돼지 모델의 입원 카테터가있는 폐쇄 흉부 쌍심실 압력 - 볼륨 루프 녹음

요약

여기서 우리는 급성 우심실 기능 장애가있는 돼지에서 입원 기반 이중 심실 압력 볼륨 루프 기록에 대한 폐쇄 된 흉부 접근법을 제시합니다.

초록

압력 부피 (PV) 루프 기록은 심실 성능의 부하 독립적 변수에 대한 최첨단 조사를 가능하게합니다. 단심실 평가는 종종 전임상 연구에서 수행됩니다. 그러나 좌우심실은 병렬 및 직렬 연결로 인해 기능적 상호 의존성을 발휘하여 두 심실의 동시 평가를 장려합니다. 또한, 다양한 약리학 적 개입은 심실과 그 전하중 및 후부하에 다르게 영향을 줄 수 있습니다.

우리는 급성 우심실 (RV) 과부하의 돼지 모델에서 입원 기반 이중 심실 PV 루프 녹음에 대한 폐쇄 가슴 접근법을 설명합니다. 우리는 초음파에 의해 유도되는 모든 혈관 접근과 함께 최소 침습적 기술을 활용합니다. PV 카테터는 폐쇄 된 흉부 접근법이 관련 심폐 생리학을 유지하기 때문에 동물의 흉부 절제술을 피하기 위해 형광 경시지도 하에 배치됩니다. 어드미턴스 기술은 사후 처리 없이 실시간 PV 루프 레코딩을 제공합니다. 또한 제시된 절차의 중요한 시점 동안 몇 가지 필수 문제 해결 단계를 설명합니다.

제시된 프로토콜은 대형 동물 모델에서 이심실 심장 PV 루프 기록을 얻기 위한 재현 가능하고 생리학적으로 관련된 접근법이다. 이것은 매우 다양한 심혈관 동물 연구에 적용될 수 있다.

서문

압력-부피(PV) 루프는 말단 수축기 및 말단 확장기 압력 및 부피, 배출 분율, 스트로크 볼륨 및 스트로크 작업¹을 포함한 다수의 혈류역학 정보를 포함합니다. 또한 과도 프리로드 감소는 부하 독립적 변수를 파생시킬 수 있는 루프 제품군^{을 만듭니다2,3}. 심실 기능에 대한 이러한 부하 독립적 평가는 PV 루프 기록을 혈류역학 평가에서 최첨단 수준으로 만듭니다. PV 루프 기록은 인간에서 수행 할 수 있지만 전임상 연구에서 주로 사용되고 권장됩니다^4,5,6.

압력-부피 루프는 우심실(RV) 및 좌심실(LV) 둘 다로부터 얻을 수 있다. 대부분의 연구 가설은 단일 심실에 초점을 맞추고있어 단심실 PV 루프 만 기록됩니다7,8,9,10. 그러나, 우측 및 좌심실은 단단한 심낭 내의 직렬 및 병렬 연결로 인해 수축기 및 이완기 상호 의존성을 발휘한다¹¹. 한 심실의 출력 또는 크기의 변화는 다른 심실의 크기, 로딩 조건 또는 관류에 영향을 미칩니다. 따라서, 이심실 PV 루프 기록은 전체 심장 성능에 대한보다 포괄적 인 평가를 제공합니다. 약리학 적 개입은 또한 두 심실과 그 로딩 조건에 다르게 영향을 미칠 수 있으며, 이중 심실 평가의 중요성을 더욱 강조합니다.

PV 카테터는 심장의 정점으로부터 접근하거나 RV 유출관^을 통한 개방 흉부 접근을 포함하여 여러 가지 접근법에 의해 심실로 진행될 수 있습니다7,10,12,13,14. 그러나 흉부의 개방은 생리 학적 조건에 영향을 미치고 편향을 유발할 수 있습니다.

이전 연구^15,16,17,18의 경험을 바탕으로^, 우리는 심폐 생리학에 최소한의 영향을 미치는 급성 RV 실패의 대형 동물 모델에서 이중 심실 PV 루프 기록에 대한 폐쇄 흉부 접근법을 제시하는 것을 목표로합니다 (그림 1).

프로토콜

이 프로토콜은 동물 복지 및 윤리에 관한 덴마크 및 기관 지침을 준수하여 수행 된 연구에 개발되고 활용되었습니다. 덴마크 동물 연구 검사원은이 연구를 승인했습니다 (면허 번호 2016-15-0201-00840). 약 60kg의 덴마크 여성 도축 돼지 (Landrace, Yorkshire 및 Duroc의 교배)가 사용되었습니다.

1. 마취와 환기

1. Zoletil 믹스 1 mL / kg ( 재료 표 참조)을 근육 주사로 사용하여 깨어있는 돼지를 사전 마취하여 운송 중 동물의 스트레스, 통증 및 불안을 줄입니다.
2. 농장 시설에서 연구 시설로 동물을 운송하십시오.
3. 귀 정맥에 정맥 내 접근을 확립하십시오.
   1. 이렇게하려면 귀를 가볍게 지혈하여 정맥 혈액 정체를 일으 킵니다. 에탄올로 눈에 보이는 직선 정맥 위에 피부를 소독하십시오.
   2. 20G 정맥 카테터로 정맥을 뚫고 지혈대를 풀어줍니다. 변위를 피하기 위해 접착 테이프로 액세스를 고정하십시오.
   3. 정맥 카테터의 적절한 위치를 보장하기 위해 등장성 식염수로 플러시하십시오. 식염수가 지나갈 때 정맥의 약간의 탈색을 관찰하십시오.
      참고: 피하 팽창이 나타나면 정맥 카테터가 피하 위치에 있으므로 제거해야 합니다. 두 번째 정맥 내 접근을 백업으로 설정하는 것을 고려하십시오.
4. 동물을 수술대에 옮깁니다. 그것을 수핀 위치에 두십시오.
5. 크기 7 튜브로 직접 후두경 검사로 돼지를 삽관하십시오. 우발적 인 삽관을 피하기 위해 동물의 / 머리에 튜브를 고정하십시오. 환기, 청진기 및 / 또는 충분한 호기 이산화탄소에서 동등한 흉부 운동을 찾아 튜브의 올바른 위치를 보장하십시오.
6. 튜브를 사전 테스트된 기계식 인공 호흡기에 연결하고 환기를 시작합니다. 갯벌 부피가 8mL/kg이고 유량이 낮은 환기가 가능한 압력 제어, 볼륨 게이트 환기를 사용하십시오. 영감을받은 산소 (_FiO2)의 분율은 노르 목시아 이상의 경우 0.21 일 수 있습니다. 호흡률을 조정하여 5kPa의 최종 갯벌 이산화탄소를 목표로 삼으십시오.
7. 프로포폴 3 mg/kg/h 및 펜타닐 6.25 g/kg/h에 의한 총 정맥내 마취를 시작하십시오. 각막 반사 신경의 부족과 고통스러운 자극에 대한 반응으로 충분한 마취를 보장하십시오. 필요한 경우 주입을 늘리십시오.
   참고 : 흉골 재발 (생존 프로토콜)을 유지하기에 충분한 의식을 회복하거나 안락사 될 때까지 동물을 무인 상태로 두지 마십시오.
8. 3 리드 심전도 및 맥박 산소 측정법으로 동물을 모니터링하십시오.
9. 체온을 측정하십시오. 필요한 경우, 정상 돼지 온도를 38-39°C로 목표로 하는 동물을 가열한다.
   참고: 저체온증은 계측에 의해 유발되는 부정맥 발생의 위험을 증가시킬 수 있습니다¹⁹.
10. 질내 접근에 의해 방광 카테터 (크기 14)를 삽입하고 소변 샘플링 백에 연결하십시오.
11. 연구 프로토콜 및 조사 할 과학적 가설에 따라 헤파린을 정맥 내 (필요한 경우 4-6 시간마다 5000 IE 반복) 및 / 또는 amiodaron (20 분 이상 300mg 주입)으로 투여하는 것을 고려하십시오.
    참고 : Heparinization은 혈관 내 접근이 확립 된 후에 수행 될 수 있습니다. 이러한 약물은 계측을 용이하게 할 수 있지만 결과를 편향시킬 수 있습니다. 대안으로, 정맥 내 외피에 느린 식염수 주입은 발광 내 혈전증을 예방할 수 있습니다.
12. 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 연고를 사용하십시오.

2. 혈관 내 접근

참고 : 혈관 내 접근은 오른쪽 외부 경정맥, 왼쪽 외부 경정맥, 왼쪽 경동맥, 왼쪽 대퇴 동맥 및 오른쪽 대퇴 정맥에 확립되어야합니다. 돼지에서 외부 경정맥은 내부 경정맥보다 훨씬 크기 때문에 접근하기 쉽습니다. 이 섹션에 필요한 모든 자료는 그림 2A에 나와 있습니다.

1. 혈관 내 접근을 위해 펑크 부위에서 동물을 면도하십시오.
2. 클로르헥시딘 (또는 포비돈 요오드)으로 피부를 소독하고 이소프로필 알코올을 사용하여 깨끗하게 닦으십시오. 2 사이클 더 반복하십시오.
3. 덮개에 중앙에 구멍이있는 소독 된 부위에 멸균 드레이프를 놓습니다.
4. 선형 프로브가있는 초음파 장치를 사용하십시오. 프로브를 멸균 덮개로 덮고 혈관 검사를 위해 멸균 젤을 사용하십시오.
5. 17G 멸균 정맥 카테터를 사용하여 피부에 구멍을 뚫고 초음파로 바늘을 혈관 내 위치로 안내합니다 (그림 2B, C).
6. Seldinger 기술을 사용하여 바늘을 가이드 와이어로 교체하십시오. 정맥 카테터를 제거하고 혈관 내 루멘에 가이드 와이어 만 남겨 둡니다. 다음으로, 작은 피부 절개 (~ 5 mm)를 가이드 와이어에 부착시켜 외피의 삽입을 용이하게하십시오.
7. 8 개의 프랑스어 (F) 칼집을 가이드 와이어 위에 놓고 선택한 용기 (셀딩거 기술)에 넣으십시오. 오른쪽 외부 경정맥 (오른쪽 심장 catherization)과 왼쪽 경동맥 (LV PV 루프 카테터의 경우)에서 8F 시스를 선택하십시오. 카테터의 손상을 피하기 위해 충분한 내강이 필요합니다.
8. 왼쪽 외부 경정맥에 7F 칼집을 놓습니다. 나중에 더 큰 칼집으로 교환됩니다 (4.4-4.6 단계 참조).
9. 왼쪽 대퇴 동맥에 7F 칼집을 놓습니다. 접근은 침습적 혈압 측정 및 혈액 가스 샘플링을위한 것입니다.
10. 열등한 정맥 카바 (IVC) 풍선 삽입을 위해 오른쪽 대퇴골 정맥에 12F (또는 가능한 경우 14F) 칼집을 놓습니다. 더 큰 외피에 대해 두 단계 접근 방식으로 확장기를 사용하는 것을 고려하십시오.
11. 혈액 (각각 정맥 또는 동맥)을 채취하고 등장성 식염수로 쉽게 플러싱하여 모든 외피의 위치를 확인하고 제어하십시오. 칼집은 저항없이 혈액을 채취 할 수 있다면 혈관 내부에 올바르게 배치됩니다.
12. 실수로 칼집을 제거하지 않도록 피부 봉합사 (크기 3.0)로 모든 칼집을 고정하십시오. 피부 봉합사는 프로토콜 완료 후 외피 제거와 함께 제거됩니다.
13. 대퇴골 동맥 접근을 압력 변환기에 연결하고 대기압에 맞게 교정하십시오. 이 설정이 올바른 형태의 동맥압 곡선을 생성하는지 확인하십시오.
14. 동맥 외피에서 동맥 혈액 샘플을 채취하여 동맥 혈액 샘플러 장치에서 분석하여 pH, 이산화탄소 (PaCO2) 및 산소 (PaO2, 선택한 _FiO2에 따라 _PaO2) 및 헤모글로빈, 전해질, 혈당 및 젖산 수치를 평가하십시오.
    1. 필요한 경우 전해질과 혈당을 필요한 제품을 주입하여 표준 값으로 수정하십시오. 특히, 칼륨 교란이 계측에 의해 유발되는 부정맥 발생의 위험을 증가시킬 수 있으므로 칼륨 수준의 교정을 고려하십시오.
15. 실험에 앞서 돼지가 금식하는 경우, 저혈구 혈증을 예방하기 위해 등장 식염수 (30-60 분 동안 주입 된 10 mL / kg) 또는 유사한 결정체의 볼루스 주입을 고려하십시오.
16. 프로토콜 전반에 걸쳐 땀을 막기 위해 4 mL / kg / h 등장 식염수를 지속적으로 주입하는 것을 고려하십시오.
    참고: 이 단계에서 실험을 일시 중지할 수 있습니다.

3. 오른쪽 마음 catherization

1. Swan Ganz 카테터를 식염수로 플러시하고 풍선이 올바르게 팽창하고 있는지 확인하십시오.
2. Swan Ganz 카테터의 포트를 압력 트랜스듀서에 연결합니다. 돼지의 중간 겨드랑이 수준에서 두 개의 압력 포트 (폐 동맥 및 중앙 정맥 압력에 대해 각각)를 유지하는 대기압으로 압력을 재설정하십시오.
3. 8F 시스를 통해 스완 간츠 카테터를 우측 경정맥에 삽입한다(단계 2.7).
   주의: 납 앞치마 또는 이와 유사한 보호구는 형광 내시경을 사용할 때마다 착용해야 합니다.
4. Swan Ganz 카테터의 원위 부분이 외피에서 벗어날 때 형광 내시경을 관찰하십시오. 연결된 주사기로 풍선을 팽창시킵니다.
   참고 : 칼집 내부의 백조 간츠 풍선의 인플레이션은 풍선을 손상시킬 것입니다. 형광 내시경의 전방-후방보기는 기술된 모든 절차에 대해 충분하다.
5. Swan Ganz 카테터를 형광 내시경 검사에서 천천히 움직이면 진행됩니다. 느린 발전은 혈류가 카테터를 안내 할 수있게합니다.
6. 원위 포트에서 RV로 들어갈 때와 폐동맥 직후에 압력 신호의 변화를 관찰하십시오 (그림 3). 카테터가 저항없이 진행되도록하십시오.
   1. 압력이 중앙 정맥 순환에서 5-8 mmHg에서 수축기의 경우 20-30 mmHg로, RV의 디아스톨에서 0-5 mmHg로 변하는지 확인하십시오. 폐렴 밸브를 통과 한 후, 이완기 압력은 10-15 mmHg가됩니다 (압력 신호의 모양 변화는 그림 3 참조).
      참고: RV와 40 이상의 폐동맥의 수축기 압력 (또는 25 이상의 평균 폐 동맥압)은 동물의 폐렴 감염으로 인한 폐 고혈압의 징후 일 수 있습니다. 양압 기계적 환기는 또한 폐 동맥압을 증가시킬 수 있음을 기억하십시오.
7. 풍선을 수축시키고 원위 압력 포트가 여전히 주요 폐동맥에 있는지 확인하십시오. 이 검증을 위해 형광 검사와 압력 신호를 모두 사용하십시오.

4. 우심실 압력 - 부피 카테터 삽입 (그림 4)

1. 제조업체의 지침을 읽고 따르십시오. PV 카테터가 적어도 30 분 동안 식염수에 담그십시오.
2. 8채널 설정(양쪽 심실의 압력, 부피, 위상 및 크기)으로 데이터 수집 소프트웨어( 재료 표 참조)를 엽니다. 시작 을 클릭하여 압력 신호가 기록되는지 확인합니다. 압력 신호에서 과도한 잡음을 찾습니다. 압력 레코더가 여전히 동물 외부에 있으므로 값은 0mmHg에 가깝습니다.
3. 위의 물 컬럼에서 원치 않는 압력 영향을 피하기 위해 식염수 표면 바로 아래에 압력 포트를 유지하여 압력을 제로 레벨로 보정하십시오.
4. 왼쪽 경정맥에 7F 시스를 통해 긴 가이드 와이어를 삽입하십시오 (단계 2.8). 형광 내시경에 의해 안내, 가이드 와이어를 상부 중앙 정맥, 오른쪽 아트리움 (RA)을 통해 그리고 열등한 정맥 카바로 전진하십시오. 진보가 어떤 저항도없이 있는지 확인하십시오. 조기 수축기 사건은 가이드 와이어가 RA를 통과 할 때 일반적입니다.
5. 정맥 순환계에 가이드 와이어를 남기는 7F 시스를 추출하십시오. 출혈을 피하기 위해 진입 점을 압축하십시오. 셀딩거 기술을 사용하여 7F 시스를 16F 시스로 교환합니다. 필요한 경우 더 큰 외피를 위해 피부 절개를 연장하십시오.
6. 형광 내시경에 의해 안내하여, 시스(확장기가 아님)의 팁이 우수한 베나카바 수준에 도달할 때까지 가이드 와이어 위에 16F 시스를 전진시킨다(그림 4B).
7. 조심스럽게 당겨서 확장기와 가이드 와이어를 추출하지만 칼집을 제거하지 않도록주의하십시오. 발광 내 혈액 응고를 피하기 위해 등장성 식염수로 칼집을 씻어 내십시오.
8. PV 카테터를 16F 시스에 삽입하십시오.
9. 형광 내시경을 사용하여 PV 카테터가 시스를 통과 할 때 압력 포트가 외피를 떠날 때까지 따르십시오.
10. 칼집이 심낭 경계 밖에 있을 때까지 칼집과 PV 카테터를 집합적으로 조심스럽게 전진시킨다.
11. PV 카테터를 RA 내로 전진시킨다(도 4C).
12. 시스 길이를 사용하여 PV 카테터를 RA로부터 더 전방에 위치된 RV로 전진시키는 것을 돕는다; 16F 칼집의 외부 끝을 아래쪽으로 향하게하고 (수핀 동물의 후방) 내측으로 가리 키면 칼집의 내부 끝이 앞쪽을 가리 킵니다.
13. PV 카테터를 RV로 전진시킵니다. 이것은 PV 카테터에서 고전적인 심실 모양으로의 압력 신호 변화와 PV 카테터가 우심실 정점을 충족함에 따라 촉각 저항에 의해 검증 될 수 있습니다.
14. PV 카테터가 RV에 있으면 흉강 외부의 16F 시스를 후퇴시켜 심장 가까이에 위치한 장치의 혈류역학적 또는 전기적 영향을 피하십시오 (그림 4D).
15. 플루오로스코피에 기초한 PV 카테터 포지셔닝을 RV 정점에 최대한 가깝게 최적화하되, 심내막에 닿지 않도록 한다.
    참고: PV 카테터와 심내막 사이의 과도한 기계적 접촉(있는 경우)을 관찰하기 위해 형광 내시경을 사용하십시오. 이것은 심전도 모니터링을 통해 구부러진 PV 카테터 (피그 테일 포함)와 지속적인 조기 수축기 사건으로 간주됩니다.
    1. PV 카테터를 접착 테이프로 칼집의 외부 끝에 고정시켜 카테터 위치의 안정성을 보장하십시오.
       참고: 때때로, 부동 카테터는 여분의 비트를 일으킬 수 있습니다. 그렇다면 심내막을 너무 많이 압축하지 않고 고정하십시오.
16. 제조업체의 프로토콜에 따라 관련 기록 세그먼트 수를 선택하고 기록된 위상 및 크기 신호를 기반으로 RV에서 PV 카테터 위치를 최적화합니다.
    참고 : 체중이 60kg 인 돼지의 경우, RV에 대해 두 개 또는 세 개의 세그먼트가 사용되었고, LV에 대한 세 개의 세그먼트가 이 실험에 사용되었습니다. 더 작은 동물에서는 더 적은 세그먼트가 필요하며 그 반대의 경우도 마찬가지입니다. 카테터의 위치는 초기에 신호의 크기에 기초하였다; 압력-크기 루프의 모양은 원하는 압력-볼륨 루프처럼 보여야 합니다. 크기 진폭은 가능한 한 높아야합니다 (5-10 mS). 위상각은 가능한 가장 높은 진폭(약 ^1.5o)으로 1-3o 이내여야 합니다.

