物恢复足够的意识以保持胸骨卧位（生存协议）或被安乐死之前，任何时候都不要让动物无人看管。
8. 用3导联心电图和脉搏血氧饱和度监测动物。
9. 测量体温。如有必要，将动物加热到38-39°C的正常猪温。
   注意:体温过低可能会增加由器械触发的心律失常发生的风险¹⁹。
10. 通过经阴道通路插入膀胱导管（尺寸 14），并连接到尿液采样袋。
11. 根据研究方案和要研究的科学假设，考虑静脉注射肝素（必要时每4-6小时重复5000个IE）和/或amiodaron（300mg输注超过20分钟）。
    注意:肝素化可以在建立血管内通路后进行。这些药物可能会减轻仪器的使用，但可能会使结果偏倚。或者，在静脉鞘上缓慢输注生理盐水可预防腔内血栓形成。
12. 在眼睛上使用兽医软膏以防止干燥。

2. 血管内通路

注意:血管内通路应建立于右颈外静脉、左颈外静脉、左颈动脉、左股动脉和右股静脉。在猪中，颈外静脉比颈内静脉大得多，因此更容易进入。本节所需的所有材料如图 2A所示。

1. 在穿刺部位剃须动物，以便进行血管内通路。
2. 用氯己定（或聚维酮碘）消毒皮肤，并用异丙醇擦拭干净。再重复 2 个周期。
3. 在消毒区域放置无菌悬垂物，盖子上有一个位于中央的孔。
4. 使用带有线性探头的超声设备。用无菌盖住探针，并使用无菌凝胶进行血管检查。
5. 使用17G无菌静脉导管刺穿皮肤，并通过超声引导针头到血管内定位（图2B，C）。
6. 使用Seldinger技术用导丝替换针头。取出静脉导管，只留下血管内腔中的导丝。接下来，在导丝上做一个小的皮肤切口（~5毫米），以方便鞘的插入。
7. 将8法国（F）护套放在导丝上并放入所选的容器中（Seldinger技术）。在右颈外静脉（用于右心导管插入术）和左颈动脉（用于左心室PV环导管）中选择8F鞘。需要足够的腔以避免损坏导管。
8. 在左颈外静脉放置7F鞘。稍后将更换为更大的护套（见步骤4.4-4.6）。
9. 在左股动脉放置7F鞘。该通道用于侵入性血压测量和血气采样。
10. 在右股静脉放置 12F（或 14F，如果可用）鞘，用于下腔静脉 （IVC） 球囊插入。考虑对较大的护套使用扩张器，采用两步法。
11. 通过抽血（分别为静脉或动脉）和易用等渗盐水冲洗来确认和控制所有鞘的位置。如果一个人可以毫无阻力地抽血，鞘被正确定位在血管内。
12. 用皮肤缝合线（尺寸3.0）固定所有鞘，以避免意外去除鞘。在方案完成后，皮肤缝合线将与鞘的去除一起被移除。
13. 将股动脉通道连接到压力传感器，并根据大气压力进行校准。确保此设置生成正确形式的动脉压曲线。
14. 从动脉鞘中抽取动脉血样本，并在动脉血液采样装置上进行分析，以评估pH值，动脉二氧化碳分压（_PaCO2）和氧气（_PaO2，取决于您选择的_FiO2）以及血红蛋白，电解质，血糖和乳酸水平。
    1. 如有必要，通过输注所需产品将电解质和血糖校正至标准值。特别是，考虑纠正钾水平，因为钾紊乱可能会增加器械引发的心律失常发生的风险。
15. 如果猪在实验前禁食，请考虑推注等渗盐水（10 mL / kg，输注30-60分钟）或类似的晶体，以抵消低血容量。
16. 考虑连续输注 4 mL/kg/h 等渗盐水，以抵消整个方案中的汗液。
    注意:实验可以在此步骤中暂停。

