АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь мы представляем закрытый грудной подход к записи бивентрикулярной петли давления и объема на основе приема у свиней с острой дисфункцией правого желудочка.

Аннотация

Запись контура давления-объема (PV) позволяет проводить современные исследования независимых от нагрузки переменных производительности желудочков. Одножелудочковая оценка часто проводится в доклинических исследованиях. Однако правый и левый желудочки оказывают функциональную взаимозависимость из-за их параллельных и последовательных соединений, поощряя одновременную оценку обоих желудочков. Кроме того, различные фармакологические вмешательства могут по-разному влиять на желудочки и их преднагрузки и перегрузки.

Мы описываем наш подход к закрытой грудной клетке к бивентрикулярным записям PV-петли на основе допуска в свиной модели острой перегрузки правого желудочка (RV). Мы используем минимально инвазивные методы со всеми сосудистыми выходами под ультразвуком. Фотоэлектрические катетеры расположены под флюороскопическим руководством, чтобы избежать торакотомии у животных, поскольку закрытый грудной подход поддерживает соответствующую сердечно-легочную физиологию. Технология допуска обеспечивает запись фотоэлектрических циклов в режиме реального времени без необходимости пост-специальной обработки. Кроме того, мы объясняем некоторые важные шаги по устранению неполадок в критические моменты времени представленной процедуры.

Представленный протокол представляет собой воспроизводимый и физиологически значимый подход к получению записи бивентрикулярной сердечной фотоэлектрической петли на большой животной модели. Это может быть применено к большому разнообразию сердечно-сосудистых исследований на животных.

Введение

Контуры под давлением (PV) содержат большое количество гемодинамической информации, включая конечное систолическое и конечное диастолическое давления и объемы, фракцию выброса, ударный объем и ходовую работу1. Кроме того, временное уменьшение преднагрузки создает семейство циклов, из которых могут быть получены независимые от нагрузки переменные2,3. Эта независимая от нагрузки оценка функции желудочков делает записи фотоэлектрических петель самыми современными в гемодинамической оценке. Запись фотоэлектрической петли может быть выполнена на людях, но в основном используется и рекомендуется в доклинических исследованиях4,5,6.

Объемные петли давления могут быть получены как из правого желудочка (RV), так и из левого желудочка (LV). Большинство исследовательских гипотез сосредоточены на одном желудочке, в результате чего регистрируются только одновентрикулярные фотоэлектрические петли 7,8,9,10. Однако правый и левый желудочки оказывают систолическую и диастолическую взаимозависимость из-за их последовательных и параллельных соединений внутри плотного перикарда11. Изменения в выходе или размере одного желудочка будут влиять на размер, условия нагрузки или перфузию другого желудочка. Таким образом, записи бивентрикулярных фотоэлектрических петель обеспечивают более полную оценку общей сердечной деятельности. Фармакологические вмешательства могут также по-разному влиять на два желудочка и условия их нагрузки, что еще больше подчеркивает важность бивентрикулярной оценки.

Фотоэлектрические катетеры могут быть продвинуты в любой желудочек несколькими подходами, включая открытый грудной подход с доступом из вершины сердца или через тракт оттока RV7,10,12,13,14. Тем не менее, открытие грудной клетки повлияет на физиологические условия и может внести смещение.

Основываясь на нашем опыте предыдущих исследований15,16,17,18, мы стремимся представить наш закрытый грудной подход к записям бивентрикулярной фотоэлектрической петли в большой животной модели острой недостаточности RV, оказывающей минимальное влияние на сердечно-легочную физиологию (рисунок 1).

протокол

Этот протокол был разработан и использован для исследований, проведенных в соответствии с датскими и институциональными руководящими принципами по благополучию и этике животных. Датская инспекция исследований животных одобрила исследование (лицензия No 2016-15-0201-00840). Использовалась датская убойная свинья женского пола (помесь Ландраса, Йоркшира и Дюрока) весом около 60 кг.

1. Анестезия и вентиляция легких

  1. Предварительно обезболить бодрствующую свинью смесью Золетил 1 мл/кг (см. Таблицу материалов) в виде внутримышечной инъекции для уменьшения стресса, боли и беспокойства животного во время транспортировки.
  2. Транспортировка животного из фермерских помещений в исследовательские учреждения.
  3. Установить внутривенный доступ в ушную вену.
    1. Для этого слегка завяжите ухо, чтобы вызвать застой венозной крови. Продезинфицируйте кожу над видимой, прямой веной этанолом.
    2. Проколите вену венозным катетером 20 г и отпустите жгут. Обязательно зафиксируйте доступ клейкой лентой, чтобы избежать смещения.
    3. Промывайте изотоническим физиологическим раствором для обеспечения правильного позиционирования венозного катетера. Наблюдайте за незначительным обесцвечиванием вены по мере прохождения физиологического раствора.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При появлении подкожной выпуклости венозный катетер находится в подкожном положении и должен быть удален. Рассмотрите возможность установки второго внутривенного доступа в качестве резервной копии.
  4. Переместите животное на операционный стол. Поместите его в лежачее положение.
  5. Интубировать свинью методом прямой ларингоскопии с трубкой размером 7. Прикрепите трубку к морде / голове животного, чтобы избежать случайной экстубации. Обеспечьте правильное позиционирование трубки, ища равные движения грудной клетки на вентиляции, стетоскопии и / или достаточном выдохе углекислого газа.
  6. Подключите трубку к предварительно протестированному механическому вентилятору и запустите вентиляцию. Используйте вентиляцию с регулируемым давлением с закрытым объемом с приливным объемом 8 мл/кг и низкопоточной вентиляцией. Доля вдыхаемого кислорода (FiO2) может составлять 0,21 для нормоксии или выше. Отрегулируйте частоту дыхания, чтобы нацелиться на конечный прилив углекислый газ 5 кПа.
  7. Начинают общую внутривенную анестезию пропофолом 3 мг/кг/ч и фентанилом 6,25 г/кг/ч. Обеспечьте достаточную анестезию отсутствием рефлексов роговицы и реакцией на болезненный раздражитель. Увеличьте настой, если это необходимо.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не оставляйте животное без присмотра в любое время до тех пор, пока оно не придет в достаточное сознание для поддержания стернальной покоя (протокол выживания) или не будет усыплено.
  8. Наблюдайте за животным с помощью 3-выводной электрокардиограммы и пульсоксиметрии.
  9. Измерьте температуру тела. При необходимости нагрейте животное, ориентируясь на нормальную температуру свиньи 38-39 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Гипотермия может увеличить риск аритмогенеза, вызванного приборами19.
  10. Вставьте катетер мочевого пузыря (размер 14) путем трансвагинального доступа и подключите к пакету для забора мочи.
  11. В зависимости от протокола исследования и научной гипотезы, подлежащей исследованию, рассмотрите возможность введения гепарина внутривенно (5000 IE повторяется каждые 4-6 ч, если это необходимо) и / или амиодарона (инфузия 300 мг в течение 20 мин).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Гепаринизация может быть выполнена после установления внутрисосудистых доступов. Эти препараты могут облегчить инструментарий, но могут повлиять на результаты. В качестве альтернативы, медленная инфузия физиологического раствора на внутривенных оболочках может предотвратить внутрилюминальный тромбоз.
  12. Используйте ветеринарную мазь на глазах, чтобы предотвратить сухость.

2. Внутрисосудистые доступы

ПРИМЕЧАНИЕ: Внутрисосудистые доступы должны быть установлены в правой наружной яремной вене, левой наружной яремной вене, левой сонной артерии, левой бедренной артерии и правой бедренной вене. У свиньи наружная яремная вена намного больше внутренней яремной вены и, следовательно, легче доступна. Все материалы, необходимые для этого раздела, показаны на рисунке 2А.

  1. Побрить животное в местах пункции для внутрисосудистых доступов.
  2. Продезинфицируйте кожу хлоргексидином (или повидон-йодом) и протрите чисто изопропиловым спиртом. Повторите еще 2 цикла.
  3. Поместите стерильную драпировку в дезинфицируемое место с центрально расположенным отверстием в крышке.
  4. Используйте ультразвуковой аппарат с линейным зондом. Накройте зонд стерильным покрытием и используйте стерильный гель для исследования сосудов.
  5. Используйте 17 г стерильного венозного катетера для пункции кожи и направления иглы к внутрисосудистому позиционированию с помощью ультразвука (рисунок 2B, C).
  6. Замените иглу направляющей проволокой, используя технику Селдингера. Удалите венозный катетер, оставив только направляющую проволоку во внутрисосудистом просвете. Затем сделайте небольшой кожный разрез (~5 мм), прикрепленный к направляющей проволоке, чтобы облегчить введение оболочки.
  7. Поместите 8 французских (F) ножен на направляющую проволоку и в сосуд по выбору (техника Зельдингера). Выберите оболочку 8F в правой наружной яремной вене (для катеринизации правого сердца) и в левой сонной артерии (для катетера LV PV loop). Достаточный просвет необходим, чтобы избежать повреждения катетеров.
  8. Поместите оболочку 7F в левую наружную яремную вену. Позже он будет заменен на большую оболочку (см. шаги 4.4-4.6).
  9. Поместите оболочку 7F в левую бедренную артерию. Доступ предназначен для инвазивного измерения артериального давления и забора газов крови.
  10. Поместите оболочку 12F (или 14F, если таковая имеется) в правую бедренную вену для введения баллона нижней полой вены (IVC). Рассмотрите возможность использования расширителя в двухэтапном подходе для больших оболочек.
  11. Подтвердить и контролировать позиционирование всех оболочек путем забора крови (венозной или артериальной соответственно) и легкого промывания изотоническим физиологическим раствором. Оболочки правильно расположены внутри кровеносного сосуда, если можно брать кровь без сопротивления.
  12. Зафиксируйте все оболочки кожным швом (размер 3,0), чтобы избежать случайного удаления оболочки. Кожные швы будут сняты после завершения протокола вместе со снятием оболочек.
  13. Подключите доступ бедренной артерии к датчику давления и откалибруйте атмосферное давление. Убедитесь, что эта установка генерирует правильную форму кривой артериального давления.
  14. Возьмите образец артериальной крови из артериальной оболочки и проанализируйте его на устройстве для проб артериальной крови для оценки рН, артериального парциального давления углекислого газа (PaCO2) и кислорода (PaO2, в зависимости от выбранного вами FiO2), а также гемоглобина, электролитов, уровня глюкозы в крови и лактата.
    1. Корректировать электролиты и глюкозу крови, при необходимости, до стандартных значений путем инфузии необходимого продукта. В частности, учитывайте коррекцию уровня калия, так как нарушения калия могут увеличить риск аритмогенеза, вызванного инструментальными средствами.
  15. Если свинья голодала до эксперимента, рассмотрите возможность болюсной инфузии изотонического физиологического раствора (10 мл / кг в течение 30-60 мин) или аналогичного кристаллоида для противодействия гиповолемии.
  16. Рассмотрите возможность непрерывной инфузии 4 мл / кг / ч изотонического физиологического раствора для противодействия потоотделению на протяжении всего протокола.
    ПРИМЕЧАНИЕ: На этом шаге эксперимент можно приостановить.

3. Катеризация правого сердца

  1. Промойте катетер Swan Ganz физиологическим раствором и убедитесь, что баллон надувается правильно.
  2. Подключите порты катетера Swan Ganz к датчикам давления. Сбросьте давление до атмосферного давления, удерживая два порта давления (для легочного артериального и центрального венозного давления соответственно) на средне-подмышечном уровне свиньи.
  3. Вставьте катетер Swan Ganz через оболочку 8F в правую яремную вену (шаг 2.7).
    ВНИМАНИЕ: Свинцовые фартуки или аналогичную защиту следует носить всякий раз, когда используется рентгеноскопия.
  4. Наблюдайте на рентгеноскопии, когда дистальная часть катетера Swan Ganz выходит из оболочки. Надувайте воздушный шар соответствующим шприцем.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Инфляция воздушного шара Swan Ganz внутри оболочки повредит воздушный шар. Передне-заднего вида рентгеноскопии достаточно для всех описанных процедур.
  5. Продвигайте катетер Swan Ganz медленно, следуя его движениям на рентгеноскопии. Более медленное продвижение позволит кровотоку направлять катетер.
  6. Наблюдайте за изменениями сигнала давления из дистального порта при входе в RV и вскоре после легочной артерии (рисунок 3). Убедитесь, что катетер продвигается без какого-либо сопротивления.
    1. Убедитесь, что давление изменяется от 5-8 мм рт.ст. в центральном венозном кровообращении до 20-30 мм рт.ст. в систоле и 0-5 мм рт.ст. в диастоле в RV. После прохождения легочных клапанов диастолическое давление составит 10-15 мм рт.ст. (изменения формы сигнала давления см. на рисунке 3 ).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Систолическое давление в RV и в легочной артерии выше 40 (или среднее легочное артериальное давление выше 25) может быть признаком легочной гипертензии из-за легочной инфекции у животного. Пожалуйста, помните, что при искусственной вентиляции легких при положительном давлении также может повышаться легочное артериальное давление.
  7. Сдуйте баллон и убедитесь, что дистальный порт давления все еще находится в главной легочной артерии. Используйте как рентгеноскопию, так и сигнал давления для этой проверки.

4. Установка катетера правого желудочка под давлением (рисунок 4)

  1. Прочитайте и следуйте инструкциям производителя. Дайте фотоэлектрическому катетеру впитаться в физиологический раствор не менее 30 минут.
  2. Откройте программное обеспечение для сбора данных (см. Таблицу материалов) с 8-канальной настройкой (давление, объем, фаза и величина от обоих желудочков). Нажмите кнопку Пуск , чтобы убедиться, что сигнал давления записан. Следите за чрезмерным шумом в сигнале давления. Значения будут близки к 0 мм рт.ст., так как регистратор давления все еще находится вне животного.
  3. Откалибруйте давление до нулевого уровня, удерживая напорное отверстие чуть ниже поверхности физиологического раствора, чтобы избежать нежелательных эффектов давления от водного столба выше.
  4. Вставьте длинную направляющую проволоку через оболочку 7F в левую яремную вену (шаг 2.8). Под руководством рентгеноскопии продвиньте направляющую проволоку через верхние центральные вены, правое предсердие (РА) и в нижнюю полую вену. Убедитесь, что продвижение без какого-либо сопротивления. Преждевременные систолические события распространены, когда направляющая проволока проходит РА.
  5. Извлеките оболочку 7F, оставив направляющую проволоку в венозном кровообращении. Сожмите точку входа, чтобы избежать кровотечения. Используя технику Селдингера, замените оболочку 7F на оболочку 16F. При необходимости удлините разрез кожи для большей оболочки.
  6. Руководствуясь рентгеноскопией, выдвигайте оболочку 16F над направляющей проволокой до тех пор, пока кончик оболочки (не расширитель) не достигнет уровня верхней полой вены (рисунок 4B).
  7. Осторожно потянув, извлеките расширитель и направляющую проволоку, но будьте осторожны, чтобы не снять оболочку. Промывайте оболочку изотоническим физиологическим раствором, чтобы избежать внутрилюминального свертывания крови.
  8. Вставьте фотоэлектр в оболочку 16F.
  9. Используйте рентгеноскопию, чтобы следить за фотоэлектрическим катетером, когда он проходит через оболочку, пока напорный порт не покинет оболочку.
  10. Осторожно выдвигайте оболочку и фотоэлектр вместе, пока оболочка не окажется за пределами границы перикарда.
  11. Продвиньте фотоэлектрический катетер в РА (рисунок 4C).
  12. Используйте длину оболочки, чтобы помочь продвинуть фотоэлектр из РА в более передне расположенный RV; направьте внешний конец оболочки 16F вниз (сзади к лежачему животному) и медиально, что направит внутренний конец оболочки спереди.
  13. Переместите фотоэлектр в RV. Это может быть подтверждено изменением сигнала давления от фотоэлектрического катетера до классической формы желудочка и тактильным сопротивлением, поскольку фотоэлектрический катетер встречается с вершиной правого желудочка.
  14. Как только фотоэлектр окажется в RV, втяните оболочку 16F за пределы грудной полости, чтобы избежать любого гемодинамического или электрического воздействия устройства, расположенного близко к сердцу (рисунок 4D).
  15. Оптимизируйте позиционирование фотоэлектрического катетера на основе рентгеноскопии как можно ближе к вершине RV, но не позволяйте ему касаться эндокарда.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте рентгеноскопию для наблюдения за избыточным механическим контактом между фотоэлектрическим катетером и эндокардом, если таковой имеется. Это рассматривается как изогнутый фотоэлектрический катетер (включая его косичку) и постоянные преждевременные систолические события с помощью электрокардиографического мониторинга.
    1. Закрепите фотоэлектр на внешнем конце оболочки адгезионной лентой для обеспечения стабильности позиционирования катетера.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Иногда плавающий катетер может вызывать дополнительные удары. Если это так, попробуйте зафиксировать его, не сжимая эндокард слишком сильно.
  16. Следуйте протоколу производителя, чтобы выбрать соответствующее количество сегментов записи и оптимизировать позиционирование фотоэлектрического катетера в RV на основе записанных сигналов фазы и величины.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для свиней весом 60 кг для этого эксперимента использовались два или три сегмента для RV и чаще всего три сегмента для LV. Меньше сегментов потребуется у более мелких животных и наоборот. Позиционирование катетера основывалось на величине сигналов изначально; форма петли давления-величины должна выглядеть как требуемая петля давления-объема. Амплитуда величины должна быть максимально высокой (5-10 мС). Фазовый угол должен быть в пределах 1-3o с максимально возможной амплитудой (приблизительно 1,5o).

5. Установка катетера левого желудочка под давлением (рисунок 5)

  1. Прочитайте и следуйте инструкциям производителя. Дайте фотоэлектрическому катетеру впитаться в физиологический раствор не менее 30 минут.
  2. Откалибруйте давление до нулевого уровня (шаг 4.3).
  3. Вставьте фотоэлектр в оболочку 8F в левой сонной артерии.
  4. Следуйте за фотоэлектрическим катетером с помощью рентгеноскопии, когда он проходит через оболочку к аортальным клапанам (рисунок 5B). Сопротивление ощущается, когда фотоэлектр останавливается аортальными клапанами. При рентгеноскопии наблюдается изгиб катетера.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Иногда фотоэлектр PV превращается в нисходящую аорту. Это распознается с помощью рентгеноскопии и менее заметной аортальной выемки на кривой давления фотоэлектрического катетера.
  5. Втягивайте фотоэлектрические катетеры примерно на 1 см выше аортальных клапанов.
  6. Синхронизируйте очередное быстрое продвижение фотоэлектрического катетера до систолической фазы сердечного цикла. Это произойдет через открытые аортальные клапаны. Успех может быть подтвержден изменением сигнала давления от фотоэлектрического катетера до классической формы желудочка.
  7. Если попытки продвижения через клапаны не увенчались успехом, поверните фотоэлектр для лучшего позиционирования в центре восходящей аорты. Повторите попытку, если это необходимо.
  8. Оказавшись внутри РН, оптимизируйте позиционирование левожелудочкового фотоэлектрического катетера на основе рентгеноскопии, как можно ближе к вершине ЛЖ, но не позволяйте ему касаться эндокарда (рисунок 5C). См. шаг 4.15.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Иногда плавающий катетер может вызвать преждевременные сердечные сокращения. Если это так, попробуйте зафиксировать его, не сжимая эндокард слишком сильно.
  9. Следуйте протоколу производителя, чтобы выбрать соответствующее количество сегментов записи и оптимизировать позиционирование фотоэлектрического катетера в РН на основе записанных сигналов фазы и величины (см. шаг 4.16).