5. 좌심실 압력 - 부피 카테터 삽입 (그림 5)

1. 제조업체의 지침을 읽고 따르십시오. PV 카테터가 적어도 30 분 동안 식염수에 담그십시오.
2. 압력을 0 수준으로 보정합니다(단계 4.3).
3. PV 카테터를 왼쪽 경동맥의 8F 시스에 삽입하십시오.
4. PV 카테터를 따라 형광 검사로 외피를 통과하면서 대동맥 판막 쪽으로 통과합니다 (그림 5B). PV 카테터가 대동맥 판막에 의해 정지 될 때 저항이 느껴집니다. 형광 검사에서 카테터의 굽힘이 관찰됩니다.
   참고 : 때로는 PV 카테터가 내림차순 대동맥으로 변하는 경우가 있습니다. 이것은 형광 검사에 의해 인식되고, PV 카테터의 압력 곡선 상에서 덜 두드러진 대동맥 노치이다.
5. PV 카테터를 대동맥 판막 위 약 1cm 위로 후퇴시킵니다.
6. PV 카테터의 다음 빠른 진행을 심장 주기의 수축기 단계로 동기화하십시오. 이것은 개방 된 대동맥 밸브를 통해 발생합니다. 성공은 PV 카테터에서 고전적인 심실 모양으로의 압력 신호의 변화에 의해 검증 될 수 있습니다.
7. 밸브를 통해 전진하려는 시도가 실패하면 PV 카테터를 회전시켜 오름차순 대동맥의 중앙에 더 나은 위치를 지정하십시오. 필요한 경우 다시 시도하십시오.
8. LV 내부에 들어가면 가능한 한 LV 정점에 가깝게 형광 검사를 기반으로 좌심실 PV 카테터 위치를 최적화하지만 심내막에 닿지 않도록하십시오 (그림 5C). 4.15단계를 참조하십시오.
   참고: 때때로, 떠 다니는 카테터는 조기 심장 수축을 일으킬 수 있습니다. 그렇다면 심내막을 너무 많이 압축하지 않고 고정하십시오.
9. 제조업체의 프로토콜에 따라 관련 기록 세그먼트 수를 선택하고 기록된 위상 및 크기 신호를 기반으로 LV에서 PV 카테터 위치를 최적화합니다(단계 4.16 참조).

6. 열등한 베나 카바 풍선 삽입

1. 인플레이션을위한 주사기를 원하는대로 식염수 또는 조영제로 채우고 풍선이 올바르게 팽창 될 수 있는지 확인하십시오.
2. 오른쪽 대퇴골 정맥의 12F 외피에 가이드 와이어를 삽입하십시오.
3. 가이드 와이어를 다이어프램 수준에서 IVC로 진행하십시오.
4. 풍선을 가이드 와이어 위에 삽입하고 끝 만료 시 다이어프램 레벨로 전진시킵니다(그림 5D).
5. 가이드 와이어를 철회하고 혈액 응고를 피하기 위해 식염수로 루멘을 씻어냅니다.

7. 압력 볼륨 카테터 교정

1. 제조업체의 지침을 읽고 따르십시오.
2. 심전도 모니터에서 안정적인 부비동 리듬과 5-10 분 동안 안정적인 심폐 변수를 보장하십시오.
3. Swan Ganz 카테터를 사용하여 열 희석에 의한 심장 출력 (CO)을 측정하십시오. 10% 미만의 변이를 갖는 5°C 등장성 글루코오스 10 mL의 평균 세 번의 주사를 사용한다. CO 측정 동안 동물의 심박수 (HR)를 관찰하십시오. 스트로크 볼륨(SV)을 SV = CO/HR(단위 mL)로 계산합니다. 정상 CO는 뇌졸중 부피가 80-110 mL인 60kg 돼지의 경우 4-6 L / min입니다.
4. SV를 LV와 RV의 PV 박스에 입력합니다.
5. 최적의 위상 및 크기 신호가 양쪽 심실에서 수신되는지 확인하십시오. 특히, 두 개의 PV 박스는 전자 크로스 토크를 피하기 위해 서로 다른 주파수로 녹음해야합니다.
6. 과도 무호흡증에서는 PV 신호를 보정("스캔")합니다.
7. 교정이 만족 스러우면 심실 PV 루프의 적절한 모양과 현실적인 압력 및 부피를 보장하십시오. 그렇지 않은 경우 교정을 다시 수행하십시오.

8. 기준선 평가

참고 : 연구 프로토콜이 시작되기 전에 혈역학의 안정화를 위해이 수준에서 실험을 일시 중지 할 수 있습니다.

1. PV 루프를 기록할 때는 제조업체의 지침을 따르십시오. 데이터 수집 소프트웨어에서 시작 을 누릅니다. PV 루프가 여전히 수용 가능한 모양인지 확인하십시오.
2. 연속 환기의 30-60 초 이상의 PV 루프를 기록하십시오. 예를 들어, 세 번의 호흡 사이클의 평균을 찾아 분석을 수행한다. 또는 인공 호흡기에서 최종 만료에 대한 일시적인 호흡 홀드를 수행하고 무호흡증에서 이러한 루프를 분석하십시오. 낮거나 전혀 양의 끝 내쉼 압력(PEEP) 및 최소 조정 가능한 압력 제한(APL) 밸브를 갖는 것을 고려하십시오.
   참고: 심실 기능, 특히 RV는 환기 (또는 자발적 호흡) 동안 흉부 내 압력의 주기적 변화에 의해 영향을받습니다. 중요한 것은 환기 또는 무호흡 중에 PV 루프가 기록되었는지 종이에보고하십시오.
3. 부하에 독립적인 PV 변수의 경우, 숨을 쉬고 몇 번의 심장 박동을 기다렸다가 선택한 액체로 IVC 풍선을 천천히 팽창시킵니다(단계 6.1). 풍선은 점차적으로 심장 사전 부하를 감소시킵니다.
4. RV PV 루프가 어떻게 점진적으로 작아지고 왼쪽으로 이동되는지 관찰하십시오.
   참고: RV 프리로드의 점진적인 감소는 RV 말단 확장기 볼륨을 점진적으로 낮출 것입니다. 낮은 볼륨은 더 낮은 압력과 출력을 유발합니다 (Starling 메커니즘). 자세한 내용은 참조1,2,3을 참조하십시오.
5. 중요하게도, LV 프리로드(RV와 직렬로 연결됨)의 감소를 위해 연관된 주사기 상의 압력을 충분히 길게 유지함으로써 풍선을 팽창된 상태로 유지한다. LV 압력과 부피의 점진적인 감소도 관찰하십시오. 예제는 대표 결과 섹션을 참조하십시오.
6. 빨리 풍선을 수축시키고 환기를 켜십시오.
7. 반응이 만족스럽지 않은 경우, 즉 조기 심장 복합체, 부비동 서맥 또는 유사하게 영향을받는 심장 기능이없는 경우 8.3-8.7을 다시 수행하십시오.
8. 돼지가 다음 IVC 폐색 전에 2-5 분 동안 안정화되도록 허용하십시오.
   참고: 혈역학은 특히 심혈관 장애 모델에서 호흡 유지 및 사전 부하 감소에 의해 일시적으로 영향을 받습니다.
9. 통계 분석의 견고성을 높이기 위해 세 가지 만족스러운 폐색(8.7 참조)을 수행하는 것을 고려하십시오.

9. 포스트 프로토콜

1. 생존 연구에서 모든 혈관 내 장비 (PV 카테터, IVC 풍선 및 스완 간츠 카테터)를 제거하고 청소하십시오.
   1. 칼집을 제자리에 고정시킨 피부 봉합사를 자르십시오. 수동으로 당겨서 각 칼집을 제거하십시오. 지혈을 달성하기 위해 각 정맥 접근 사이트를 몇 분 동안 압축하십시오.
   2. 동맥의 경우 외피를 제거하고 지혈을 위해 더 오래 (5-10 분) 압축하십시오. 대안적으로, 혈관 폐쇄 장치를 사용하는 것을 고려한다.
   3. 출혈과 감염을 피하기 위해 하나의 적응 형 피부 봉합사 (3.0, 흡수성 봉합사)로 외피에서 피부 절개를 닫으십시오. 통증 완화를 위해 각 피부 절개 주위에 5 mL의 부피바카인(5 mg/mL)을 피하로 바르십시오.
2. 모든 장치가 제거되고 지혈이 이루어지면 마취 주입을 중단하십시오. 이 단계에서 동물을주의 깊게 관찰하십시오.
3. 목구멍 반사 신경이 존재하고 동물이 삽관을 위해 충분히 깨어있을 때까지 동물을 삽관 (처음에는 커프가 팽창 된 상태)으로 유지하십시오. 적절한 환기를 보장하기 위해 삽관 전후에 맥박 산소 측정법을 통해 산소 수준을 계속 측정하십시오. 필요한 경우 산소를 바르십시오.
4. 완전히 회복 될 때까지 동물을 다른 동물의 회사로 돌려 보내지 마십시오.
5. 생존 수술을 위해, 적절한 멸균 상태를 유지하십시오. 2.2-2.5단계를 참조하십시오. 동물의 온도 측정을 포함한 감염 징후가 있는지 피부 절개와 봉합사를 매일 관찰하십시오.
6. 실험이 끝나면 펜토바르비탈 (15 mL, 400 mg / mL)의 치사량으로 안락사를 수행하십시오.

결과

본 지침은 큰 동물에서 RV 및 LV 둘 다로부터 어드미턴스 기반 PV 기록을 달성하기 위한 접근법을 기술한다.

RV와 LV에서의 동시 PV 기록을 비교하기 위해, 우리는 가장 큰 연구18에서 가장 많은 수의 동시 RV CO 및 LV CO 측정(n=379 레코딩)을 갖는 이심실 CO 측정의 선형 회귀를 수행하였다(¹² 마리의 동물로부터의 n=379 기록). 우리는 기울기가 1.03 (95 % CI 0.90-1.15)이고 Y ?...

토론

이 논문은 이중 심실 압력 볼륨 루프 기록을위한 재현 가능한 최소 침습적 폐쇄 가슴 접근법에 대해 설명합니다.

PV 카테터를 RA에서 RV로 발전시키는 것은 이 프로토콜에서 가장 중요한 단계이다. RV의 복잡한 조성과 카테터의 강성은 쉽게 분산되고 기하학적으로 도전적인 RV로의 삽입을 복잡하게 만듭니다. 이 어려움은 왜 가슴 개방 계측이 종종 선호되는지를 설명 할 수 있습?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
12L-RS	GE Healthcare Japan	5141337	Ultrasound probe
12L-RS	GE Healthcare Japan	5141337	Ultrasound probe
Adhesive Aperature Drape (OneMed)	evercare	1515-01	75 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Adhesive Aperature Drape (OneMed)	evercare	1515-01	75 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Alaris GP Guardrails plus	CareFusion	9002TIG01-G	Infusion pump
Alaris GP Guardrails plus	CareFusion	9002TIG01-G	Infusion pump
Alaris Infusion set	BD Plastipak	60593
Alaris Infusion set	BD Plastipak	60593
Alkoholswap	MEDIQ Danmark	3340012	82% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Alkoholswap	MEDIQ Danmark	3340012	82% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Amplatz Support Wire Guide Extra-Stiff	Cook Medical	THSF-25-260-AES	diameter: 0.025 inches, length: 260 cm
Amplatz Support Wire Guide Extra-Stiff	Cook Medical	THSF-25-260-AES	diameter: 0.025 inches, length: 260 cm
BD Connecta	BD	394601	Luer-Lock
BD Connecta	BD	394601	Luer-Lock
BD Emerald	BD	307736	10 mL syringe
BD Emerald	BD	307736	10 mL syringe
BD Luer-Lock	BD Plastipak	300865	BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Luer-Lock	BD Plastipak	300865	BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Platipak	BD	300613	20 mL syringe
BD Platipak	BD	300613	20 mL syringe
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393204	20G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393204	20G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393208	17G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393208	17G
Butomidor Vet	Richter Pharma AG	531943	10 mg/mL
Butomidor Vet	Richter Pharma AG	531943	10 mg/mL
Check-Flo Performer Introducer	Cook Medical	RCFW-16.0P-38-30-RB	16 F sheath, 30 cm long
Check-Flo Performer Introducer	Cook Medical	RCFW-16.0P-38-30-RB	16 F sheath, 30 cm long
Cios Connect S/N 20015	Siemens Healthineers		C-arm
Cios Connect S/N 20015	Siemens Healthineers		C-arm
D-LCC12A-01	GE Healthcare Finland		Pressure measurement monitor
D-LCC12A-01	GE Healthcare Finland		Pressure measurement monitor
Durapore	3M	-	Adhesive tape
Durapore	3M	-	Adhesive tape
E-PRESTIN-00	GE Healthcare Finland	6152932	Respirator tubes
E-PRESTIN-00	GE Healthcare Finland	6152932	Respirator tubes
Exagon vet	Richter Pharma AG	427931	400 mg/mL
Exagon vet	Richter Pharma AG	427931	400 mg/mL
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12F	St. Jude Medical	406128	L: 12 cm
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12F	St. Jude Medical	406128	L: 12 cm
Favorita II	Aesculap		Type: GT104
Favorita II	Aesculap		Type: GT104
Fentanyl	B. Braun	71036	50 mikrogram/mL
Fentanyl	B. Braun	71036	50 mikrogram/mL
Ketaminol Vet	MSD/Intervet International B.V.	511519	100 mg/mL
Ketaminol Vet	MSD/Intervet International B.V.	511519	100 mg/mL
LabChart	ADInstruments		Data aquisition software
LabChart	ADInstruments		Data aquisition software
Lawton 85-0010 ZK1	Lawton		Laryngoscope
Lawton 85-0010 ZK1	Lawton		Laryngoscope
Lectospiral	VYGON	1159.90	400 cm (Luer-LOCK)
Lectospiral	VYGON	1159.90	400 cm (Luer-LOCK)
Lubrithal eye gel	Dechra, Great Britain
Lubrithal eye gel	Dechra, Great Britain
MBH qufora	MBH-International A/S	13853401	Urine bag
MBH qufora	MBH-International A/S	13853401	Urine bag
Natriumklorid	Fresenius Kabi	7340022100528	9 mg/ml Isotonic saline
Natriumklorid	Fresenius Kabi	7340022100528	9 mg/ml Isotonic saline
PICO50 Aterial Blood Sampler	Radiometer	956-552	2 mL
PICO50 Aterial Blood Sampler	Radiometer	956-552	2 mL
Portex Tracheal Tube	Smiths Medical	100/150/075	"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
Portex Tracheal Tube	Smiths Medical	100/150/075	"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
PowerLab 16/35	ADInstruments	PL3516	Serial number: 3516-1841
PowerLab 16/35	ADInstruments	PL3516	Serial number: 3516-1841
Pressure Extension set	CODAN	7,14,020	Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Pressure Extension set	CODAN	7,14,020	Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Propolipid	Fresenius Kabi	21636	Propofol, 10 mg/mL
Propolipid	Fresenius Kabi	21636	Propofol, 10 mg/mL
PTS-X	NuMED Canada Inc.	PTSX253	Inferior vena cava balloon
PTS-X	NuMED Canada Inc.	PTSX253	Inferior vena cava balloon
Radiofocus Introducer II	Radiofocus/Terumo	RS+B80N10MQ	6+7+8F sheaths
Radiofocus Introducer II	Radiofocus/Terumo	RS+B80N10MQ	6+7+8F sheaths
Rompun Vet	Beyer	86450917	Xylazin, 20 mg/mL
Rompun Vet	Beyer	86450917	Xylazin, 20 mg/mL
Rüsch Brilliant AquaFlate Glycerine	Teleflex	178000	Bladder catheter, size 14
Rüsch Brilliant AquaFlate Glycerine	Teleflex	178000	Bladder catheter, size 14
S/5 Avance	Datex-Ohmeda	-	Mechanical ventilator
S/5 Avance	Datex-Ohmeda	-	Mechanical ventilator
Safersonic Conti Plus & Safergel	SECMA medical innovation	SAF.612.18120.WG.SEC	18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Safersonic Conti Plus & Safergel	SECMA medical innovation	SAF.612.18120.WG.SEC	18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Scisense Catheter	Transonic Scisense	FDH-5018B-E245B	Serial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Catheter	Transonic Scisense	FDH-5018B-E245B	Serial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Pressure-Volume Measurement System	Transonic Scisense	ADV500	Model: FY097B. Pressure-volume box
Scisense Pressure-Volume Measurement System	Transonic Scisense	ADV500	Model: FY097B. Pressure-volume box
Swan-Ganz CCOmbo	Edwards Lifesciences	744F75	110 cm
Swan-Ganz CCOmbo	Edwards Lifesciences	744F75	110 cm
TruWave Pressure Monitoring Set	Edwards Lifesciences	T434303A	210 cm
TruWave Pressure Monitoring Set	Edwards Lifesciences	T434303A	210 cm
Vivid iq	GE Medical Systems China	Vivid iq
Vivid iq	GE Medical Systems China	Vivid iq
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)	Virbac	83046805	Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)	Virbac	83046805	Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection