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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

本协议描述了一种使用自制牵开器进行微创横主动脉收缩(TAC)手术的改进和简化技术。该手术可以在没有呼吸机或显微镜的情况下进行,并引入压力超负荷,最终导致心脏肥大或心力衰竭。

摘要

横主动脉收缩(TAC)是基于小鼠模型中压力超负荷的形成,在心力衰竭和心脏肥大研究中经常使用的手术。该手术的主要挑战是清晰地看到横主动脉弓并精确地束带目标血管。经典方法进行部分开胸术以暴露横主动脉弓。然而,它是一种开胸模型,会导致相当大的手术创伤,并且在手术过程中需要呼吸机。为了防止不必要的创伤并简化操作程序,通过胸骨的近端比例 接近 主动脉弓,使用包含圈套的小型自制牵开器到达并绑定目标血管。该手术可以在不进入胸膜腔的情况下进行,不需要呼吸机或显微外科手术,这使小鼠具有生理呼吸模式,简化了手术,并显着减少了手术时间。由于侵入性较小,手术时间较短,小鼠可以经历较少的应激反应并迅速恢复。

引言

心力衰竭是一种复杂的临床症状,由心室充盈或射血的结构和功能受损引起1。疾病分期主要通过纽约心脏协会根据症状严重程度和身体活动进行功能分类 定义2.对于射血分数超过 50% 的患者,结构和/或功能异常应提高利钠肽,以支持射血分数保留 (HFpEF) 诊断心力衰竭2。缺血性心脏病是心力衰竭多种病因的主要原因。因此,心肌梗死模型(如永久性冠状动脉结扎术)常用于研究心脏灌注不足或缺血再灌注损伤后的病理生理学34。除急性心肌损伤外,高血压、糖尿病、肥胖症和心肌病家族史等其他危险因素也会导致心力衰竭的发展。患者通过A期(有心力衰竭风险)进入B期(心力衰竭前期)后,会发生结构改变1。例如,高血压患者首先经历适应性左心室肥大,然后通过病理重塑逐渐发展为适应不良的心脏肥大并过渡到心力衰竭5

作为各种心血管疾病的终末期,慢性心力衰竭已经研究了几十年6。多种小鼠模型已广泛用于心力衰竭研究,包括药物输注(血管紧张素II),代谢紊乱(糖尿病或高热量饮食)和主动脉收缩7。在这些模型中,血管紧张素II灌注伴有各种器官副作用,如肾脏7。诱导代谢紊乱通常需要相当长的时间。升主动脉收缩被认为与人类疾病相关性有限7.

TAC是一种可靠的模型,可增加后负荷并诱发心脏肥大和心力衰竭8。开胸TAC模型最早由Rockman等人描述,并在世界各地的众多实验室中使用9。然而,这种经典的TAC程序对小鼠造成相当大的创伤并改变其正常行为,这可能需要很长的恢复时间并干扰进一步的治疗10。其他改良的闭胸TAC手术确实减少了一些侵入性步骤,但需要显微外科手术技能或机械通气10,11

本协议详细介绍了一种循序渐进的方法,该方法使用自制的牵开器通过胸骨上边缘的 3 毫米中线切口 主动脉弓进行微创方法。该模型不需要显微外科技术、机械通气或切开肋骨,从而提供了一种快速、手术创伤受限、简单、廉价的方式来进行 TAC 手术。

研究方案

目前的协议由中国武汉华中科技大学同济医学院同济医院伦理委员会批准。该程序在雄性成年C57 / BL6小鼠(>10周龄)上进行。所有手术器械在手术前均通过高压灭菌进行灭菌。

1. 手术器械的准备

  1. 准备一个 5 mL 注射器,用针架捏掉针尖以使其变钝。
  2. 准备一根 27 G 的针头,并用持针器将其钝化。用眼科剪刀剪针尖是使针头变钝的另一种方法。
  3. 将 27 G 针的尖端弯曲 90°。
    注意:此针将用作垫片,与主动脉系紧以进行血管收缩。
  4. 使用商业获得的铁丝(医用级,直径0.5毫米,见 材料表)并在针周围缠绕(图1A)。在针的钝尖形成一个小圈套或环(图1B)。
    注意:这种可重复使用的仪器充当特殊的自制牵开器,并允许人们在后面的步骤中将丝线穿过主动脉下方。
  5. 手术前高压灭菌所有手术工具(包括上面制作的特殊牵开器)以对其进行消毒。

2. 动物制备

  1. 根据体重,通过腹膜内注射戊巴比妥钠溶液(50mg / kg,参见材料表麻醉小鼠。皮下注射100μL的0.5%利多卡因局部到手术区域。
  2. 通过用镊子的尖端捏住鼠标的脚趾来确认鼠标已完全麻醉。
  3. 在双眼上涂抹眼药膏,以防止麻醉时干燥。
  4. 用脱毛膏或剪刀去除喉咙和上胸部的毛发。
  5. 用三个碘和70%乙醇的交替擦洗液对无毛区域进行消毒,向外移动同心圆。
  6. 将鼠标仰卧放在覆盖有无菌窗帘的加热垫上,其头部指向操作员。用胶带和门牙用4-0缝合线固定四肢(图2A)。
  7. 插入直肠探头(见 材料表)以在手术过程中监测体温。在整个操作过程中将体温保持在37°C。
  8. 戴上一副无菌手套。
    注意:戴上无菌手套后,请勿触摸其他未消毒的区域或物体。
  9. 用无菌眼科剪刀在新的一次性无菌窗帘上切一个洞(直径1-1.5厘米)。将无菌窗帘放在鼠标上,并确保通过孔可以看到无毛的操作区域。
    注意:此步骤允许操作员避免触摸其他未消毒的区域,这有助于在手术过程中保持无菌条件。

3.横主动脉收缩

  1. 用手术刀刀片在胸骨上切口的水平(图2B)做一个1.5厘米的垂直皮肤切口。将皮肤切口向下扩大到胸骨角的水平。
    注意:胸骨上切迹是位于胸骨手管上边缘的切口。它是一种表面符号,可以在去除鼠标毛发时检测到(图2B)。胸骨角是胸骨和胸骨之间的关节。当胸骨暴露时,它在胸骨上表现为一条水平白线,位于肋骨的同一水平(图2C)。
  2. 小心地分离皮肤和浅筋膜,露出气管和胸骨近端。小心地从上边缘到胸骨角在胸骨上做一个3-4毫米的纵向中线切口(图2D)。
    注意:切口不得超过胸骨角,因为存在引起小鼠急性气胸的风险。
  3. 用镊子轻轻抬起胸骨,在其下方抬起胸腺和弓主动脉。小心地使用直镊子,并钝化地解剖目标血管及其周围的组织。
  4. 握住用户右手末端包含钢丝圈套的先前自制卷收器(步骤 1.4)。
  5. 小心地将自制牵开器的圈套在主动脉下左颈总动脉和右无名动脉的起源之间(图2E)。
  6. 将自制的卷收器传给左手,为其他乐器腾出右手。
  7. 右手用显微镊子,将7-0的丝线穿过末端的圈套,拉出牵开器。这将允许将丝线留在动脉周围以进行进一步结扎(图2F)。
    注意:要轻柔,不要将主动脉弓从其原始位置拖拽太多。
  8. 将27 G针平行于主动脉放置,并将缝合线绑在针和主动脉周围(图2G,H)。
    注意:假手术应相同,除了没有主动脉结扎。
  9. 用眼科镊子抓住 27 G 针头,另一个镊子固定绑在 27 G 针头和主动脉上的结。快速但轻轻地从结扎中拉出27 G针(图2H)。
    注意:打结不能太紧,否则不容易拔出针头。拔出针头时要小心,以防主动脉破裂。
  10. 用4-0合成单丝缝合以中断缝合模式缝合皮肤(图2I)。

4. 术后护理

  1. 将鼠标放在温暖的垫子上(请参阅 材料表)并等待其恢复。通常,鼠标在大约 60 分钟内复活。
    注意:在动物恢复对主要胸骨卧的足够意识之前,不得无人看管。
  2. 皮下注射0.5mL温盐水,监测动物体液稳态。
    注意:此步骤可防止动物脱水和低血容量循环状态。
  3. 每天将红霉素软膏涂抹在伤口表面,持续 3 天。
  4. 对于术后疼痛治疗,将1mg / L丁丙诺啡局部麻醉剂肠胃外施用到切口部位(见 材料表)。
  5. 术后,监测小鼠是否有感染和损伤的迹象(营养不良、驼背姿势和皱褶的皮毛)。
    注意:接受手术的动物在完全康复之前不会回到其他动物的陪伴下。

5. 超声成像

  1. 手术后28天通过超声成像系统1213(24 MHz,见材料表计算血流速度确认横主动脉的成功结扎。
    1. 在20%富氧空气中用4.5%异氟醚麻醉动物,并在20%富氧空气中用0.5%异氟醚维持。
    2. 将鼠标置于仰卧位,并用胶带将其四肢固定在电极上。
    3. 使用脱毛膏,去除胸毛并在胸部涂抹超声波偶联剂。
    4. 尽可能向左倾斜平台。在将探头保持在垂直位置的同时,沿着胸部的右侧胸骨旁线逐渐降低探头,凹口指向动物的下巴。
    5. 在仪器的B模式下,调整X轴和Y轴,直到主动脉弓和收缩部位清晰可见。
    6. 单击脉 搏波多普勒 按钮切换到脉搏波模式。
    7. 调整收缩部位远端的虚线光标样品体积盒,并找到速度最高的狭窄射流。
    8. 再次单击 脉搏波多普勒 按钮以获取主动脉血流波形并测量峰值速度。根据波形的峰值计算血流速度(图3A,B)。
    9. 将成像仪设置为 B 模式。将平台放在水平位置。将探头旋转至胸骨旁左线 30°。
    10. 调整 X 轴和 Y 轴以获得短轴视图。按 M 模式显示指示线,然后单击 Cine Store 保存图像,以便以后测量心脏壁厚度、腔室尺寸和射血分数。
      注:射血分数的计算公式:100% * ((LV Vol;d - LV Vol;s) / LV Vol;d)。计算心输出量的公式:每搏输出量*心率(在绘制的第一帧)/ 1000。射血分数和心输出量等大多数指标都可以 通过 超声成像系统的软件自动测量。左心室体积:左心室舒张容积。左心室体积:左心室收缩容积。

结果

TAC手术成功后,使用超声成像系统检测压力过载。手术四周后,小鼠心脏功能下降。在本研究中,通过4周后接受TAC手术的小鼠的射血分数(EF),分数缩短(FS),左心室质量(LV质量)和左心室内径(LVID) 验证 了TAC手术的有效性。与假小鼠相比,4周后TAC小鼠的EF显着降低(47%±10%对78%±4%, p <0.0001)(图4A)。TAC小鼠的左心室质量显着升高(158.1±50.5对91.8±21.7...

讨论

持续压力超负荷的诱导可逐渐引起心脏肥大和心力衰竭。该模型已在世界各地的众多实验室中使用141516。该方案提供了一种改进的TAC方法,不需要显微外科手术技能或机械通气。

该方案中最重要的一步是在主动脉弓下通过丝线。当圈套钩住主动脉弓时,所有动作都必须轻柔,以减少对动脉的不必要牵?...

披露声明

提交人声明不存在利益冲突。

致谢

这项工作由中国国家自然科学基金(NSFC 81822002)资助。我们感谢参加这项工作的所有成员。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
4-0 nonabsorbable sutureJinhuanHM403Used for suturing the skin
5 mL syringeHaifuda Technology Co., Ltd.BD-309628Used for making snare containing retractor
7-0 nonabsorbable sutureJinhuanHM701Used for aorta ligation
Animal temperature monitorKaerwenFT3400Used for monitoring body temperature
Buprenorphine SigmaB-044Used for post-surgical pain treatment
Depilatory cream VeetN/AUsed for remove body hair from the surgical area
Heating PadXiaochuangxinN/AUsed for maintaining body temperature
IbuprofenMCEHY-78131Used for post-surgical pain treatment
Iron wire (0.5 mm)Qing YuanIron wire #26Used for making snare containing retractor
Microscopic tweezersRWDF12006-10Used for penetrating and separating the tissue to open operation space
Needle holderRWDF12005-10Used for pinching off the tip of gauge needle and blunting it
Ophthalmic forcepsRWDF14012-10 Used for holding skin and other tissues
Ophthalmic scissorsRWDS11001-08Used for making sking incision of mouse
Pentobarbital sodiumSigmaP3761Used for mouse anesthesia
Sterile operating matHale & hearty211002Used for placing animal during surgery
Ultra-sound imaging systemFujifilm visualsonicsvevo1100Used for measure the blood flow velocity, left ventricular wall thickness and ejection fraction, https://www.visualsonics.com/product/imaging-systems/vevo-1100

参考文献

  1. Heidenreich, P. A., et al. AHA/ACC/HFSA Guideline for the Management of Heart Failure: A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Joint Committee on Clinical Practice Guidelines. Circulation. 145 (18), 895 (2022).
  2. McDonagh, T. A., et al. ESC Guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure. European Heart Journal. 42 (36), 3599 (2021).
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  4. Curaj, A., Simsekyilmaz, S., Staudt, M., Liehn, E. Minimal invasive surgical procedure of inducing myocardial infarction in mice. Journal of Visualized Experiments. (99), e52197 (2015).
  5. Nakamura, M., Sadoshima, J. Mechanisms of physiological and pathological cardiac hypertrophy. Nature Reviews Cardiology. 15 (7), 387-407 (2018).
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