3. 右心导管插入术

1. 用生理盐水冲洗 Swan Ganz 导管，并确保球囊正确充气。
2. 将 Swan Ganz 导管的端口连接到压力传感器。将压力重置为大气压，将两个压力端口（分别用于肺动脉和中心静脉压）保持在猪的腋窝中水平。
3. 将 Swan Ganz 导管通过 8F 鞘插入右颈静脉（步骤 2.7）。
   注意:使用透视检查时，应穿铅围裙或类似防护装置。
4. 当 Swan Ganz 导管的远端部分脱离鞘时，在透视镜检查中观察。用相关的注射器给球囊充气。
   注意:鞘内天鹅甘兹气球的膨胀会损坏气球。透视透视的前后视图足以治疗所有所述手术。
5. 在透视检查中缓慢地推进Swan Ganz导管的运动。较慢的进展将允许血流引导导管。
6. 观察远端端口在进入房车时和肺动脉后不久的压力信号的变化（图3）。确保导管向前推进，没有任何阻力。
   1. 确保压力从中心静脉循环中的5-8 mmHg变化到收缩期的20-30 mmHg和RV的舒张期0-5 mmHg。通过肺动脉瓣膜后，舒张压将为10-15 mmHg（压力信号形状的变化见 图3 ）。
      注意:RV 和肺动脉收缩压高于 40（或平均肺动脉压高于 25）可能是动物肺气肿感染导致肺动脉高压的体征。请记住，正压机械通气也可能增加肺动脉压。
7. 放气球囊，确保远端压力端口仍在肺主动脉中。使用透视和压力信号进行此验证。

4. 右心室压力-容积导管插入术（图4）

1. 阅读并遵循制造商的说明。让PV导管在盐水中浸泡至少30分钟。
2. 以8通道设置（来自两个心室的压力，体积，相位和量级）打开数据采集软件（参见 材料表）。单击 "开始" 以确保记录压力信号。寻找压力信号中的过度噪音。值将接近0 mmHg，因为压力记录仪仍在动物外部。
3. 通过将压力端口保持在盐水表面正下方，将压力校准到零水平，以避免来自上方水柱的不必要的压力影响。
4. 将长导丝插入左颈静脉的7F鞘（步骤2.8）。在透视镜检查的指导下，将导丝推进穿过上中央静脉，右心房（RA），进入下腔静脉。确保进步没有任何阻力。当导丝通过 RA 时，过早收缩期事件很常见。
5. 提取7F鞘，将导丝留在静脉循环中。压缩入口点以避免出血。使用Seldinger技术，将7F护套换成16F护套。如有必要，延长皮肤切口以获得更大的鞘。
6. 在荧光透视的指导下，将16F护套推进到导丝上，直到鞘的尖端（不是扩张器）达到上腔静脉的水平（图4B）。
7. 通过小心拉动，拔出扩张器和导丝，但要注意不要取下鞘。用等渗盐水冲洗鞘，以避免腔内血液凝固。
8. 将PV导管插入16F护套。
9. 使用透视检查跟随PV导管通过鞘，直到压力端口离开鞘。
10. 小心地将鞘和 PV 导管一起推进，直到鞘刚好超出心包边界。
11. 将PV导管推进到RA中（图4C）。
12. 使用鞘长度帮助将PV导管从RA推进到更前方的RV;将16F鞘的外端向下（仰卧动物的后部）和内侧，这将指向鞘的前部。
13. 将 PV 导管推进到房车中。这可以通过从PV导管到典型心室形状的压力信号变化以及PV导管与右心室顶点相遇时的触觉阻力来验证。
14. 一旦PV导管进入RV，将16F鞘缩回胸腔外，以避免位于心脏附近的装置的任何血流动力学或电影响（图4D）。
15. 优化PV导管定位，基于透视，尽可能靠近RV顶点，但不要让它接触心内膜。
    注意:使用透视检查观察PV导管和心内膜之间过量的机械接触（如果有的话）。这被视为弯曲的PV导管（包括其尾纤）和通过心电图监测持续存在过早收缩期事件。
    1. 用粘合胶带将PV导管固定在护套的外端，以确保导管定位的稳定性。
       注意:有时，浮动导管可能会导致外跳。如果是这样，请尝试在不过度压缩心内膜的情况下固定它。
16. 按照制造商的协议选择相关数量的记录段，并根据记录的相位和幅度信号优化RV中的PV导管定位。
    注意:对于体重为60公斤的猪，本实验使用了两段或三段用于RV，最常见的是LV的三段。较小的动物需要更少的片段，反之亦然。导管的定位最初基于信号的大小;压力大小环路的形状应类似于所需的压力-体积回路。幅度幅度应尽可能高（5-10 mS）。相位角应在1-3 ^o 以内，具有最高的振幅（约1.5 ^o）。

