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Das hier verwendete Experiment zeigt eine Methode des molekularen Andockens in Kombination mit einem zellulären thermischen Shift-Assay, um die Interaktion zwischen kleinen Molekülen und Proteinzielen vorherzusagen und zu validieren.
Proteine sind für die menschliche Physiologie von grundlegender Bedeutung, wobei ihre Ziele für die Forschung und Arzneimittelentwicklung von entscheidender Bedeutung sind. Die Identifizierung und Validierung wichtiger Proteinziele ist zu einem integralen Bestandteil der Arzneimittelentwicklung geworden. Molekulares Docking ist ein computergestütztes Werkzeug, das häufig zur Untersuchung der Protein-Liganden-Bindung eingesetzt wird, insbesondere im Zusammenhang mit Wechselwirkungen zwischen Wirkstoffen und Proteinzielen. Für die experimentelle Verifizierung der Bindung und um direkt auf die Bindung des Wirkstoffs und seines Ziels zuzugreifen, wird die Methode des Cellular Thermal Shift Assay (CETSA) verwendet. Diese Studie zielte darauf ab, molekulares Docking mit CETSA zu integrieren, um Wechselwirkungen zwischen Medikamenten und lebenswichtigen Proteinzielen vorherzusagen und zu validieren. Konkret haben wir die Interaktion zwischen Xanthatin und dem Keap1-Protein sowie dessen Bindungsmodus durch molekulare Docking-Analyse vorhergesagt, gefolgt von der Verifizierung der Interaktion mit dem CETSA-Assay. Unsere Ergebnisse zeigten, dass Xanthatin Wasserstoffbrückenbindungen mit spezifischen Aminosäureresten des Keap1-Proteins aufbauen und die Thermostabilität des Keap1-Proteins verringern kann, was darauf hindeutet, dass Xanthatin direkt mit dem Keap1-Protein interagieren kann.
Proteine sind äußerst wichtige Makromoleküle in lebenden Organismen und besitzen eine Vielzahl einzigartiger Funktionen innerhalb von Zellen, wie z. B. die Membranzusammensetzung, die Bildung des Zytoskeletts, die Enzymaktivität, den Transport, die Zellsignalisierung und die Beteiligung an intrazellulären und extrazellulären Mechanismen 1,2,3. Proteine manifestieren ihre biologischen Funktionen in erster Linie durch spezifische Wechselwirkungen mit einer Vielzahl von Molekülen, einschließlich anderer Proteine, Nukleinsäuren, niedermolekularer Liganden und Metallionen
1. Herunterladen der Strukturen von Xanthatin und Keap1
Die molekulare Docking-Analyse sagte die Wechselwirkung zwischen Xanthatin und dem Keap1-Protein voraus. Abbildung 2 zeigt die Bildung von Wasserstoffbrückenbindungen zwischen Xanthatin und den Aminosäureresten Gly-367 und Val-606 des Keap1-Proteins mit einer Wasserstoffbrückenlänge von 2,17 Å für Gly-367 und 2,13 Å für Val-606. Darüber hinaus deutet der berechnete Docking-Score von -5,69 kcal/mol auf eine gute Bindungsaffinität zwischen Xanthatin und Keap1-Protein hin.
Die Identifizierung von Krankheitszielen sowie die Entdeckung und Entwicklung von Medikamenten sind eng miteinander verknüpft27. Durch die präzise Ausrichtung auf spezifische Ziele können Wirkstoffkandidaten entwickelt werden, um bestimmte Krankheiten effektiver zu behandeln und gleichzeitig die mit den Medikamenten verbundenen Nebenwirkungen zu minimieren 28,29. Die am häufigsten verwendeten Ziele sind Proteinziele30.......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (82004031) und dem Sichuan Science and Technology Program (2022NSFSC1303) unterstützt. Wir danken Jiayi Sun vom Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy der Chengdu University of Traditional Chinese Medicine für die Unterstützung bei Western Blot.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.45 μm Polyvinylidene fluoride membrane | Millipore | PR05509 | |
Anhydrous ethanol | Chron chemicals | 64-17-5 | |
Bovine serum albumin | BioFroxx | 4240GR100 | |
Broad-spectrum protease inhibitor mixtures | Boster Biological Technology Co., Ltd | AR1193 | |
DMSO | Boster Biological Technology Co., Ltd | PYG0040 | |
Enhanced chemiluminescence reagent | Beyotime Biotechnology Co., Ltd | P0018S | |
GAPDH antibody | ProteinTech Group Co., Ltd | 10494-1-AP | |
Gel Imaging Instrument | E-BLOT | Touch Imager Pro | |
Gradient PCR instrument | Biometra TADVANCED | Biometra Tadvanced 96SG | |
High-speed freezing centrifuge | Beckman Coulter | Allegra X-30R | |
Horseradish peroxidase-conjugated affiniPure goat antibody | ProteinTech Group Co., Ltd | SA00001-2 | |
Isopropyl alcohol | Chron chemicals | 67-63-0 | |
Keap1 antibody | Zen BioScience Co., Ltd | R26935 | |
Metal bath | Analytik Jena | TSC | |
Methanol | Chron chemicals | 67-56-1 | |
Ncmblot rapid transfer buffer (20×) | NCM Biotech Co., Ltd | WB4600 | |
Omni-Easy OneStep PAGE gel fast preparation kie | Epizyme Biotech Co., Ltd | PG212 | |
Phosphate buffer saline | Boster Biological Technology Co., Ltd | PYG0021 | |
Prestained Color Protein Marker | Biosharp | BL741A | |
Protein Blotting Electrophoresis System | Bio-Rad | MiniPROTEANÒTetra Cell | |
RAW264.7 cell | Beyotime Biotechnology Co., Ltd | C7505 | |
RAW264.7 cell-specific medium | Procell Life Science&Technology Co., Ltd | CM-0597 | |
SDS-PAGE protein loading buffer | Boster Biological Technology Co., Ltd | AR1112-10 | |
SDS-PAGE running buffer powder | Servicebio | G2018 | |
Tris buffered saline powder | Servicebio | G0001 | |
Tween 20 | BioFroxx | 1247ML100 | |
Water bath | Memmert | WNE10 | |
Water purifier | Millipore | Milli- IQ 7005 | |
Xanthatin | ChemConst Biotechnology Co., Ltd | CONST210706 |
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