此过程的目的是有一个外体模型,以评估骨重塑,并使用 calvaria 培养物或与癌细胞共同培养肿瘤骨微环境。大多数钙质技术是一种器官培养系统,使用新生儿小鼠的钙质骨来评估骨骼重塑。您可以测试不同分子的治疗潜力,甚至结合癌细胞使用骨肿瘤微环境。
所有这一切在一个简单和简单的测定在短时间内和低成本。该技术的目的是利用小鼠卡路里器官培养的外体模型,利用癌症骨骼微环境评估骨再生的工具。首先,选择一只老鼠小狗,然后把它放在引擎盖下。
我们使用从五到七天大的老鼠幼崽的卡瓦里亚。用注射器拿头,切开皮肤,清除头皮区域,足以解剖钙。确定头骨、下垂、日冕和羔羊的缝合线。
沿着羔羊缝合线做一个笔直的切口,大约在眼睛的水平。切在每一边,从羊皮缝合线到日冕缝合线。在 45 角度下,再进行一次切割,以连接与前部字体的切口进行切割的切口。
定义头骨缝合线、下垂、前冠、冠状体、羔羊类,以保证正确的组织内含和组织学分析,是极其重要的。用细尖钳,取出卡瓦里亚,并把它放在培养皿盖上。用手术刀,沿着下垂缝合线沿着下垂缝合线从后牙线直接切割,穿过日冕缝合线。
获得两个半方面变量。用钳子选取每个卡瓦里亚,并把它们放在一个新的培养皿与PBS。对于培养,将下摆放在24井组织培养板中,含有1毫升培养剂,并在37度下孵育24小时。
我们还可以使用原发性钙质培养物来再现肿瘤骨微环境,用于骨吸收。为此,我们与癌细胞或癌细胞的调节介质共同培养钙。24 小时后,卸下介质并将其替换为包含您要测试的处理效果的介质。
如果你想评估癌细胞和骨相互作用,或重新创建肿瘤骨微环境,将钙质传递到低细胞附着板,以避免癌细胞附着在板上。对癌细胞进行分析,数一数,并小心地将它们放在半膜体的顶部。您也可以使用来自癌细胞的条件介质,并用它来孵化下摆。
在37度下孵育6至7天,二氧化碳占5%。第三天,更换介质,继续孵化。在共培养中使用的细胞数量取决于癌症细胞线。
首先,您需要优化在一个单元格中诱导响应所需的单元格数。培养后,卡瓦里亚通过固定、脱钙和石蜡嵌入的过程。此外,组织被分切在微原子中,染色,并进行组织形态分析。
包含卡瓦里亚可能比较棘手。为确保组织在内含过程中受到保护,您可以将组织放在海绵之间,或使用纸巾或其他吸水纸,然后再将其放入盒式磁带中。对于组织加工,用纸巾包装下半膜。
然后,将其放入嵌入盒中,并在正式状态的中性缓冲区中固定,在四度下 24 小时。要对卡瓦里亚进行脱钙,请将盒式磁带放入 10%EDTA 中,在四度下 48 小时。在自动组织处理器中使用半圆锥形处理组织盒。
遵循常规的一天旋转周期,然后,包括在石蜡中。对于分切,用显微原子切割四个微分部分,将截面安装到玻璃显微镜幻灯片上,用赤氧树脂素、eosin进行染色。组织学分析用于对骨骼表面和骨骼重塑区域进行定量分析。
使用成像软件对7天中钙的影像进行了分析。对于定量评估,首先,定义分析区域。查看 telopa 上的部分,其中四个 X 可以确定方向和缝合线。
定义日冕缝合线,并识别一侧的长骨表面,然后识别另一侧的短面。在40X放大倍率下,识别日冕缝合线,沿着长表面将两到三个光场移离缝合线。捕获此区域的图像以进行分析。
您可以使用图像软件来分析骨骼的结构完整性。可以对半角体厚度和骨骼面积进行定量组织形态分析。正确的 calvaria 分析取决于良好的嵌入和正确的方向,以取得一致的组织学结果。
确保每个实验条件至少使用三个卡路里。在这里,我们可以看到骨骼的结构。在橙色中,观察到骨骼。
我们还可以看到周分、骨质疏松、内分泌和骨骼其他部位的存在。在我们的案例中,我们使用胰岛素来增加骨骼重塑。与控件相比,我们可以看到骨骼面积显著增加。
在这里,我们可以看到MDA-MB-231细胞系对模型卡尔瓦里亚的影响。与控制相比,我们可以看到癌细胞的存在会诱发刺激骨骼破坏的骨解因子。我们使用 calvaria 模型测量骨再生和癌细胞骨相互作用,通过与癌细胞和组织学的共培养。
我们还通过定量实时 PCR 验证数据。这种外体模型具有许多优点,如三维组织和骨骼的细胞多样性得到保存,可以控制实验条件。此外,模型很简单,可以在短时间内看到结果,而且成本低。
它可以与其他技术相结合,如定量实时PCR,显微镜和微型CT。