5. 左心室压力-容积导管插入术（图5）

1. 阅读并遵循制造商的说明。让PV导管在盐水中浸泡至少30分钟。
2. 将压力校准到零水平（步骤4.3）。
3. 将PV导管插入左颈动脉的8F鞘中。
4. 通过荧光透视观察PV导管，当PV导管通过鞘朝主动脉瓣方向移动时（图5B）。当PV导管被主动脉瓣停止时，会感觉到阻力。在透视检查中，观察到导管弯曲。
   注意:偶尔，PV导管会变成降主动脉。这可以通过荧光透视和PV导管压力曲线上不太突出的主动脉缺口来识别。
5. 将 PV 导管缩回主动脉瓣上方约 1 cm 处。
6. 将 PV 导管的下一次快速推进同步到心脏周期的收缩期。这将通过开放的主动脉瓣发生。通过从 PV 导管到典型心室形状的压力信号变化，可以验证成功与否。
7. 如果尝试通过瓣膜前进失败，请旋转PV导管以更好地定位在升主动脉的中心。如果需要，请重试。
8. 一旦进入左心室，根据透视优化左心室PV导管定位，尽可能靠近左心室顶点，但不要让它接触心内膜（图5C）。请参阅步骤 4.15。
   注意:偶尔，浮动导管可能会导致心脏过早收缩。如果是这样，请尝试在不过度压缩心内膜的情况下固定它。
9. 遵循制造商的协议，根据记录的相位和幅度信号选择相关数量的记录段，并优化LV中PV导管的定位（参见步骤4.16）。

6. 下腔静脉球囊插入术

1. 根据需要用生理盐水或造影剂填充注射器以进行充气，并确保球囊可以正确充气。
2. 将导丝插入右股静脉的12F鞘中。
3. 将导丝推进到膜片水平处的IVC。
4. 将球囊插入导丝上，并在末端到期时将其推进到隔膜水平（图5D）。
5. 收回导丝并用生理盐水冲洗管腔，以避免血液凝固。

7. 压力-容积导管校准

1. 阅读并遵循制造商的说明。
2. 确保心电监护仪上稳定的窦性心律和稳定的心肺变量5-10分钟。
3. 使用 Swan Ganz 导管通过热稀释测量心输出量 （CO）。平均使用三次注射10 mL的5°C等渗葡萄糖，变异小于10%。在一氧化碳测量过程中观察动物的心率（HR）。将冲程量 （SV） 计算为 SV = CO/HR（单位 mL）。对于每周期体积为 80-110 mL 的 60 kg 猪，正常 CO 为 4-6 L/min。
4. 将 SV 输入到 LV 和 RV 的 PV 盒中。
5. 检查从两个心室接收到最佳相位和幅度信号。值得注意的是，两个光伏盒必须以不同的频率录制，以避免电子串扰。
6. 在短暂性呼吸暂停中，校准（"扫描"）PV信号。
7. 如果校准令人满意，请确保两个心室PV回路的正确形状，以及真实的压力和体积。如果没有，请重新进行校准。

8. 基线评估

注意:在研究方案开始之前，实验可以暂停在此水平上，以稳定血液动力学。

1. 要记录 PV 环路时，请遵循制造商的说明。在数据采集软件中 按开始 。确保 PV 环路的形状仍然可接受。
2. 记录超过30-60秒连续通风的PV循环。通过找到例如三个呼吸周期的平均值来执行分析。或者，在呼吸机上进行短暂的喘气，以达到最终呼气，并分析呼吸暂停引起的这些环路。考虑使用低/无呼气末正压 （PEEP） 和最小可调压力限制 （APL） 阀。
   注意:心室功能，尤其是房车，受通气（或自发呼吸）期间胸内压的周期性变化的影响。重要的是，在论文中报告是否在通气或呼吸暂停期间记录了PV回路。
3. 对于与负载无关的 PV 变量，请屏住呼吸并等待几次心跳，然后用所选液体缓慢充气 IVC 球囊（步骤 6.1）。球囊逐渐降低心脏前负荷。
4. 观察房车PV回路如何逐渐变小并向左移动。
   注意:RV 预负荷逐渐降低将逐渐降低 RV 舒张末期容积。较低的体积将导致较低的压力和输出（Starling机制）。有关更多详细信息，请参阅参考文献^1，2，3。
5. 重要的是，通过保持相关注射器上的压力足够长的时间以降低左心室预载荷（与RV串联）来保持球囊充气。观察左心室压力和体积的逐渐减少。有关示例，请参阅代表性成果部分。
6. 快速，放气气球并打开通风。
7. 如果反应不令人满意，即没有过早的心脏复合物、窦性心动过缓或类似的心功能影响，则重做8.3-8.7。
8. 让猪在下一次IVC闭塞之前稳定2-5分钟。
   注意:血液动力学会受到屏气和前负荷减少的短暂影响，特别是在心血管损害模型中。
9. 考虑执行三个令人满意的遮挡（见8.7），以提高统计分析的稳健性。

9. 后协议

1. 在生存研究中，取出并清洁所有血管内设备（PV 导管、IVC 球囊和 Swan Ganz 导管）。
   1. 剪下使鞘固定到位的皮肤缝合线。通过手动拉取每个护套。在每个静脉通路部位压迫几分钟以达到止血。
   2. 对于动脉，取出鞘并压缩更长时间（5-10分钟）以达到止血。或者，考虑使用血管闭合装置。
   3. 用一条自适应皮肤缝合线（3.0，可吸收缝合线）从鞘上关闭皮肤切口，以避免出血和感染。在每个皮肤切口周围皮下涂抹5 mL布比卡因（5 mg / mL），以缓解疼痛。
2. 一旦所有装置都被移除并达到止血，停止麻醉输注。在此阶段仔细观察动物。
3. 保持动物插管（最初袖带充气），直到出现喉咙反射并且动物充分清醒以进行拔管。在拔管前后通过脉搏血氧饱和度法继续测量氧气水平，以确保适当的通气。如有必要，请吸氧。
4. 在完全康复之前，不要将动物归还给其他动物。
5. 对于生存手术，保持适当的无菌条件。请参阅步骤 2.2-2.5。每天观察皮肤切口和缝合线，以发现感染的迹象，包括测量动物的体温。
6. 实验结束后，用致命剂量的戊巴比妥（15 mL，400 mg / mL）进行安乐死。

结果

本说明描述了一种在大型动物中实现来自RV和LV的基于导纳的PV记录的方法。

为了比较我们在RV和LV中的同时PV记录，我们对来自我们最大研究的双心室CO测量值进行了线性回归¹⁸ ，同时进行RV CO和LV CO测量的数量最多（来自12只动物的n = 379个记录）。我们发现斜率为1.03（95%CI 0.90-1.15），Y截距为695（95%CI -2-1392），^r2= 0.40。这表明每个心室中PV导管测量的CO...

讨论

本文介绍了一种可重复的微创闭合胸入路，用于双心室压力-体积环记录。

将PV导管从RA推进到RV是该协议中最关键的步骤。RV的复杂组成和导管的刚度使插入易于膨胀和几何上具有挑战性的RV变得复杂。这种困难可以解释为什么通常首选开胸器械。在试点研究期间，尝试并放弃了许多通路和技术，包括右颈外静脉通路，胸骨上通路进入上腔静脉和下腔静脉。根据这些试点研究，...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
12L-RS	GE Healthcare Japan	5141337	Ultrasound probe
12L-RS	GE Healthcare Japan	5141337	Ultrasound probe
Adhesive Aperature Drape (OneMed)	evercare	1515-01	75 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Adhesive Aperature Drape (OneMed)	evercare	1515-01	75 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Alaris GP Guardrails plus	CareFusion	9002TIG01-G	Infusion pump
Alaris GP Guardrails plus	CareFusion	9002TIG01-G	Infusion pump
Alaris Infusion set	BD Plastipak	60593
Alaris Infusion set	BD Plastipak	60593
Alkoholswap	MEDIQ Danmark	3340012	82% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Alkoholswap	MEDIQ Danmark	3340012	82% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Amplatz Support Wire Guide Extra-Stiff	Cook Medical	THSF-25-260-AES	diameter: 0.025 inches, length: 260 cm
Amplatz Support Wire Guide Extra-Stiff	Cook Medical	THSF-25-260-AES	diameter: 0.025 inches, length: 260 cm
BD Connecta	BD	394601	Luer-Lock
BD Connecta	BD	394601	Luer-Lock
BD Emerald	BD	307736	10 mL syringe
BD Emerald	BD	307736	10 mL syringe
BD Luer-Lock	BD Plastipak	300865	BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Luer-Lock	BD Plastipak	300865	BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Platipak	BD	300613	20 mL syringe
BD Platipak	BD	300613	20 mL syringe
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393204	20G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393204	20G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393208	17G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393208	17G
Butomidor Vet	Richter Pharma AG	531943	10 mg/mL
Butomidor Vet	Richter Pharma AG	531943	10 mg/mL
Check-Flo Performer Introducer	Cook Medical	RCFW-16.0P-38-30-RB	16 F sheath, 30 cm long
Check-Flo Performer Introducer	Cook Medical	RCFW-16.0P-38-30-RB	16 F sheath, 30 cm long
Cios Connect S/N 20015	Siemens Healthineers		C-arm
Cios Connect S/N 20015	Siemens Healthineers		C-arm
D-LCC12A-01	GE Healthcare Finland		Pressure measurement monitor
D-LCC12A-01	GE Healthcare Finland		Pressure measurement monitor
Durapore	3M	-	Adhesive tape
Durapore	3M	-	Adhesive tape
E-PRESTIN-00	GE Healthcare Finland	6152932	Respirator tubes
E-PRESTIN-00	GE Healthcare Finland	6152932	Respirator tubes
Exagon vet	Richter Pharma AG	427931	400 mg/mL
Exagon vet	Richter Pharma AG	427931	400 mg/mL
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12F	St. Jude Medical	406128	L: 12 cm
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12F	St. Jude Medical	406128	L: 12 cm
Favorita II	Aesculap		Type: GT104
Favorita II	Aesculap		Type: GT104
Fentanyl	B. Braun	71036	50 mikrogram/mL
Fentanyl	B. Braun	71036	50 mikrogram/mL
Ketaminol Vet	MSD/Intervet International B.V.	511519	100 mg/mL
Ketaminol Vet	MSD/Intervet International B.V.	511519	100 mg/mL
LabChart	ADInstruments		Data aquisition software
LabChart	ADInstruments		Data aquisition software
Lawton 85-0010 ZK1	Lawton		Laryngoscope
Lawton 85-0010 ZK1	Lawton		Laryngoscope
Lectospiral	VYGON	1159.90	400 cm (Luer-LOCK)
Lectospiral	VYGON	1159.90	400 cm (Luer-LOCK)
Lubrithal eye gel	Dechra, Great Britain
Lubrithal eye gel	Dechra, Great Britain
MBH qufora	MBH-International A/S	13853401	Urine bag
MBH qufora	MBH-International A/S	13853401	Urine bag
Natriumklorid	Fresenius Kabi	7340022100528	9 mg/ml Isotonic saline
Natriumklorid	Fresenius Kabi	7340022100528	9 mg/ml Isotonic saline
PICO50 Aterial Blood Sampler	Radiometer	956-552	2 mL
PICO50 Aterial Blood Sampler	Radiometer	956-552	2 mL
Portex Tracheal Tube	Smiths Medical	100/150/075	"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
Portex Tracheal Tube	Smiths Medical	100/150/075	"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
PowerLab 16/35	ADInstruments	PL3516	Serial number: 3516-1841
PowerLab 16/35	ADInstruments	PL3516	Serial number: 3516-1841
Pressure Extension set	CODAN	7,14,020	Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Pressure Extension set	CODAN	7,14,020	Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Propolipid	Fresenius Kabi	21636	Propofol, 10 mg/mL
Propolipid	Fresenius Kabi	21636	Propofol, 10 mg/mL
PTS-X	NuMED Canada Inc.	PTSX253	Inferior vena cava balloon
PTS-X	NuMED Canada Inc.	PTSX253	Inferior vena cava balloon
Radiofocus Introducer II	Radiofocus/Terumo	RS+B80N10MQ	6+7+8F sheaths
Radiofocus Introducer II	Radiofocus/Terumo	RS+B80N10MQ	6+7+8F sheaths
Rompun Vet	Beyer	86450917	Xylazin, 20 mg/mL
Rompun Vet	Beyer	86450917	Xylazin, 20 mg/mL
Rüsch Brilliant AquaFlate Glycerine	Teleflex	178000	Bladder catheter, size 14
Rüsch Brilliant AquaFlate Glycerine	Teleflex	178000	Bladder catheter, size 14
S/5 Avance	Datex-Ohmeda	-	Mechanical ventilator
S/5 Avance	Datex-Ohmeda	-	Mechanical ventilator
Safersonic Conti Plus & Safergel	SECMA medical innovation	SAF.612.18120.WG.SEC	18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Safersonic Conti Plus & Safergel	SECMA medical innovation	SAF.612.18120.WG.SEC	18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Scisense Catheter	Transonic Scisense	FDH-5018B-E245B	Serial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Catheter	Transonic Scisense	FDH-5018B-E245B	Serial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Pressure-Volume Measurement System	Transonic Scisense	ADV500	Model: FY097B. Pressure-volume box
Scisense Pressure-Volume Measurement System	Transonic Scisense	ADV500	Model: FY097B. Pressure-volume box
Swan-Ganz CCOmbo	Edwards Lifesciences	744F75	110 cm
Swan-Ganz CCOmbo	Edwards Lifesciences	744F75	110 cm
TruWave Pressure Monitoring Set	Edwards Lifesciences	T434303A	210 cm
TruWave Pressure Monitoring Set	Edwards Lifesciences	T434303A	210 cm
Vivid iq	GE Medical Systems China	Vivid iq
Vivid iq	GE Medical Systems China	Vivid iq
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)	Virbac	83046805	Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)	Virbac	83046805	Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection