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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

In der vorliegenden Studie wird die Expression von zwei nachgeschalteten Signalkomponenten des PERK-Signalwegs, dem zytoprotektiven Calcineurin und dem pro-apoptotischen CHOP, unter Verwendung spezifischer shRNAs abgeschaltet. Auf entgegengesetzte Weise modulieren diese die Anfälligkeit primärer kortikaler Neuronen für Neuritenatrophie nach Induktion von endoplasmatischem Retikulumstress.

Zusammenfassung

Die Anhäufung von ungefalteten Proteinen im endoplasmatischen Retikulum (ER), die durch einen Stresszustand verursacht wird, löst die ungefaltete Proteinantwort (UPR) durch die Aktivierung spezialisierter Sensoren aus. UPR versucht zunächst, die Homöostase wiederherzustellen; Wenn der Schaden jedoch anhält, induziert die Signalübertragung Apoptose.

Es gibt immer mehr Hinweise darauf, dass anhaltender und ungelöster ER-Stress zu vielen pathologischen Zuständen, einschließlich neurodegenerativer Erkrankungen, beiträgt. Da die UPR das Zellschicksal steuert, indem sie zwischen zytoprotektiven und apoptotischen Prozessen wechselt, ist es wichtig, die Ereignisse, die diesen Übergang definieren, sowie die Elemente, die an seiner Modulation beteiligt sind, zu verstehen.

Kürzlich haben wir gezeigt, dass eine abnormale GM2-Gangliosidakkumulation zu einer Erschöpfung des ER Ca2+ -Gehalts führt, was wiederum PERK (PKR-like-ER-Kinase), einen der UPR-Sensoren, aktiviert. Darüber hinaus ist der PERK-Signalweg an der Neuritenatrophie und Apoptose beteiligt, die durch die GM2-Akkumulation induziert wird. In dieser Hinsicht haben wir ein experimentelles System etabliert, das es uns ermöglicht, die Expression von nachgeschalteten PERK-Komponenten molekular zu modulieren und so die Anfälligkeit von Neuronen für eine neuritische Atrophie zu verändern.

Wir führten einen Knockdown der Calcineurin- (zytoprotektiven) und CHOP- (pro-apoptotischen) Expression in kortikalen neuronalen Kulturen von Ratten durch. Die Zellen wurden mit Lentivirus-gelieferter spezifischer shRNA infiziert und dann zu unterschiedlichen Zeitpunkten mit GM2 behandelt, fixiert und mit Anti-MAP2-Antikörpern (Mikroröhren-assoziiertes Protein 2) immungefärbt. Später wurden Zellbilder mit einem Fluoreszenzmikroskop aufgenommen und das totale Neuritenwachstum mit der gemeinfreien Bildverarbeitungssoftware ImageJ ausgewertet. Die Hemmung der Expression dieser PERK-Signalkomponenten ermöglichte es eindeutig, die durch ER-Stress induzierte neuritische Atrophie entweder zu beschleunigen oder zu verzögern.

Dieser Ansatz könnte in Zellsystemmodellen von ER-Stress verwendet werden, um die Anfälligkeit von Neuronen für Neuritenatrophie zu bewerten.

Einleitung

Stress im endoplasmatischen Retikulum (ER) ist definiert als jede Störung, die die Proteinfaltungskapazität in der Organelle beeinträchtigt. Die Anhäufung von ungefalteten Proteinen innerhalb des ER-Lumens aktiviert ein Transduktionskaskadensignal, das als ungefaltete Proteinantwort (UPR) bezeichnet wird. Dieser komplexe Signalweg wird von drei Stresssensoren orchestriert: PERK (Proteinkinase-RNA [PKR]-ähnliche ER-Kinase), IRE1 (Inositol-erforderliches Enzym 1) und ATF6 (aktivierter Transkriptionsfaktor 6). Alle zusammen versuchen, die Homöostase wiederherzustellen. Wenn der Stress jedoch anhält, induziert UPR schließlich den Zelltod durch Apoptose1<....

Protokoll

Die Tierverfahren werden nach den genehmigten Protokollen des National Institute of Health Guide für die Pflege und Verwendung von Labortieren durchgeführt. Die Genehmigung zur Durchführung der Studie wird von der Tierpflege- und Ethikkommission (CICUAL) des INIMEC-CONICET-UNC erteilt (Beschlussnummern 014/2017 B und 006/2017 A).

1. Primäre kortikale Neuronenkulturen der Ratte

  1. Betäuben Sie trächtige Ratten in einer CO 2 -Kammer mit einer Mischung aus 80% CO 2 / 20% O2 für 60 s Exposition und opfern Sie sie dann durch Luxation der Halswirbel.
  2. Führen Sie die folgenden Schritte in einer Lami....

Ergebnisse

Hier gehen wir der Frage nach, ob die Stummschaltung zweier PERK-Downstream-Komponenten die Übergangsphase von UPR in einem ER-Stresszellmodell beeinflusst. Um dies zu erreichen, schalten wir sowohl das CN-Aα-Gen als auch das CHOP-Gen durch jeweils zwei spezifische shRNA-Sequenzen (Tabelle 1) in primärer Neuronenzellkultur für 1 Tag10 zum Schweigen. Die Expression wird mittels Western Blot analysiert (Abbildung 1 und

Diskussion

Wir beschreiben ein experimentelles System, das die molekulare Modulation des Übergangs von der Überlebens- zur apoptotischen UPR-Phase in einem neuronalen Zellmodell ermöglicht.

Für eine korrekte Analyse der Neuritenatrophie ist es wichtig, primäre Neuronenkulturen mit zahlreichen, langen, stark verzweigten Prozessen zu erhalten 9,11. Dies erleichtert die Untersuchung der Erweiterung des Neuronenprozesses, so dass die deutlichen .......

Offenlegungen

Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Danksagungen

Wir danken Dr. Gonzalo Quasollo für seine unschätzbare Hilfe bei der Bildgebung und Dr. Andrea Pellegrini für die technische Unterstützung der Zellkultur.

Diese Forschung wurde unterstützt durch Zuschüsse von: dem National Institute of Health, USA (#RO1AG058778-01A1, Subaward Agreement No 165148/165147 zwischen UTHSCSA-Instituto Investigación Médica M y M Ferreyra) und von der National Agency of Agencia Nacional de Scientific and Technological Promotion, Argentinien (ANPCyT, PICT 2017 #0618).

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Alexa Fluor 488 anti-MouseThermo Fisher Scientific#R37120
anti-CHOPThermo Fisher# MA1 - 250
Anti-CN-AαMillipore# 07-067
Anti-GM2Matreya#1961
anti-MAP2Sigma Aldrich# M2320
anti-β-actinThermo Fisher# PA1 - 183
aprotininSanta Cruz Biotechnology#3595
Axiovert 200 epifluorescence microscopeZeiss
B27 supplementLife Technologies#17504944
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)Life Technologies#11966025
EcoRIPromega#R6011
Fetal Calf Serum (FCS)Life Technologies#16000044
Fine-tippeds forceps  style #5Dumont
Forcep style #3Dumont
HEK 293ATCC#CRL-1573
IRDye 680 CW secondary antibodyLI-COR Biosciences#92632221
IRDye 680 secondary antibodyLI-COR Biosciences#92632220
IRDye 800 CW secondary antibodyLI-COR Biosciences#92632210
IRDye 800 CW secondary antibodyLI-COR Biosciences#92632211
lentiviral envelope plasmid pMD2.GAddgene#12259
lentiviral packing plasmid psPAX2Addgene#12260
lentiviral vector pLKO.3GAddgene#14748
Leupeptin hemisulfateSanta Cruz Biotechnology#295358
Lipofectamine LTX & Plus Reagent (plasmid transfection reagent)Life Technologies#A12621
MISSION shRNASigma Aldrich
Monosialoganglioside GM2Matreya#1502
NanoDrop 2000Thermo Scientific
Neurobasal MediumLife Technologies#21103049
Nitrocellulose membrane 0.45 µmBIO-RAD#1620115
Odyssey infrared imaging systemLI-COR Bioscience
OneShot Top 10Life Technology#C404010
Opti-MEM (Reduced serum media)Life Technologies#105802
PacIBioLabs#R0547S
penicillin-streptomycinLife Technologies#15140122
Pepstatin ASanta Cruz Biotechnology#45036
phenylmethylsulfonyl fluorideSanta Cruz Biotechnology#329-98-6
Poly-L-lysinesigma aldrichP#2636
Straight sharp small spring scissorsFine Science Tools
T4 DNA LigasePromega#M1801
Trypsin-EDTA 0.25 %Life Technologies#25200056
Vibra-Cell Ultrasonic Liquid Processor (VCX 130)Sonics
Wizard plus SV Minipreps DNA purification systemPromega#A1330

Referenzen

  1. Schroder, M., Kaufman, R. J. The mammalian unfolded protein response. Annual Review of Biochemistry. 74, 739-789 (2005).
  2. Cui, W., Li, J., Ron, D., Sha, B. The structure of the PERK kinase domain suggests the mechanism for its activ....

Nachdrucke und Genehmigungen

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