6. Введение баллона нижней полой вены

  1. Наполните шприц для накачки физиологическим раствором или контрастным веществом по мере необходимости и убедитесь, что баллон может быть надут правильно.
  2. Вставьте направляющую проволоку в оболочку 12F в правой бедренной вене.
  3. Продвиньте направляющую проволоку к IVC на уровне диафрагмы.
  4. Вставьте воздушный шар на направляющую проволоку и поднимите его на уровень диафрагмы в конце истечения срока действия (рисунок 5D).
  5. Втяните направляющую проволоку и промойте просвет физиологическим раствором, чтобы избежать свертывания крови.

7. Калибровка катетера под давлением и объемом

  1. Прочитайте и следуйте инструкциям производителя.
  2. Обеспечьте стабильный синусовый ритм на электрокардиографическом мониторе и стабильные сердечно-легочные переменные в течение 5-10 мин.
  3. Используйте катетер Swan Ganz для измерения сердечного выброса (CO) путем терморазбавления. Используйте в среднем три инъекции 10 мл изотонической глюкозы 5 °C с вариацией менее 10%. Наблюдайте за частотой сердечных сокращений (ЧСС) животного во время измерения CO. Рассчитайте объем хода (SV) как SV = CO/HR (единица мл). Нормальный СО составляет 4-6 л/мин для свиньи весом 60 кг с объемом хода 80-110 мл.
  4. Введите SV в поля PV как для LV, так и для RV.
  5. Убедитесь, что оптимальные сигналы фазы и величины получены от обоих желудочков. Примечательно, что два фотоэлектрических блока должны записывать на разных частотах, чтобы избежать электронного перекрестного разговора.
  6. При транзиторном апноэ калибруйте («сканируйте») сигналы PV.
  7. Если калибровка удовлетворительна, обеспечьте правильную форму как желудочковых фотоэлектрических петель, так и реалистичных давлений и объемов. Если нет, повторите калибровку.

8. Базовая оценка

ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперимент может быть приостановлен на этом уровне для стабилизации гемодинамики до начала протокола исследования.

  1. Когда фотоэлектрические петли должны быть записаны, следуйте инструкциям производителя. Нажмите Пуск в программном обеспечении для сбора данных. Убедитесь, что фотоэлектрические петли по-прежнему имеют приемлемую форму.
  2. Запись фотоэлектрических петель на протяжении 30-60 с непрерывной вентиляции. Выполните анализ, найдя среднее значение, например, трех дыхательных циклов. В качестве альтернативы, выполните преходящую задержку дыхания для конечного выдоха на вентиляторе и проанализируйте эти петли от апноэ. Рассмотрите возможность наличия низкого / нулевого положительного давления на конце выдоха (PEEP) и минимального регулируемого ограничивающего давления (APL) клапана.
    ПРИМЕЧАНИЕ: На функцию желудочков, особенно RV, влияют циклические изменения внутригрудного давления во время вентиляции (или спонтанного дыхания). Важно отметить в статье, были ли зафиксированы фотоэлектрические петли во время вентиляции или при апноэ.
  3. Для независимых от нагрузки фотоэлектрических переменных сделайте задержку дыхания и подождите несколько ударов сердца, прежде чем медленно надувать баллон IVC выбранной жидкостью (шаг 6.1). Баллон постепенно уменьшает сердечную преднагрузку.
  4. Посмотрите, как петли RV PV становятся все меньше и смещаются влево.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Постепенное снижение преднагрузки RV приведет к постепенному снижению диастолического объема RV. Меньшие объемы приведут к снижению давления и производительности (механизм Starling). Более подробную информацию см. в ссылках1,2,3.
  5. Важно держать баллон надутым, сохраняя давление на соответствующий шприц достаточно долго для уменьшения преднатяга LV (последовательно связанного с RV). Наблюдайте также прогрессирующее снижение давления и объема НН. Примеры см. в разделе Репрезентативные результаты.
  6. Быстро сдуйте баллон и включите вентиляцию.
  7. Повторно назначают 8,3-8,7, если ответ был неудовлетворительным, т.е. без преждевременных сердечных комплексов, синусовой брадикардии или аналогичной нарушенной сердечной функции.
  8. Дайте свинье стабилизироваться за 2-5 минут до следующего окклюзии IVC.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Гемодинамика временно зависит от задержки дыхания и снижения преднагрузки, особенно в моделях сердечно-сосудистых нарушений.
  9. Рассмотрите возможность выполнения трех удовлетворительных окклюзий (см. 8.7), чтобы повысить надежность статистического анализа.

9. Пост-протокол

  1. В исследованиях выживаемости удалите и очистите все внутрисосудистое оборудование (фотоэлектрические катетеры, баллон IVC и катетер Swan Ganz).
    1. Срежьте кожные швы, которые удерживали оболочки на месте. Снимите каждую оболочку ручным вытягиванием. Компресс на каждый венозный участок доступа в течение нескольких минут для достижения гемостаза.
    2. Для артерий снимают оболочку и прессингуют дольше (5-10 мин) для достижения гемостаза. В качестве альтернативы, рассмотрите возможность использования устройства для закрытия сосудов.
    3. Закройте разрезы кожи от оболочек одним адаптивным кожным швом (3,0, рассасывающийся шов), чтобы избежать кровотечения и инфекции. Нанесите 5 мл бупивакаина (5 мг/мл) подкожно вокруг каждого разреза кожи для облегчения боли.
  2. После того, как все устройства были удалены и гемостаз достигнут, прекратите инфузию анестезии. Внимательно наблюдайте за животным в этой фазе.
  3. Держите животное интубированным (первоначально с надутой манжетой) до тех пор, пока не появятся горловые рефлексы и животное не будет достаточно бодрствовать для экстубации. Продолжайте измерять уровень кислорода с помощью пульсоксиметрии до и после экстубации, чтобы обеспечить надлежащую вентиляцию. При необходимости нанесите кислород.
  4. Не возвращайте животное в компанию других животных до полного выздоровления.
  5. Для операции по выживанию поддерживайте надлежащие стерильные условия. Ознакомьтесь с шагами 2.2-2.5. Ежедневно наблюдайте за разрезами кожи и швами на наличие признаков инфекции, включая измерение температуры животного.
  6. После окончания эксперимента проводят эвтаназию со смертельной дозой пентобарбитала (15 мл, 400 мг/мл).

Результаты

Настоящие инструкции описывают подход к достижению фотоэлектрических записей на основе допуска как из RV, так и из LV у крупного животного.

Чтобы сравнить наши одновременные фотоэлектрические записи в RV и LV, мы выполнили линейную регрессию измерений бивентрикулярного CO и?...

Обсуждение

В этой статье описывается воспроизводимый минимально инвазивный подход к закрытой грудной клетке для записи бивентрикулярных циклов давления и объема.

Продвижение фотоэлектрического катетера из РА в RV является наиболее важным шагом в этом протоколе. Сложный состав RV и...

Раскрытие информации

Ни у одного из авторов нет конфликта интересов, о котором можно было бы заявить.

Благодарности

Эта работа была поддержана Фондом острой медицины Laerdal (3374), Мемориальным фондом Хольгера и Рут Гессе, Фондом Сёстера и Вернера Липперта, Фондом Ново Нордиск (NNF16OC0023244, NFF17CO0024868) и Фондом Альфреда Бензона.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
12L-RSGE Healthcare Japan5141337Ultrasound probe
12L-RSGE Healthcare Japan5141337Ultrasound probe
Adhesive Aperature Drape (OneMed)evercare1515-0175 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Adhesive Aperature Drape (OneMed)evercare1515-0175 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Alaris GP Guardrails plusCareFusion9002TIG01-GInfusion pump
Alaris GP Guardrails plusCareFusion9002TIG01-GInfusion pump
Alaris Infusion setBD Plastipak60593
Alaris Infusion setBD Plastipak60593
AlkoholswapMEDIQ Danmark334001282% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
AlkoholswapMEDIQ Danmark334001282% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Amplatz Support Wire Guide Extra-StiffCook MedicalTHSF-25-260-AESdiameter: 0.025 inches, length: 260 cm
Amplatz Support Wire Guide Extra-StiffCook MedicalTHSF-25-260-AESdiameter: 0.025 inches, length: 260 cm
BD ConnectaBD394601Luer-Lock
BD ConnectaBD394601Luer-Lock
BD EmeraldBD30773610 mL syringe
BD EmeraldBD30773610 mL syringe
BD Luer-LockBD Plastipak300865BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Luer-LockBD Plastipak300865BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD PlatipakBD30061320 mL syringe
BD PlatipakBD30061320 mL syringe
BD Venflon ProBecton Dickinson Infusion Therapy39320420G
BD Venflon ProBecton Dickinson Infusion Therapy39320420G
BD Venflon ProBecton Dickinson Infusion Therapy39320817G
BD Venflon ProBecton Dickinson Infusion Therapy39320817G
Butomidor VetRichter Pharma AG53194310 mg/mL
Butomidor VetRichter Pharma AG53194310 mg/mL
Check-Flo Performer IntroducerCook MedicalRCFW-16.0P-38-30-RB16 F sheath, 30 cm long
Check-Flo Performer IntroducerCook MedicalRCFW-16.0P-38-30-RB16 F sheath, 30 cm long
Cios Connect S/N 20015Siemens HealthineersC-arm
Cios Connect S/N 20015Siemens HealthineersC-arm
D-LCC12A-01GE Healthcare FinlandPressure measurement monitor
D-LCC12A-01GE Healthcare FinlandPressure measurement monitor
Durapore3M-Adhesive tape
Durapore3M-Adhesive tape
E-PRESTIN-00GE Healthcare Finland6152932Respirator tubes
E-PRESTIN-00GE Healthcare Finland6152932Respirator tubes
Exagon vetRichter Pharma AG427931400 mg/mL
Exagon vetRichter Pharma AG427931400 mg/mL
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12FSt. Jude Medical406128L: 12 cm
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12FSt. Jude Medical406128L: 12 cm
Favorita IIAesculapType: GT104
Favorita IIAesculapType: GT104
FentanylB. Braun7103650 mikrogram/mL
FentanylB. Braun7103650 mikrogram/mL
Ketaminol VetMSD/Intervet International B.V.511519100 mg/mL
Ketaminol VetMSD/Intervet International B.V.511519100 mg/mL
LabChartADInstrumentsData aquisition software
LabChartADInstrumentsData aquisition software
Lawton 85-0010 ZK1LawtonLaryngoscope
Lawton 85-0010 ZK1LawtonLaryngoscope
LectospiralVYGON1159.90400 cm (Luer-LOCK)
LectospiralVYGON1159.90400 cm (Luer-LOCK)
Lubrithal eye gelDechra, Great Britain
Lubrithal eye gelDechra, Great Britain
MBH quforaMBH-International A/S13853401Urine bag
MBH quforaMBH-International A/S13853401Urine bag
NatriumkloridFresenius Kabi73400221005289 mg/ml Isotonic saline
NatriumkloridFresenius Kabi73400221005289 mg/ml Isotonic saline
PICO50 Aterial Blood SamplerRadiometer956-5522 mL
PICO50 Aterial Blood SamplerRadiometer956-5522 mL
Portex Tracheal TubeSmiths Medical100/150/075"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
Portex Tracheal TubeSmiths Medical100/150/075"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
PowerLab 16/35ADInstrumentsPL3516Serial number: 3516-1841
PowerLab 16/35ADInstrumentsPL3516Serial number: 3516-1841
Pressure Extension setCODAN7,14,020Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Pressure Extension setCODAN7,14,020Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
PropolipidFresenius Kabi21636Propofol, 10 mg/mL
PropolipidFresenius Kabi21636Propofol, 10 mg/mL
PTS-XNuMED Canada Inc.PTSX253Inferior vena cava balloon
PTS-XNuMED Canada Inc.PTSX253Inferior vena cava balloon
Radiofocus Introducer IIRadiofocus/TerumoRS+B80N10MQ6+7+8F sheaths
Radiofocus Introducer IIRadiofocus/TerumoRS+B80N10MQ6+7+8F sheaths
Rompun VetBeyer86450917Xylazin, 20 mg/mL
Rompun VetBeyer86450917Xylazin, 20 mg/mL
Rüsch Brilliant AquaFlate GlycerineTeleflex178000Bladder catheter, size 14
Rüsch Brilliant AquaFlate GlycerineTeleflex178000Bladder catheter, size 14
S/5 AvanceDatex-Ohmeda-Mechanical ventilator
S/5 AvanceDatex-Ohmeda-Mechanical ventilator
Safersonic Conti Plus & SafergelSECMA medical innovationSAF.612.18120.WG.SEC18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Safersonic Conti Plus & SafergelSECMA medical innovationSAF.612.18120.WG.SEC18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Scisense CatheterTransonic ScisenseFDH-5018B-E245BSerial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense CatheterTransonic ScisenseFDH-5018B-E245BSerial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Pressure-Volume Measurement SystemTransonic ScisenseADV500Model: FY097B. Pressure-volume box
Scisense Pressure-Volume Measurement SystemTransonic ScisenseADV500Model: FY097B. Pressure-volume box
Swan-Ganz CCOmboEdwards Lifesciences744F75110 cm
Swan-Ganz CCOmboEdwards Lifesciences744F75110 cm
TruWave Pressure Monitoring SetEdwards LifesciencesT434303A210 cm
TruWave Pressure Monitoring SetEdwards LifesciencesT434303A210 cm
Vivid iqGE Medical Systems ChinaVivid iq
Vivid iqGE Medical Systems ChinaVivid iq
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)Virbac83046805Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)Virbac83046805Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection

Ссылки

  1. Burkhoff, D., Mirsky, I., Suga, H. Assessment of systolic and diastolic ventricular properties via pressure-volume analysis: a guide for clinical, translational, and basic researchers. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (2), 501-512 (2005).
  2. Sagawa, K., Suga, H., Shoukas, A. A., Bakalar, K. M. End-systolic pressure/volume ratio: A new index of ventricular contractility. American Journal of Cardiology. 40 (5), 748-753 (1977).
  3. Chantler, P. D., Lakatta, E. G., Najjar, S. S. Arterial-ventricular coupling: mechanistic insights into cardiovascular performance at rest and during exercise. Journal of Applied Physiology. 105 (4), 1342-1351 (2008).
  4. Axell, R. G., et al. Ventriculo-arterial coupling detects occult RV dysfunction in chronic thromboembolic pulmonary vascular disease. Physiological Reports. 5 (7), 13227 (2017).
  5. Houser, S. R., et al. Animal models of heart failure. Circulation Research. 111 (1), 131-150 (2012).
  6. Lahm, T., et al. Assessment of right ventricular function in the research setting: knowledge gaps and pathways forward. An official american thoracic society research statement. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 198 (4), e15-e43 (2018).
  7. Morimont, P., et al. Effective arterial elastance as an index of pulmonary vascular load. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 294 (6), 2736-2742 (2008).
  8. Kutty, S., et al. Validation of admittance computed left ventricular volumes against real-time three-dimensional echocardiography in the porcine heart. Experimental Physiology. 98 (6), 1092-1101 (2013).
  9. Bove, T., et al. Acute and chronic effects of dysfunction of right ventricular outflow tract components on right ventricular performance in a porcine model: Implications for primary repair of tetralogy of fallot. Journal of the American College of Cardiology. 60 (1), 64-71 (2012).
  10. Townsend, D. Measuring pressure volume loops in the mouse. Journal of Visualized Experiments. (111), e53810 (2016).
  11. Belenkie, I., Smith, E. R., Tyberg, J. V. Ventricular interaction: From bench to bedside. Annals of Medicine. 33 (4), 236-241 (2009).
  12. LaCorte, J. C., et al. Correlation of the TIE index with invasive measurements of ventricular function in a porcine model. Journal of the American Society of Echocardiography. 16 (5), 442-447 (2003).
  13. Amà, R., Leather, H. A., Segers, P., Vandermeersch, E., Wouters, P. F. Acute pulmonary hypertension causes depression of left ventricular contractility and relaxation. European Journal of Anaesthesiology. 23 (10), 824-831 (2006).
  14. Missant, C., Rex, S., Segers, P., Wouters, P. F. Levosimendan improves right ventriculovascular coupling in a porcine model of right ventricular dysfunction. Critical Care Medicine. 35 (3), 707-715 (2007).
  15. Mortensen, C. S., et al. Impact of preload on right ventricular hemodynamics in acute pulmonary embolism. Critical Care Medicine. 48 (12), 1306-1312 (2020).
  16. Kramer, A., et al. Inhaled nitric oxide has pulmonary vasodilator efficacy both in the immediate and prolonged phase of acute pulmonary embolism. European Heart Journal: Acute Cardiovascular Care. , 204887262091871 (2020).
  17. Lyhne, M. D., et al. Oxygen therapy lowers right ventricular afterload in experimental acute pulmonary embolism. Critical Care Medicine. , (2021).
  18. Lyhne, M. D., et al. Right ventricular adaptation in the critical phase after acute intermediate-risk pulmonary embolism. European Heart Journal: Acute Cardiovascular Care. , 204887262092525 (2020).
  19. Dietrichs, E. S., Tveita, T., Smith, G. Hypothermia and cardiac electrophysiology: a systematic review of clinical and experimental data. Cardiovascular Research. 115 (3), 501-509 (2018).
  20. Boulate, D., et al. Early development of right ventricular ischemic lesions in a novel large animal model of acute right heart failure in chronic thromboembolic pulmonary hypertension. Journal of Cardiac Failure. 23 (12), 876-886 (2017).
  21. Haney, M. F., et al. Myocardial systolic function increases during positive pressure lung inflation. Anesthesia and Analgesia. 101 (5), 1269-1274 (2005).
  22. Gorcsan, J., Strum, D. P., Mandarino, W. A., Gulati, V. K., Pinsky, M. R. Quantitative assessment of alterations in regional left ventricular contractility with color-coded tissue doppler echocardiography: Comparison with sonomicrometry and pressure-volume relations. Circulation. 95 (10), 2423-2433 (1997).
  23. Pinsky, M. R. Dynamic right and left ventricular interactions in the pig. Experimental Physiology. 105 (8), 1293-1315 (2020).
  24. Mitchell, J. R., et al. RV filling modulates LV function by direct ventricular interaction during mechanical ventilation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (2), 549-557 (2005).
  25. Larson, E. R., Feldman, M. D., Valvano, J. W., Pearce, J. A. Analysis of the spatial sensitivity of conductance/admittance catheter ventricular volume estimation. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 60 (8), 2316-2324 (2013).
  26. Hout, G. P. J., et al. Admittance-based pressure-volume loops versus gold standard cardiac magnetic resonance imaging in a porcine model of myocardial infarction. Physiological Reports. 2 (4), 00287 (2014).
  27. Baker, A. E., Dani, R., Smith, E. R., Tyberg, J. V., Belenkie, I. Quantitative assessment of independent contributions of pericardium and septum to direct ventricular interaction. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 275 (2), 476-483 (1998).
  28. Sanz, J., Sánchez-Quintana, D., Bossone, E., Bogaard, H. J., Naeije, R. Anatomy, function, and dysfunction of the right ventricle. Journal of the American College of Cardiology. 73 (12), 1463-1482 (2019).
  29. Gavazzoni, M., et al. Prognostic value of right ventricular free wall longitudinal strain in a large cohort of outpatients with left-side heart disease. European Heart Journal: Cardiovascular Imaging. 21 (9), 1013-1021 (2019).
  30. Berglund, F., Piña, P., Herrera, C. J. Right ventricle in heart failure with preserved ejection fraction. Heart. 106 (23), 1798-1804 (2020).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

171

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены