Die Autoren bedanken sich bei der finanziellen Unterstützung der Deutschen Forschungsgemeinschaft (SFB / TRR57, Q3 und Q2) zu quittieren. Die Autoren danken Mareike Schulz, Pascal Paschenda und Klaudia Warzecha für ihre Hilfe bei der Erstellung der Aufnahmen.

HINWEIS: Alle Experimente wurden von der offiziellen Staatstierpflege und Verwendung Ausschuss (LANUV, Recklinghausen, Deutschland) zugelassen. Die Mäuse werden unter spezifischen pathogenfreien Bedingungen nach den Richtlinien des Bundesverbandes für Versuchstierkunde Verbände (FELASA) untergebracht ist. Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit dem Bundesgesetz über den Schutz der Tiere und der &quot;Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren&quot; (National Institutes of Health Publikation 8. Auflage, 2011) durchgeführt. 1. Die präoperative Vorbereitung HINWEIS: Führen Sie alle Verfahren im Rahmen sauber, aber nicht sterilen Bedingungen. Alle Instrumente und anderen wiederverwendbaren Geräten wie chirurgische Zangen, Scheren und Colibri Aufroller, die verwendet werden, um eine Operation durchzuführen muss vor nach Protokollen, die in strikter Übereinstimmung mit den Richtlinien des Instituts zum Durchführen von Operationen an Tieren sind Gebrauch sterilisiert werden.; Eine detaillierte Liste der erforderlichen Reagenzien, Materialien und Geräte finden Sie in der Liste der spezifische Materialien / Ausrüstung beziehen. <ol><li> Während der gesamten Experimente, halten das Tier auf einer Wärmeplatte bei einer Temperatur von 37 ° C, fest mit einem Anästhesiesystem verbunden ist, und die Abdeckung der Betriebsbereich insgesamt mit fluidundurchlässigen, selbstklebenden Vorhängen. Richtig arrangieren alle Besetzungen und Lösungen, die für den Test vor der Operation eingesetzt werden (Abbildung 1). </li><li> Anesthetize die Maus mit Inhalation von 4 Vol% Isofluran in 100% Sauerstoff bei einer Flussrate von 4 l / min für die Induktion der Anästhesie. Die Tiefe der Betäubung ist ausreichend, wenn die folgenden Kriterien von entscheidender Bedeutung erreicht werden: regelmäßige Spontanatmung, keine Reflex nach der Einstellung von Schmerzreizen zwischen den Zehen, und keine Reaktion auf Schmerzen. </li><li> Rasieren Sie die Bauchfell der Maus mit einem elektrischen Rasierer Fell und die Augen vor dem Austrocknen durch Verwendung von Auge und n schützenose Salbe. </li><li> Platzieren Sie die Maus auf eine 37 ° C erhitzt, Kochplatte, legen Sie die Maus Schnauze im Fluovac Maske des Fluovac Anästhesiesystem, und befestigen Sie die Beine des Tieres mit Streifen von Seide Band. </li><li> Aufrechterhaltung einer Narkose der Maus durch Inhalation von 1,5-3 Vol% Isofluran in 100% Sauerstoff bei einer Flussrate von 1 l / min und induct perioperative Analgesie durch intraperitoneale Injektion von Buprenorphin-Lösung (0,1 mg / kg Körpergewicht in 0,9% iger NaCl-Lösung gelöst) . </li><li> Sterilisieren Sie die rasierte Bauchhaut mit einem Gaze Tupfer, die mit einem Standard-Antiseptikum, bereit, alkoholische Lösung für die präoperative Behandlung der Haut benutzen befeuchtet wird. Hinweis: In unserem Protokolle verwenden wir einen Polyalkohol Haut antisepticum. Dies steht im Einklang mit dem Bundesgesetz über den Schutz der Tiere und der Richtlinien des Bundesverbandes für Versuchstierkunde Verbände. Das Antiseptikum enthält 70% (v / v) 2-Propanol, Butanol-1,3.diol und Spuren Chinolingelb und perfume. </li></ol> 2. Chirurgische Verfahren <ol><li> Öffnen des Bauches mit einer Mittellinie Laparotomie mit einer Länge von etwa 2 cm durch Schneiden der Cutis und Faszie gleichzeitig mit einem 11,5 cm chirurgische Scheren. </li><li> Sezieren das Bindegewebe an der Oberseite des Bauchfells mit der Schere als Treuer. </li><li> Schneiden Sie das Bauchfell entlang der Linea alba, um die Bauchhöhle zu öffnen. </li><li> Vergrößern des Hohlraums durch Einsetzen eines Haltenaht im Brustbein, die Erhöhung der Wendel der Naht, und Befestigen auf der Oberseite des Fluovac Maske. </li><li> Verbreiten Sie den Arbeitsbereich, indem Sie einen Colibri Retraktor in der Bauchhöhle (Abbildung 2). </li><li> Heben Sie die Leber mit Feuchtigkeit versorgt (0,9% NaCl-Lösung) Wattestäbchen, so dass die Bauchseite, es klebt an der Membran und der Hilus ist deutlich sichtbar. </li><li> Expose der Gallengang durch Schwanzbewegung des Darms (Abbildung 3). </li><li> Trennen Sie sorgfältig den Gallengang aus derflankierenden Pfortader und Leberarterie mit Hilfe eines Mikroverzahnung Pinzette (4A). </li><li> Setzen Sie den 5-0 Naht um den Gallengang und sichern Sie es mit zwei chirurgischen Knoten. Wenn das Binden der Knoten erhöht die Zugkraft kontinuierlich wirksam Behinderung ohne Durchtrennen des Gallengangs (4B) zu gewährleisten. </li><li> Hinzufügen eines zweiten Schädel Ligierung in der gleichen Weise, aber nicht den Gallengang dazwischen (4C) zu sezieren. Andernfalls besteht die große Gefahr, dass die Galle Lecks, wenn ein Knoten nicht sicher ist, und die Tiere keine Cholestase, sondern entwickeln eine schwere Bauchfellentzündung. </li><li> Schneiden Sie die Enden der Fäden (4D), senken Sie das Brustbein, und entfernen Sie die Rückziehvorrichtung. </li><li> Spülen Sie die Bauchhöhle mit 0,9% NaCl-Lösung und ersetzen Sie die Bauchorgane an die physiologischen Positionen. </li><li> Schließen Sie die beiden Bauch Schichten (Peritoneum und Cutis und Armaturenbrett) mit separaten Lauf Nähte mit 6-0 Mersilk. </li><li> Schneiden Sie die Ends der Nähte und sterilisieren Sie den Arbeitsbereich mit einem Gaze Tupfer mit Desinfektionslösung angefeuchtet haben. HINWEIS: Bei der Durchführung der Operation zum ersten Mal, führen Sie alle Verfahren unter einem Operationsmikroskop mit einer Vergrößerung von 16X-20X. Dies ermöglicht eine bessere Anerkennung des Gallengangs und unterscheidet sie von der Pfortader und Leberarterie (5 und 6) deutlich. Einige Labors empfehlen die Dissektion der Gallengang zwischen den zwei Ligaturen. Verlassen den Gallengang intakt da potenzielle Undichtigkeiten in einem der Knoten wird in schweren akuten Peritonitis, Aszites und systemischen Endotoxämie führen, wenn der Gallengang präpariert. </li></ol> 3. Postoperative Behandlung und Follow-up <ol><li> Lassen Sie die Maus, um in einem Käfig von einer Infrarotlampe erwärmt erholen, bis die Maus ganz wach und aktiv. </li><li> Danach bewegen Sie die Maus auf eine normale Käfig und bieten freien Zugang zu Wasser und Nahrung. </li><li> AN ach der Operation zu überwachen, die Tiere in regelmäßigen Abständen durchzuführen, Follow-up postoperative Behandlung mit geeigneten Analgesie (zB Buprenorphin-Lösung) im Anschluss an die lokale Empfehlung des internen Tierpflege und verwenden Ausschüsse. HINWEIS: Führen Sie die Schmerztherapie für 3 Tage. Jede abnorme Verhalten kann seltene Komplikationen wie Peritonitis, Sepsis oder inneren Blutungen hinweisen und sollten als menschliche Endpunkt behandelt, um das Experiment zu beenden. </li><li> Die Tiere werden mit freiem Zugang zu Futter und Wasser ad libitum bis zum Ende des Experiments gehalten. Es besteht keine Notwendigkeit für die Blutabnahme, da laufende Fibrogenese von Gelbsucht angegeben. </li><li> Werden die Tiere getötet, das Blut zur Messung von klinisch-chemischen Parametern (AST, ALT, Bilirubin usw.) und die Leber für die histochemische und biochemische Analyse abgerufen gesammelt. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Cholestatischen Leberverletzung ist eine der wichtigsten ursächlichen Faktoren für die Entstehung von Leberfibrose und Leberzirrhose bei Patienten mit chronischer Lebererkrankung. Basierend auf der Tatsache, dass diese Krankheiten zu produzieren unwägbaren Gesundheitskosten, ist es verständlich, dass viele Forscher versuchen, die pathogenen Mechanismen der laufenden Leberfibrose zu verstehen. Daher experimentellen Modellen generiert wurden, die verschiedene Aspekte der komplexen Mechanismen, die zu Leber Entzündung, Fibrose und Zirrhose 1 führen zu imitieren. Chirurgische BDL ist eine der am weitesten verbreiteten experimentellen Modellen, die verwendet wird, um obstruktive cholestatischen Verletzungen bei Mäusen und Ratten 4,23,24 induzieren. In den meisten Protokollen werden die Tiere anästhesiert und eine Mittelteil-Laparotomie durchgeführt. Anschließend wird der Gallengang aus der Bauchhöhle freigelegt und unter Verwendung von chirurgischen Zwirn doppelt ligiert. Als eine Folge werden die Mäuse und Ratten, die diese Operation d empfangenenevelop stark fibrotischen Reaktion, die auf den ersten stammen aus den Bereichen periportalen 25. Im Laufe der Jahre verschiedene chirurgische Techniken und Modifikationen beschrieben worden. Besondere Verfahren ermöglichen sogar Wieder oder reanastomosis nach BDL 23. Andere Techniken basieren auf Teil BDL was zu deutlich weniger Nekrosenbildung und damit Hepatozytenproliferation 24 basiert. Teil BDL in Kombination mit anschließender Entfernung der Gallenblase (Cholezystektomie) die Bildung verhindert von Cholezystitis auch eine ausgezeichnete experimentellen Modell für Akut Cholestase. Es wurde vorgeschlagen, ein Modell, das näher an die Situation beim Menschen ist 24 sein. Und in der Tat, während der Einrichtung von diesem Modell, wurde bereits gezeigt, dass es reproduzierbar verursacht Cholestase mit nur minimalen histologischen Gewebeverletzung und nicht zu chronischer Cholestase 25 fortfahren. Daher wurde vorgeschlagen, dass dieses Modell eignet sich für die Untersuchung late Auswirkungen rückgängig Cholestase 24. Noch ausgefeiltere Methoden basieren auf der Mikrochirurgie und erlauben eine schnelle und reproduzierbare Weise, cholestatische Leberschäden nur in ausgewählten Teilen der Leber 26 zuzufügen. Obwohl diese anspruchsvolle Änderungen von der ursprünglichen BDL-Protokoll haben sich als sehr hilfreich bei der Untersuchung spezifischer Fragestellungen, vielen Laboren weltweit im Grunde zielen auf die Verwendung des BDL-Modell als gut reproduzierbare und zuverlässige Modell für cholestatische Leberfibrose. Allerdings können viele Komplikationen, die auftreten könnten, die Reproduzierbarkeit und Zuverlässigkeit der von diesem Modell erhalten, wenn technische Ungenauigkeiten nicht vermeiden Ergebnisse wesentlich verändern. Zum Beispiel, Blutungskomplikationen zu Verletzungen der Beilagen des Gallengangs Blutgefäße stehen (siehe Figuren 3-4) kann während oder rasch nach der Operation auftreten. Eine Überdosierung von Anästhesie mit anschließender Kardiodepression oder respiratory Ausfall auch vermeidbare Komplikationen des Verfahrens. Schwere Infektionen, die von Peritonitis einer Sepsis kann während der gesamten Zeit des Experiments auftreten, wenn die Fäden nicht genau durchgeführt und Gallen Lecks in die Bauchhöhle. Unfallverletzungen in den Darm während der Operation könnte auch zu Bauchfellentzündung führen. Daher ist es offensichtlich, dass standardisierte Protokolle, die in Übereinstimmung mit der strengen Handhabung Richtlinien sind dringend erforderlich. Diese Bestimmung wurde kürzlich auch in den Ländern der Europäischen Union, die neuen Tierschutzvorschriften im Jahr 2013 1 umgesetzt gefordert. Die jeweiligen Anforderungen, die mit dieser Regelung verbunden sind, sind nicht neu und wurden bereits im Jahr 1959 vorgeschlagen, als Russell und Burch schlug eine ethische Rahmen für die Durchführung wissenschaftlicher Experimente mit Tieren, die vor allem auf eine Ersetzung, Verfeinerung und Verringerung (3R) Prinzip 27 basiert. Wenn nach dem outlined-Protokoll gibt es nur wenige Komplikationen, die durch technische Ungenauigkeiten auftreten können. Drei spezifische Fragen könnten in eher niedrigen Frequenz auftreten. Wie bei allen chirurgischen Eingriffen, die Überdosis des Narkosemittels ist eine potentielle Gefahrenquelle für die Tiere vor allem in Kombination mit Hypothermie. Wenn während der Operation kardiovaskuläre Komplikationen auftreten, sollte die Zufuhr von Narkosemittel sofort gestoppt werden und sollte der Bediener versuchen, soviel wie möglich Sauerstoff an der Maus bereitzustellen. Dies kann mit Hilfe eines kleinen Kunststoffspritze, die mit Luft gefüllt ist und in den Mund des Tieres beeinträchtigt gepumpten erfolgen. Alternativ ist die Verwendung eines kleinen Peleusball zur Belüftung des betroffenen Tier oft hilfreich für die Revitalisierung. Probleme bei der Wundheilung Nach der BDL Operation kann Mäuse eigene Halsnähte oder die anderer Tiere zu beißen. Wenn dies auftritt, sollte die jeweilige Mäusen getrennt werdenKäfig. Tiere, die mit offenen Wunden sollten narkotisiert, das Gebiet um die Wunde leicht mit einer Standard antiseptische sterilisiert und die Wunde wieder zusammengenäht werden. Während der nächsten 3 Tage, sollte die Wunde dieser Tiere regelmäßig überprüft werden (zwei bis drei Mal am Tag). Dehnungen des Bauches oder Bildung von Aszites sind indikativ für bakterielle Infektionen. Diese könnten durch nicht steriles Arbeiten während der Operation auftreten können. Alle Arten von Infektionen sollte ausnahmslos als humane Endpunkt behandelt und die betroffenen Tiere geopfert werden sollte. Wir stellten ein einfach zu Protokoll, das die Leistung des BDL in Mäusen, die einfach zu implementieren ist und erinnert nur geringe Tiersterblichkeit in Verbindung mit einer hohen Reproduzierbarkeit ermöglicht folgen. Alle chirurgischen Protokolle können schnell von erfahrenen Wissenschaftlern aufgegriffen werden. Während der gesamten Experimente wurden die Tiere auf eine Wärmeplatte bei 37 ° C gehalten und permanent verbundenenauf ein Anästhesiesystem minimiert Schmerzen und Leiden. Bei der Operation wird der Bauch mit einem Mittellinie Laparotomie und den Gallengang doppelt ligiert, ohne sich damit auseinandersetzen eröffnet. Die repräsentativen Ergebnisse, die hier diskutiert wurden, zeigen, daß die phänotypischen Veränderungen in Bezug auf Leber Morphologie (Entzündung, Fibrose, Zirrhose) sind sehr gut reproduzierbar und erlauben, verschiedene Aspekte der Fibrogenese untersuchen (z. B. die Einleitung, Entzündung, Progression, Endstadium der Erkrankung) in festgelegten Zeitpunkten. Wir hoffen, dass die Zusammenfassung unserer Protokoll wird dazu beitragen, die Lernkurve, die notwendig ist, um erfolgreich zu etablieren diese Fibrose-Modell in anderen Labors und auf zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse an verschiedenen Standorten garantieren zu verkürzen. Dabei denken wir, dass die vorgestellte Protokoll unterstützt das 3R-Prinzip, die von Russell und Burch 1959 angeblich und stellt die Grundlage der neuen Tierschutzvorschriften, die derzeit in vielen Ländern wi umgesetzt werdendünne europäischen Rahmen.

Leberfibrose ist als die übermäßige Produktion und Akkumulation von extrazellulärer Matrix (ECM), die aus einem komplexen Netzwerk von Wechselwirkungen von Matrix-produzierenden Lebersternzellen und einer Vielzahl von Leber-residenten und infiltrierenden Zellen Blutzellen 1,2 Ursprung definiert. Obwohl Leberfibrose kann durch eine Vielzahl von unterschiedlichen Stimuli verursacht werden die zugrunde liegenden molekularen Mechanismen Fibrose sind in der Regel sehr ähnlich. Nach Leberschäden wird ein hoch orchestriert Programm der molekularen und zellulären Veränderungen eingeleitet. In diesem Programm wird eine enge Verzahnung von Entzündungssignalen, Monozyten / Makrophagen und hepatischen Sternzellen stattfindet, die am Ende Ergebnisse in Sternzellaktivierung und Transdifferenzierung zu Myofibroblasten, ECM Ablagerung und in Folge anatomische und funktionelle Veränderungen der Lebergewebeintegrität 3. Die Aktivierung von hepatischen Sternzellen sich besonders durch inflammatorische Signale und Interaktionen mit Leber angetriebenWohn Makrophagen (dh den Kupffer-Zellen). Pathogen associated molecular patterns werden von spezialisierten pattern recognition receptors wie die Toll-like Rezeptoren erkannt, die, wenn sie aktiviert Signal durch ein komplexes Netzwerk von unterschiedlichen Signalwege, die die Expression und Sekretion einer Vielzahl von entzündlichen Zytokinen und Chemokinen, die den Entzündungsprozess 3 fahren auslösen. Die entzündliche Reaktion, und das gebildete Leber Insult ist nur vorübergehend, wenn der krankheits Faktor beseitigt. Im Gegensatz dazu, wenn die Verletzung auftritt, entwickelt sich eine chronische Entzündung in der Leber und die Expression und Akkumulation von ECM Massen in den Vordergrund, was zu fortschreitenden Ersatz von Lebergewebe von Narbengewebebildung. Da Leberfibrose bei Menschen ist ein weltweites klinisches Problem haben mehrere experimentelle Nagetiermodellen von akuten und chronischen Leberversagen in den letzten Jahrzehnten etabliert. In den muRine System sind beispielsweise gemeinsame Modelle die Verabreichung einer Vielzahl von verschiedenen Lebergifte, die Ligation des Choledochus, Induktion von Autoimmunleberverletzungen und die gezielte Einführung von Gendefekten oder umgekehrt die Überexpression von Transgenen, die kritisch auswirken Signalwege in der Pathogenese von Leberfibrose 4 beteiligt. Ligatur des Gallengangs in Nagetieren wurde als ein experimentelles Verfahren in der Forschung seit vielen Jahren 5-8 durchgeführt. Eine erste hoch reproduzierbare Protokoll für längere Gallengangsligatur (BDL) in Nagetieren wurde jetzt schon vor mehr als drei Jahrzehnten 9 dargestellt. In diesem Protokoll sowohl Kanülen / Behinderung und Ligation induziert eine hohe Ausbeute an Zirrhose bei Ratten mit morphologischen Veränderungen, die denen in der menschlichen biliäre Zirrhose 9 beobachtet wurden. Die jeweilige Protokoll ist einfach, das chirurgische Verfahren ist relativ schnell anwendbareUnd die Überlebensraten der Tiere sind hoch: mehr als 95%. Im klassischen Ratte Kanülierung / Obstruktion Protokoll wird ein kurzer Einschnitt von 2 cm direkt unterhalb des Schwertfortsatzes gefertigt. Danach wird eine Kanüle in den proximalen Abschnitt des Gallenganges eingeführt und in seiner Position mit Seidennähten fixiert. In einem nächsten Schritt wird der distale Teil der Kanüle mit 3 Knoten behindert, in der rechten unteren Quadranten 9 durch das untere Ende des Mittelschnitt gelegt und begraben subkutan. Am Ende wird der Abdomen geschlossen, und die Tiere konnten sich erholen. In der Ligation werden die Ratten, um eine zweifache Bindung des Choledochus entweder mit oder ohne Präparation des Gallengangs zwischen den Ligaturen 9 unterworfen. Dieses experimentelle Modell wird gut angenommen und weltweit in Hunderten von Labors verwendet, um Leber Cholestase und Fibrose induzieren. Es induziert intrahepatischen Gallen Proliferation, myofibroblastischer differentiation von Portal Fibroblasten Umgebung proliferierenden biliäre Epithelzellen, was zu einer in hohem Maße reproduzierbar, massiven Expression und Abscheidung von ECM 10,11. Daher wird die Anwendung dieses Modells bei Ratten und Mäusen als unter Wissenschaftlern, die die Pathogenese der Leberentzündung und Fibrose verstehen wollen beliebt. In unserem Labor haben wir ausgiebig dieses Protokoll in der Vergangenheit an der Ratte eine Reihe von Experimenten mit dem Ziel, spezielle molekulare und zelluläre Aspekte der Leberfibrose zu untersuchen und neuartige Konzepte und antifibrotische Wirkstoffe 12-15 testen. Kürzlich, passten wir diese Methode auf die murinen System und gefunden, daß die Gallengangsligatur Operation ist auch ein attraktives Mittel, um zeitabhängige Fibrose mit geringer Variation und Mortalität bei Mäusen 16-18 herzustellen. Aufgrund der geringeren Größe der Tiere jedoch einige wichtige Änderungen im Hinblick auf die Anästhesie, OP-intervention und Nachbehandlung Beobachtung sind notwendig, um zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse in diesem Modell zu erhalten. Die vollständige Anpassung ist in dem folgenden Protokoll und im zugehörigen Videodokumentation zusammengefasst.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1185">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:263px;">Company</td>
			<td style="width:219px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:293px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:263px;">Forene Abbott</td>
			<td style="width:219px;">B 506</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Shaver Favorita II</td>
			<td style="width:263px;">Aeskulap</td>
			<td style="width:219px;">GT104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Cutter head</td>
			<td style="width:263px;">Aeskulap</td>
			<td style="width:219px;">GT730</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Bepanthen eye and nose ointment</td>
			<td style="width:263px;">Bayer Vital GmbH</td>
			<td style="width:219px;">6029009.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Warming plate and controller</td>
			<td style="width:263px;">Labotect</td>
			<td style="width:219px;">HP 062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Fluovac anesthesia system</td>
			<td style="width:263px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:219px;">34-1030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">ISOFLO (Isoflurane Vapor) vaporiser</td>
			<td style="width:263px;">Eickemeyer</td>
			<td style="width:219px;">4802885</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Scotch Tape</td>
			<td style="width:263px;">commercially available</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Tissue paper</td>
			<td style="width:263px;">commercially available</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Durapore silk tape</td>
			<td style="width:263px;">3M</td>
			<td style="width:219px;">1538-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Cotton Gauze swabs</td>
			<td style="width:263px;">Fuhrmann GmbH</td>
			<td style="width:219px;">32014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Poly-Alcohol Haut&#8230;farblos Antisepticum</td>
			<td style="width:263px;">Antiseptica GmbH</td>
			<td style="width:219px;">72PAH200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Raucodrape OR adhesive drapes</td>
			<td style="width:263px;">Lohmann &#38; Rauscher GmbH</td>
			<td style="width:219px;">33013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Scissor</td>
			<td style="width:263px;">Fine Science Tools Inc.</td>
			<td style="width:219px;">14074-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Graefe forceps straight</td>
			<td style="width:263px;">Fine Science Tools Inc.</td>
			<td style="width:219px;">11050-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">6-0 Mersilk suture</td>
			<td style="width:263px;">Ethicon</td>
			<td style="width:219px;">K889H</td>
			<td>Silk, non-absorbable/Abdominal closure</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Needle holder Mathieu</td>
			<td style="width:263px;">Fine Science Tools Inc.</td>
			<td style="width:219px;">12010-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Colibri retractor</td>
			<td style="width:263px;">Fine Science Tools Inc.</td>
			<td style="width:219px;">17000-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Cotton swabs</td>
			<td style="width:263px;">Noba Verbandmittel</td>
			<td style="width:219px;">974202</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Cotton swabs</td>
			<td style="width:263px;">Heinz Herenz Medizinalbedarf GmbH</td>
			<td style="width:219px;">1032238</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">25mL beaker</td>
			<td style="width:263px;">Schott Duran</td>
			<td style="width:219px;">50-1150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Isotonic (0.9%) NaCl solution</td>
			<td style="width:263px;">DeltaSelect GmbH</td>
			<td style="width:219px;">PZN 00765145</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Micro-serrations forceps Moria MC31</td>
			<td style="width:263px;">Fine Science Tools Inc.</td>
			<td style="width:219px;">11370-31</td>
			<td>Bile duct separation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">5-0 Mersilene suture</td>
			<td style="width:263px;">Ethicon</td>
			<td style="width:219px;">EH6731H</td>
			<td>Polyester, non-absorbable/Bile duct ligation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">5mL syringe</td>
			<td style="width:263px;">BD Discardit II</td>
			<td style="width:219px;">300296</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">1mL syringe</td>
			<td style="width:263px;">BD Plastipak</td>
			<td style="width:219px;">300013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Sterican needle 26 G x 1</td>
			<td style="width:263px;">B. Braun</td>
			<td style="width:219px;">4657683</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Buprenorphine</td>
			<td style="width:263px;">Essex Pharma</td>
			<td style="width:219px;">997.00.00</td>
			<td>Analgeticum, 0.1 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:411px;">Infrared lamp</td>
			<td style="width:263px;">Petra Electric</td>
			<td style="width:219px;">IR 11</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

bile duct ligation in mice: induction of inflammatory liver injury and fibrosis by obstructive cholestasis

Bei den meisten Wirbeltieren produziert die Leber Galle, die notwendig ist, um absorbiert Fette zu emulgieren und erlauben die Verdauung der Lipide im Dünndarm sowie Bilirubin und andere Stoffwechselprodukte ausscheiden. In der Leber der Versuchs Obstruktion der extrahepatischen Gallenwege eine komplexe Kaskade von Ereignissen, die zu pathologischen Cholestase und Entzündung, was zu einer starken fibrotischen Reaktion der periportalen Felder Ursprung führt. Daher chirurgische Ligation der Gallengang hat sich die am häufigsten verwendete Modell zur obstruktiven Cholestase Verletzungen bei Nagetieren zu induzieren und die molekularen und zellulären Ereignisse, die diese pathophysiologischen Mechanismen, die durch unsachgemäße Gallenfluss induziert zugrunde liegen, zu studieren. In den letzten Jahren wurden verschiedene Operationstechniken beschrieben worden, dass entweder die Möglichkeit, Wiederverbindung oder reanastomosis nach Gallengang-Ligation (BDL), zB Teil BDL oder andere mikrochirurgische Verfahren für bestimmte Forschungsfragen. Ist das am häufigsten verwendete Modell jedoch die komplette Obstruktion der Gallengang, die einen starken fibrotischen Reaktion nach 21 bis 28 Tage induziert. Die Sterblichkeitsrate ist hoch wegen infektiöser Komplikationen oder technische Ungenauigkeiten enthalten. Hier stellen wir eine detaillierte Operationsverfahren zur BDL Modell bei Mäusen, die eine hoch reproduzierbare fibrotische Reaktion in Übereinstimmung mit dem 3R-Regel für den Tierschutz von Russel und Burch 1959 postuliert induzieren.

In einem typischen Experiment wurde BDL in 40 männliche C57BL / 6-Wildtyp-Mäusen Gewichtung etwa 18-20 Gramm durchgeführt. Dieses Experiment wurde durchgeführt, um Leberfibrose in der Initiierungsphase (3 und 7 Tage), während der Progression (10, 14 und 20 Tage) untersucht, und bei Langzeit (30 und 60 Tage) 16. In diesem Modell hat persinusoidal Fibrose schon am Tag 10 nach der Operation entwickelt, während periportal Fibrose, die dauerhaft bis zum Versuchsende erhöht wurde vollständig nach 20 Tagen entwickelt. In dem genannten Experiment alle Tiere, die eine einfache Scheinarbeit erhielten, überlebten, und nur zwei der 40 Mäuse (5%), die BDL erhielten, entwickelten ein schlechter Allgemeinzustand und wurden daher vorzeitig vor dem geplanten Endpunkt des Experiments getötet. Die Aktivität der scheinoperierten Tieren war ausnahmslos bereits Normal einen Tag nach Bauchschnitt, während die meisten Tiere nach BDL ausgesetzt zeigte verminderte Aktivität während der ersten drei Tage. Jaundiced Haut war nach der Einstellung des BDL 16 bereits sichtbar gewesen, in allen BDL Tiere ein oder zwei Tage. Die Werte der beiden Alanin-Aminotransferase (ALT) und Aspartat-Transaminase (AST), die etablierten Serum-Marker einer Leberschädigung darstellen rapide zugenommen und erreichte während Tag 7 und Tag 20 nach BDL (Tabelle 1). Danach ALT und AST nahm stetig ab, bis Tag 30 und blieb bis 60 Tage nach der Operation stabil. Im Einklang mit der cholestatischen Verletzungen waren die Serumkonzentrationen von Gesamt-Bilirubin stetig erhöht und erreichte ein Plateau nach 7 Tagen 16. Ähnliche zeitliche Verlauf der Serum-ALT und AST-Aktivitäten wurden auch für Ratten, BDL unterwiesen. In einer neueren Studie wurde demonstriert, dass die Serumspiegel von AST und ALT bis zu 5 oder 10-fache der normalen nach dem BDL Operation erhöht bei der ersten Woche und nach zwei Wochen verringert 19. Typischerweise werden die Lebern der scheinoperierten Tieren sehen immer noch smooth am Ende des Experiments, während die Lebern von Tieren, die BDL übermittelt zeigen baulichen Veränderungen, die vor allem durch die Bildung von Ödemen und fibrotische Knötchen auf der Oberfläche des entsprechenden Leber und Hydrops der Gallenblase, die mit großen Mengen von gefüllten auszeichnen Galle (Abbildung 7). Die charakteristischen morphologischen Veränderungen der Leber, die durch das BDL Operation induziert werden, sind ebenfalls nachweisbar histologischen Standardanalyse (Abbildung 8). In der gleichen Reihe von Experimenten, die Entwicklung von Leberfibrose wurde halbquantitativ beurteilt basierend auf Leberhistologie von einem Blind Pathologen unter Verwendung eines Punktesystems, in dem periportal Fibrose von 0-4 und perisinusoidale Fibrose von 0-2 aufgeführt bewertet, was eine maximale Wert, der der Zirrhose 6. war erwartungsgemäß der Mittelwert-Fibrose-Score in der Gruppe der scheinoperierten Tieren war 0,00 ± 0,00. Im Gegensatz dazu wird bei der Gruppe von Tieren tHut erhalten BDL stieg die Punktzahl stetig bis Tag 60 auf einen Wert von 4,83 ± 0,17. Die maximal 3 für periportal Fibrose wurde am Tag 20 erreicht Bei allen Tieren untersucht, war perisinusoidale Fibrose während den ersten 10 Tagen des Versuchs fehlt und war zunächst bemerkbar nach zwei Wochen. Danach stetig es bis zum Ende des Experiments auf Werte von 1,8 ± 0,17 (Tabelle 1). Auch in mehreren anderen unabhängigen Tierversuchen, die durchgeführt wurden, wurde beobachtet, dass die Bildung von Fibrose war in hohem Maße reproduzierbar zeigt zeitabhängige Zunahme der intrahepatischen Kollagenexpression und Deposition als Folge der laufenden Fibrogenese (Abbildung 9). In ähnlicher Weise ist das Verfahren der kontinuierlichen Fibrogenese in erhöhte Expression von α-Aktin der glatten Muskulatur (α-SMA), das eine Markierung von Fibroblasten dar bemerkbar, dh aktivierten hepatischen Sternzellen und Portal Myofibroblastenund Leber Hydroxyprolin, eine Aminosäure, reichlich in Kollagen gefunden Matrizen 18 (Abbildung 9). Darüber hinaus wird die Expression von Vimentin, das zunehmende Mengen von Myofibroblasten oder Fibroblasten gibt an, nach dem Abbinden des BDL Operation 20 erhöht. Die Gleichzeitigkeit der Entzündung in Leber verletzt werden durch erhöhte Expression von Lipocalin 2 (LCN2), die stark bei akuten und chronischen Leberschädigung induziert wird und entwickelt sich leberschützende Effekte bei akuter Leberschäden 21,22 wider. Entzündungszellen, die die Leber von Tieren, die BDL übermittelt infiltrieren kann durch spezifische Färbung mit einem Antikörper, der spezifisch für CD45 (Figur 10) festgestellt werden. Diese Zelloberflächenmarker, der auch als Protein-Tyrosinphosphatase (Proteintyrosinphosphatase, Rezeptortyp) bekannt ist speziell in allen differenzierten hämatopoetischen Zellen außer Erythrozyten und Plasmazellen exprimiert. <table fo:keep-together.within-page = &quot;always&quot; border = &quot;0&quot; cellpadding = &quot;0&quot; cellspacing = &quot;0&quot;&gt; <tbody><tr><td rowspan="2"> Zeit nach Gallengang-Ligation (in Tagen) </td><td> Gesamtbilirubin </td><td rowspan="2"> AST (U / L) </td><td rowspan="2"> ALT (U / L) </td><td rowspan="2"> Portal Fibrose </td><td rowspan="2"> Perisinusoidale Fibrose </td><td rowspan="2"> Gesamtpunktzahl </td></tr><tr><td> (Mg / dl) </td></tr><tr><td> 0 (n = 3) </td><td> 0,17 ± 0,06 </td><td> 192,67 ± 30,50 </td><td> 50,33 ± 6,03 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td></tr><tr><td> 3 (n = 5) </td><td> 6,85 ± 2,21 </td><td> 1159,25 ± 319,27 </td><td> 566,50 ± 335,25 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td></tr><tr><td> 7 (n = 5) </td> &lt;td&gt; 14,38 ± 2,14 ± </td><td> 976,60 ± 477,16 </td><td> 448,20 ± 259,47 </td><td> 0,60 ± 0,25 </td><td> 0,0 ± 0,0 </td><td> 0,60 ± 0,25 </td></tr><tr><td> 10 (n = 5) </td><td> 15,92 ± 2,60 </td><td> 1916,60 ± 868,25 </td><td> 560,40 ± 80,88 </td><td> 1,40 ± 0,25 </td><td> 0,25 ± 0,25 </td><td> 1,67 ± 0,25 </td></tr><tr><td> 14 (n = 5) </td><td> 17,90 ± 3,84 </td><td> 1088,60 ± 276,32 </td><td> 505,00 ± 96,15 ± </td><td> 2,4 ± 0,25 </td><td> 1,0 ± 0,0 </td><td> 3,40 ± 0,24 </td></tr><tr><td> 20 (n = 4) </td><td> 18,00 ± 2,12 </td><td> 1072,67 ± 364,27 </td><td> 404,00 ± 195,48 </td><td> 3,0 ± 0,0 </td><td> 1,0 ± 0,0 </td><td> 4,0 ± 0,0 </td></tr><tr><td> 30 (n = 5) </td><td> 16,04 ± 4,79 </td><td> 446,40 ± 169,75 </td><td> 260,20 ± 126,97 </td><td> 2,8 ±; 0.2 </td><td> 1,4 ± 0,25 </td><td> 4,20 ± 0,20 </td></tr><tr><td> 60 (n = 6) </td><td> 16,02 ± 1,19 </td><td> 484,67 ± 117,79 </td><td> 257,17 ± 50,97 </td><td> 3,0 ± 0,0 </td><td> 1,8 ± 0,17 </td><td> 4,83 ± 0,17 </td></tr></tbody></table> Abkürzungen verwendet: ALT Alanin-Aminotransferase; AST, Aspartat-Aminotransferase. Tabelle 1: Fibrosis Bonitur in einem repräsentativen Experiment Die Daten dieser Tabelle wurde aus einer Studie, in der Leberfibrose wurde durch Gallengang-Ligation in C57BL / 6-Mäusen 16 induzierte reproduziert.. In dieser Studie wurde die Sterblichkeit nach der Operation war BDL 5% (2 von 40 Tieren wurde vorzeitig geopfert, weil arme Tier Bedingungen entwickelt). <img alt="Figur 1" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig1highres.jpg" /> Abbildung 1: Versuchsaufbau zur Durchführung eines GallenKanalligation. Das Tier wird auf einer Wärmeplatte bei einer Temperatur von 37 ° C gehalten und der Betriebsbereich ist insgesamt mit fluidundurchlässigen, selbstklebende Vorhänge abgedeckt. Während der gesamten Operation wird das Tier ständig mit einem Narkosesystem angeschlossen sind. Alle Besetzungen und Lösungen (Analgetika, Anästhetika, antiseptischen Lösung, 0,9% NaCl) sind übersichtlich angeordnet. <img alt="Abbildung 2" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig2highres.jpg" /> Fig. 2: Herstellung des OP-Bereich Vor Eröffnung der Bauchhöhle sollte die Bauchhaut mit einem elektrischen Rasierer rasiert und Pelz mit einer antiseptischen Gazetupfer desinfizieren. Der OP-Bereich wird dann mit fluidundurchlässigen, selbstklebende Vorhänge abgedeckt. Der Bauch ist mit einer Mittellinie Laparotomie (~ 2 cm in der Länge) geöffnet. Der Hohlraum wird durch Einfügen eines Halte Naht im Brustbein und in den Arbeitsbereich von verbreiten vergrößertEinfügen eines Colibri Aufroller so ungehindert experimentieren während der Operation. <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig3highres.jpg" /> Abbildung 3: Die Exposition des Gallengangs. (A) Für die Durchführung der Gallengang-Ligation, die ventrale Seite der Leber wird angehoben, so dass er an der Membran haften und die hepatische Hilus deutlich sichtbar wird. (B) Um eine bessere setzen den Gallengang, wird der Darm mit kaudal verschoben eine befeuchtete Wattestäbchen. Der Gallengang ist mit einem Pfeil markiert. <img alt="4" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig4highres.jpg" /> Abbildung 4: Ligieren des Gallengangs. (A) In einem ersten Schritt wird der Gallengang wird vorsichtig von der flankierenden Pfortader und Leberarterie mit Hilfe eines Mikroverzahnung Pinzette abgetrennt. (B) Anschließend wird eine Naht um platziertder Gallengang und mit einem chirurgischen Knoten befestigt ist. (C) Danach wird eine zweite Naht in der Nähe des ersten Nahtfadens angeordnet und um den Gallengang verknotet. (D) Die Naht verkürzt wird, der Hohlraum mit 0,9% iger NaCl-Lösung gespült und alle Organe, ihre physiologische Position ersetzt. <img alt="Abbildung 5" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig5highres.jpg" /> Fig. 5:. Präzise Darstellung Verknoten, um die Platzierung der Nähte und die Einstellung der beiden Knoten, die den Gallenfluss zu vermeiden zu dokumentieren, wurde das gleiche Verfahren in Figur 4 skizziert unter einem binokularen dokumentiert (A) Confinement des Gallengangs mit dem ersten Naht. (B) Knotting der ersten Naht. (C) Confinement des Gallengangs mit der zweiten Naht. (D) Knotting der zweiten Naht. (E) Doppelklicken ligiert Galle ddukt nach dem Kürzen von Über Nähte. (E &#39;) Dieses Panel zeigt eine Skizze der (E). Die Positionen der rechten (RL), linken (LL) und Mittellinie (ml) Lappen der Leber sowie des Gallenganges, des Magens und Zwölffingerdarm werden mit den Buchstaben. In der Skizze der Gallengang wird doppelt durch zwei Nähte ligiert. <img alt="Figur 6" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig6highres.jpg" width="400" /> Abb. 6: Anatomie der Gallengang, Pfortader und Leberarterie bei Mäusen Für eine bessere anatomische Lage der Gallengang werden die Pfortader und Leberarterie als Schema dargestellt. Markiert sind auch die Positionen der rechten (RL), links (ll) Medianwert (ml) und der Nucleus caudatus (cl) Leberlappen. <img alt="7" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig7highres.jpg" /> Abbildung 7: Vertreter appearance von Lebern von 2 Wochen nach Scheinoperation und BDL. C57BL / 6-Mäuse wurden einer Operation oder BDL Operation sham. Nach zwei Wochen wurde die Bauchhöhle geöffnet. Während die Lebern der scheinoperierten Tiere zeigten keine Anzeichen von Fibrose, die Lebern von Tieren, die Ligation der Gallengang hatte eine unregelmäßige Oberflächenstruktur mit der Bildung von Ödemen und fibrotische Knötchen auf der Oberfläche des entsprechenden Lebern. <img alt="8" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig8highres.jpg" /> Abb. 8: Hämatoxylin und Eosin-Färbung Leberschnitte wurden aus C57BL / 6-Wildtyp-Tiere, die scheinoperierten waren (A) oder empfangen BDL drei Wochen (B) vorbereitet. Die Schnitte wurden mit Hämatoxylin und Eosin nach Standardverfahren gefärbt. Bitte beachten Sie die typischen Veränderungen im BDL Leber, die Entzündungszeichen (infiltrierenden Zellen), Parenchym (hepato enthaltencyte) Nekrose, und die Vermehrung von Gallengänge. Der Balken in jeder Figur Panel repräsentiert 50 um. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52438/52438fig8large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> <img alt="9" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig9highres.jpg" /> Abbildung 9: Die histologischen und biochemischen Anzeigen für Leberfibrose. (A) Leberschnitte wurden von Tieren, die Schein-Operation oder BDL für 2 Wochen erhalten vorbereitet und mit Sirius Red (oben, Kollagenfasern in rot) gefärbt oder für die Expression von α-smooth muscle actin (α-SMA) (unten analysiert , α-SMA-positiven Zellen in braun) durch Immunhistochemie. Der Balken in jeder Figur Panel stellt 100 um. (B) Proteinextrakte aus Lebern wurden einer Western-Blot unterzogen und für expre analysiertssion von Kollagen Typ I, α-SMA und Vimentin, die gut etablierten Markern der Leberfibrose sind. Die Expression der Lipocalin-2 (LCN2) die entzündliche Reaktion, die mit den laufenden Fibrogenese zugeordnet ist. In dieser Analyse wurde gleich Eiweißbelastung durch Sondieren der Blots mit einem für β-Actin-Antikörper nachgewiesen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52438/52438fig9large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> <img alt="10" src="/files/ftp_upload/52438/52438fig10highres.jpg" /> Fig. 10: Immunologische Färbung von infiltrierenden Entzündungszellen serielle Leberschnitte wurden aus einer Leber eines Tieres, das Gallengangsligatur für 3 Wochen erhielt, hergestellt. Die Schnitte wurden mit Hämatoxylin und Eosin (A) oder mit einem Antikörper, der spezifisch für CD45 (B) angefärbt. Bitte beachte,die hohe Zahl der CD45-positiven Zellen rund um die Gallengänge. Diese massiven Infiltration, die Entzündungen zeigen sich nicht in Leberschnitten von scheinoperierten Tieren sichtbar (nicht dargestellt). Der Balken in jeder Figur Panel stellt 500 &amp; mgr; m. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52438/52438fig10large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a>

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Bile Duct Ligation in Mice: Induction of Inflammatory Liver Injury and Fibrosis by Obstructive Cholestasis

Disruption of bile flow results in severe inflammatory cholestatic liver injury with a characteristic time-dependent sequence of morphological alterations. Here we present a protocol for the surgical ligation of the common bile duct in mice that allows to induce a strong fibrotic response after 21 to 28 days.

Gallengang-Ligation in Mice: Induktion von Entzündungsleber-Verletzung und Fibrose von obstruktiver Cholestase

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

51.4K Aufrufe.  RWTH Aachen University. Disruption of bile flow results in severe inflammatory cholestatic liver injury with a characteristic time-dependent sequence of morphological alterations. Here we present a protocol for the surgical ligation of the common bile duct in mice that allows to induce a strong fibrotic response after 21 to 28 days.

Serie: Bile Duct Ligation in Mice: Induction of Inflammatory Liver Injury and Fibrosis by Obstructive Cholestasis

3-Dimensional Resin Casting and Imaging of Mouse Portal Vein or Intrahepatic Bile Duct System

In organs, the correct architecture of vascular and ductal structures is indispensable for proper physiological function, and the formation and maintenance of these structures is a highly regulated process. The analysis of these complex, 3-dimensional structures has greatly depended on either 2-dimensional examination in section or on dye injection studies. These techniques, however, are not able to provide a complete and quantifiable representation of the ductal or vascular structures they are intended to elucidate. Alternatively, the nature of 3-dimensional plastic resin casts generates a permanent snapshot of the system and is a novel and widely useful technique for visualizing and quantifying 3-dimensional structures and networks.
A crucial advantage of the resin casting system is the ability to determine the intact and connected, or communicating, structure of a blood vessel or duct. The structure of vascular and ductal networks are crucial for organ function, and this technique has the potential to aid study of vascular and ductal networks in several ways. Resin casting may be used to analyze normal morphology and functional architecture of a luminal structure, identify developmental morphogenetic changes, and uncover morphological differences in tissue architecture between normal and disease states. Previous work has utilized resin casting to study, for example, architectural and functional defects within the mouse intrahepatic bile duct system that were not reflected in 2-dimensional analysis of the structure1,2, alterations in brain vasculature of a Alzheimer's disease mouse model3, portal vein abnormalities in portal hypertensive and cirrhotic mice4, developmental steps in rat lymphatic maturation between immature and adult lungs5, immediate microvascular changes in the rat liver, pancreas, and kidney in response in to chemical injury6.
Here we present a method of generating a 3-dimensional resin cast of a mouse vascular or ductal network, focusing specifically on the portal vein and intrahepatic bile duct. These casts can be visualized by clearing or macerating the tissue and can then be analyzed. This technique can be applied to virtually any vascular or ductal system and would be directly applicable to any study inquiring into the development, function, maintenance, or injury of a 3-dimensional ductal or vascular structure.

A method of visualizing and quantifying the 3-dimensional structure of mouse hepatic portal vein or intrahepatic bile duct is described. This resin cast technique can also be applied to other ductal or vascular systems and allows for in situ visualization or quantification of a system's intact communicating architecture.

3-Dimensional Resin Casting und Imaging of Mouse Pfortader oder intrahepatische Gallengang-System

In  organs, the correct architecture of vascular and ductal structures is  indispensable for proper physiological function, and the formation and  ...

Forschung

Medizin

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

Ischämie-Reperfusion-Modell des akuten Nierenschädigung und nach der Verletzung Fibrose bei Mäusen

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide new expandable sources of beta cells to alleviate the donor scarcity in human islet transplantation as therapy for diabetes. Although recent advances have been made towards this aim, mechanisms that regulate beta cell expansion and differentiation from a stem/progenitor cell remain to be characterized. Here, we describe a protocol for an injury model in the adult mouse pancreas that can function as a tool to study mechanisms of tissue remodeling and beta cell proliferation and differentiation. Partial duct ligation (PDL) is an experimentally induced injury of the rodent pancreas involving surgical ligation of the main pancreatic duct resulting in an obstruction of drainage of exocrine products out of the tail region of the pancreas. The inflicted damage induces acinar atrophy, immune cell infiltration and severe tissue remodeling. We have previously reported the activation of Neurogenin (Ngn) 3 expressing endogenous progenitor-like cells and an increase in beta cell proliferation after PDL. Therefore, PDL provides a basis to study signals involved in beta cell dynamics and the properties of an endocrine progenitor in adult pancreas. Since, it still remains largely unclear, which factors and pathways contribute to beta cell neogenesis and proliferation in PDL, a standardized protocol for PDL will allow for comparison across laboratories.

This protocol describes an injury model involving the surgical ligation of the pancreatic duct in the adult mouse pancreas, resulting in severe injury that establishes an environment that allows beta cell neogenesis and proliferation. This model can be used as a tool to study mechanisms involved in beta cell formation.

Chirurgische Verletzung des Maus-Pankreas durch Ligatur des Pankreasganges als Modell für endokrine und exokrine Reprogrammierung und Proliferation

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide ...

The Dimethylnitrosamine Induced Liver Fibrosis Model in the Rat

Four to six week old, male Wistar rats were used to produce animal models of liver fibrosis. The process requires four weeks of administration of 10 mg/kg dimethylnitrosamine (DMN), given intraperitoneally for three consecutive days per week. Intraperitoneal injections were performed in the fume hood as DMN is a known hepatoxin and carcinogen. The model has several advantages. Firstly, liver changes can be studied sequentially or at particular stages of interest. Secondly, the stage of liver disease can be monitored by measurement of serum alanine aminotransferase (ALT) and aspartate aminotransferase (AST) enzymes. Thirdly, the severity of liver damage at different stages can be confirmed by sacrifice of animals at designated time points, followed by histological examination of Masson&#39;s Trichome stained liver tissues. After four weeks of DMN dosing, the typical fibrosis score is 5 to 6 on the Ishak scale. The model can be reproduced consistently and has been widely used to assess the efficacy of potential anti-fibrotic agents.

We describe a method to produce an animal model of liver fibrosis in the rat, and assess the degree of fibrosis by histological examination of the liver. The model can be used to study the development of liver disease as well as to test the efficacy of potential anti-fibrotic agents.

Die Dimethylnitrosamin Induced Liver Fibrosis Modell in der Ratte

Four to six week old, male Wistar rats were used to produce animal models of liver fibrosis. The process requires four weeks of administration of 10 mg/kg ...

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The "Wire-Injury" Model

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. Moreover, by rupture of the defective vascular wall, atherosclerosis induces occlusive thrombus formation, which represents the main cause of myocardial infarction or stroke and the most frequent cause of death. Despite the advances in the cardiovascular field, many questions remain unanswered, and additional basic research is essential to improve our understanding of the molecular mechanisms during atherosclerosis and its effects. Due to limited clinical studies, there is a need for representative animal models recreating atherosclerotic conditions such as neointima formation after stent implantation, balloon angioplasty, or endarterectomy. Since the mouse presents many advantages and is the most frequently used model for studying molecular processes, the current study proposes an invasive procedure of endothelial denudation, also known as the wire-injury model, which is representative of the human condition of neointima formation in arteries after revascularization procedures.

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The &quot;Wire-Injury&quot; Model

This study describes an invasive procedure for the induction of accelerated atherosclerosis in mice. In comparison to other methods using electric- or cryo-induced injury, mechanical-induced injury mimics the human condition of restenosis after revascularization therapies and is ideal for the study of the molecular mechanisms involved.

Induktion von beschleunigter Atherosklerose bei Mäusen: Das "Wire-Injury"-Modell

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. ...

Generation of a Chronic Obstructive Pulmonary Disease Model in Mice by Repeated Ozone Exposure

Chronic obstructive pulmonary disease (COPD) is characterized by persistent airflow limitation and lung parenchymal destruction. It has a very high incidence in aging populations. The current conventional therapies for COPD focus mainly on symptom-modifying drugs; thus, the development of new therapies is urgently needed. Qualified animal models of COPD could help to characterize the underlying mechanisms and can be used for new drug screening. Current COPD models, such as lipopolysaccharide (LPS) or the porcine pancreatic elastase (PPE)-induced emphysema model, generate COPD-like lesions in the lungs and airways but do not otherwise resemble the pathogenesis of human COPD. A cigarette smoke (CS)-induced model remains one of the most popular because it not only simulates COPD-like lesions in the respiratory system, but it is also based on one of the main hazardous materials that causes COPD in humans. However, the time-consuming and labor-intensive aspects of the CS-induced model dramatically limit its application in new drug screening. In this study, we successfully generated a new COPD model by exposing mice to high levels of ozone. This model demonstrated the following: 1) decreased forced expiratory volume 25, 50, and 75/forced vital capacity (FEV25/FVC, FEV50/FVC, and FEV75/FVC), indicating the deterioration of lung function; 2) enlarged lung alveoli, with lung parenchymal destruction; 3) reduced fatigue time and distance; and 4) increased inflammation. Taken together, these data demonstrate that the ozone exposure (OE) model is a reliable animal model that is similar to humans because ozone overexposure is one of the etiological factors of COPD. Additionally, it only took 6 - 8 weeks, based on our previous work, to create an OE model, whereas it requires 3 - 12 months to induce the cigarette smoke model, indicating that the OE model might be a good choice for COPD research.

This study describes the successful generation of a new chronic obstructive pulmonary disease (COPD) animal model by repeatedly exposing mice to high concentrations of ozone.

Generation von eine chronisch obstruktive Lungenerkrankung-Modell bei Mäusen durch wiederholte Ozonbelastung

Chronic obstructive pulmonary disease (COPD) is characterized by persistent airflow limitation and lung parenchymal destruction. It has a very high ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. Various approaches have been described, such as the inhalation of aerosolized LPS as well as nasal or intratracheal instillation. The presented protocol describes a detailed step-by-step procedure to induce ALI in mice by direct intratracheal LPS instillation and perform FACS analysis of blood samples, bronchoalveolar lavage (BAL) fluid, and lung tissue. After intraperitoneal sedation, the trachea is exposed and LPS is administered via a 22 G venous catheter. A robust and reproducible inflammatory reaction with leukocyte invasion, upregulation of proinflammatory cytokines, and disruption of the alveolo-capillary barrier is induced within hours to days, depending on the LPS dosage used. Collection of blood samples, BAL fluid, and lung harvesting, as well as the processing for FACS analysis, are described in detail in the protocol. Although the use of the sterile LPS is not suitable to study pharmacologic interventions in infectious diseases, the described approach offers minimal invasiveness, simple handling, and good reproducibility to answer mechanistic immunological questions. Furthermore, dose titration as well as the use of alternative LPS preparations or mouse strains allow modulation of the clinical effects, which can exhibit different degrees of ALI severity or early vs. late onset of disease symptoms.

Presented here is a step-by-step procedure to induce acute lung injury in mice by direct intratracheal lipopolysaccharide instillation and to perform FACS analysis of blood samples, bronchoalveolar lavage fluid, and lung tissue. Minimal invasiveness, simple handling, good reproducibility, and titration of disease severity are advantages of this approach.

Induzieren akute Lungenschädigung bei Mäusen durch direkte intratracheale Lipopolysaccharid-Instillation

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

Murine Precision-Cut Liver Slices as an Ex Vivo Model of Liver Biology

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic fatty liver disease, metabolic liver disease, and liver cancer) requires experimental manipulation of animal models and in vitro cell cultures. Both techniques have limitations, such as the requirement of large numbers of animals for in vivo manipulation. However, in vitro cell cultures do not reproduce the structure and function of the multicellular hepatic environment. The use of precision-cut liver slices is a technique in which uniform slices of viable mouse liver are maintained in laboratory tissue culture for experimental manipulation. This technique occupies an experimental niche that exists between animal studies and in vitro cell culture methods. The presented protocol describes a straightforward and reliable method to isolate and culture precision-cut liver slices from mice. As an application of this technique, ex vivo liver slices are treated with bile acids to simulate cholestatic liver injury and ultimately assess the mechanisms of hepatic fibrogenesis.

This protocol provides a simple and reliable method for the production of viable precision-cut liver slices from mice. The ex vivo tissue samples can be maintained under laboratory tissue culture conditions for multiple days, providing a flexible model to examine liver pathobiology.

Murine Präzisionsgeschnittene Leberscheiben als Ex-Vivo-Modell der Leberbiologie

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

OrganIschemia-Reperfusion Verletzung durch Simulation hämodynamischer Veränderungen im Lebertransplantationsmodell der Ratte

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...

A Mouse Model for Chronic Pancreatitis via Bile Duct TNBS Infusion

Chronic pancreatitis (CP) is a complex disease involving pancreatic inflammation and fibrosis, glandular atrophy, abdominal pain and other symptoms. Several rodent models have been developed to study CP, of which the bile duct 2,4,6 -trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS) infusion model replicates the features of neuropathic pain seen in CP. However, bile duct drug infusion in mice is technically challenging. This protocol demonstrates the procedure of bile duct TNBS infusion for generation of a CP mouse model. TNBS was infused into the pancreas through the ampulla of Vater in the duodenum. This protocol optimized drug volume, surgical techniques, and drug handling during the procedure. TNBS-treated mice showed features of CP as reflected by bodyweight and pancreas weight reductions, changes in pain-associated behaviors, and abnormal pancreatic morphology. With these improvements, mortality associated with TNBS injection was minimal. This procedure is not only critical in generating pancreatic disease models but is also useful in local pancreatic drug delivery.

Chronic pancreatitis (CP) is a disease characterized by inflammation and fibrosis of the pancreas, often associated with intractable abdominal pain. This article focuses on refining the technique to generate a mouse model of CP via bile duct infusion with 2,4,6 -trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS).

Ein Mausmodell für chronische Pankreatitis mittels Gallengangs-TNBS-Infusion

Chronic pancreatitis (CP) is a complex disease involving pancreatic inflammation and fibrosis, glandular atrophy, abdominal pain and other symptoms. ...