Diese Arbeit wurde durch VA Verdienst Review #I01 BX000760 (RFK) aus den Vereinigten Staaten (USA) unterstützt. Department of Veterans Affairs BLR & D. Der Inhalt dieser Arbeit repräsentieren nicht die Ansichten des US-Department of Veterans Affairs der Regierung der Vereinigten Staaten.

Alle Tierversuche stimmten die institutionellen Animal Care und Nutzung Ausschüsse von Minneapolis VA Medical Center und der University of Minnesota. Geltenden Richtlinien der National Institutes of Health für die Nutzung und Pflege von Versuchstieren zu folgen.
1. Ruhezustand Chirurgie
<ol><li>Tierische Vorbereitung<ol>
<li>Erstellen Sie ein Modell der Winterschlaf Myokard, Verwendung 5 Woche alt, Weiblich, Yorkshire-Schweine, die im Bereich von 8-10 kg mit als das durchschnittliche Gewicht 9,2 kg wiegen.</li>
		<li>Wiegen Sie für die präoperative Gesundheitsüberwachung das Tier innerhalb von 3 Tagen vor der Operation.</li>
		<li>Das Tier schnell für 12 h vor Beginn der Narkose. Sicherstellen Sie, dass Wasser für Fasten Tiere jederzeit abrufbar ist.</li>
		<li>Geben Sie SR Buprenorphin 0,18 mg/kg IM 24 h vor der Operation.</li>
	</ol></li>
	<li>Induktion<ol>
<li>Beruhigen Sie das Tier mit 6,6 mg/kg Tiletamin-Zolazepam und Xylazin cocktail intramuskulär gegeben. Lassen Sie 5-15 min für das Medikament cocktail wirksam werden.</li>
		<li>Bereiten Sie die Ohr Vene aseptisch durch Abwischen dreimal mit 70 % Isopropylalkohol für IV-Katheter-Platzierung. Hinweis: Wenn eine Ohr-Ader nicht ausreicht, eine andere periphere Vene kann sein (d. h. cephalic) verwendet.</li>
		<li>Gelten Sie ophthalmologischen Salbe für beide Augen, Hornhaut Austrocknen zu verhindern.</li>
		<li>Bei Bedarf veranlassen Anästhesie durch die Gabe von 1-2 mg/kg Propofol IV oder maskiert mit 3 L/min Sauerstoff und 3 % Isofluran, um trachealen Intubation zu ermöglichen. Hinweis: Das Tier wird entsprechend narkotisierten betrachtet, wenn die Blink-Reflex oder Kiefer-Ton fehlt.</li>
		<li>Das Tier mit einer entsprechend großen Endotrachealtubus Intubation.</li>
	</ol></li>
	<li>Chirurgie<ol>
<li>Sobald das Tier betäubt ist, Rasieren der linken thorakalen Bereich für die Chirurgie.</li>
		<li>Die mechanische Lüftung bei 10-15 Atemzüge pro min. Set Sauerstoff bei 1-4 L/min und Isofluran zwischen 1,0 und 3,0 %, je nach Bedarf weiterhin eine chirurgischen Ebene der Narkose zu initiieren.</li>
		<li>Legen Sie die Überwachungsgeräte auf das Tier. Überwachungseinrichtungen gehören EKG, Blutdruck, Temperatur und Pulsoximeter.</li>
		<li>Schließen Sie den IV-Katheter an einen Tropf mit normalen Kochsalzlösung 0,9 % mit einer Rate von 5 bis 10 mL/kg/h.</li>
		<li>Aseptisch vorbereiten der linken seitlichen Brust mit einer FDA-Zulassung chirurgische Peeling.</li>
		<li>Bewerten die Tiefe alle 5-15 min. Aufzeichnung der Anästhesie die Grundlinie Vitalparameter (Herzfrequenz, EKG, SpO2, NIBP, FTMV2 und Temperatur) alle 15 Minuten. Hinweis: Das Tier wird entsprechend narkotisierten betrachtet, wenn die Blink-Reflex oder Kiefer-Ton fehlt.</li>
		<li>Mit dem Tier auf die Rechte Seite legen drapiert sterilen Ort die linke Seite der Brust von der Wirbelsäule auf das Schulterblatt Zentrierung der dritten Rippe Raumes im sterilen Bereich. Hinweis: Der sterile Bereich beinhaltet linke vordere Schulter einschließlich der axillären Bereich des Brustbeins zum sechsten Rippe Raum cranially weiterhin.</li>
		<li>Schrubben Sie vorsichtig das Feld mit einer FDA-Zulassung Operationsmethode wie Chlorhexidin Gluconat oder ein Jod chirurgische Peeling für 2 min mit einem Zielmuster.</li>
		<li>Spülen Sie das Feld mit Wasser und waschen Sie es zweimal mit einer FDA-gebilligt-Methode als oben für 2 min. Spülen das OP-Feld mit Wasser zwischen wäscht, dann Tupfen Sie mit sterilen Frottee oder 4 x 4 cm Gaze Schwämme trocken.</li>
		<li>Sprühen Sie den Bereich mit einer Jod-Lösung und das ganze Tier (außer das OP-Feld) mit sterilen Tüchern drapiert. Verwenden Sie Dampf oder Gas Sterilisation, um Vorhänge für das Verfahren, Instrumente und Kleider zu sterilisieren.</li>
		<li>Verwalten Sie eine Intercostalneuralgie Nervenblockade mit 0,3 mL 0,5 % Bupivicaine auf den 2., 3. und 4. Rippen.</li>
		<li>Geben Sie 125 mg Cefazolin IV, bevor die Truhe öffnet. Hinweis: 1,5 mg/kg Succinylcholin IV kann als paralytischen Agent eingeräumt Muskelbewegung pro Anforderung des Chirurgen bei der Eröffnung der Brusthöhle zu reduzieren.</li>
		<li>Setzen Sie das Herz über eine linke Thorakotomie. Geben Sie vor Herz-Manipulation eine 2 mg/kg IV Bolus von Lidocain, Arrhythmie zu verhindern. Machen die seitlichen 3. Platz Thorakotomie Einschnitt mit monopolare Elektrokauter. Der Schnitt sollte von der kranialen Aspekt des Schulterblattes zum axillären Bereich für ca. 10 cm. Verwendung einer Cautery auf der Haut und der darunter liegenden Muskulatur ermöglichen den Einstieg in die Brusthöhle einzuschneiden erstrecken.</li>
		<li>Legen Sie einen Finochietto Rippe Retraktor und geben Sie Pleuraraum an den dritten Intercostalneuralgie Raum um die Lunge zu ziehen.</li>
		<li>Stark das Perikard einzuschneiden und zu der Seite mit 2: 0 Polyglactin Aufenthalt Nähte, Freilegung der Bursche Arterie und Vene einfahren. Die linken atriale Anhängsel mit einer Gaze bespannten Spachtel Retraktor zurückziehen.</li>
		<li>Mit Iris-Schere, öffnen Sie die Adventitia über den Knaben.</li>
		<li>Unverblümt sezieren ein ca. 0,25 cm Teil des LAD Arterie ca. 1 cm distal der LAD und Zirkumflex Arterie Junction. Verwenden Sie eine rechtwinklige Klammer der Bursche einzukreisen.</li>
		<li>Platzieren Sie zwei 4-0 Polyester Nähte um die Arterie ohne jede Spannung.</li>
		<li>Legen Sie eine Kunststoff c-förmige Constrictor mit einem Innendurchmesser von 1,5 mm auf der Bursche proximal der erste Diagonale ohne das Gefäß verschließen.</li>
		<li>Sichern Sie es mit zwei 4-0 Polyester Krawatten rings um den Knaben.</li>
		<li>Schließen Sie lose das Perikard mit 2: 0 Polyglactin Naht in einem einfachen unterbrochene Muster.</li>
		<li>Führen Sie einen Atem halten, Luft von der Brust zu entfernen, während die Intercostalneuralgie Muskelschicht geschlossen ist. Die Atemwege Druck Manometer an der Anästhesiemaschine zu behalten Sie den Druck in einem zulässigen Bereich von 20-30 cm Wasser und lassen Sie nach Abschluss dieses Vorgangs sorgfältig zu überwachen. Hinweis: Dadurch entfällt die Notwendigkeit einer Thoraxdrainage in der postoperativen Phase.</li>
		<li>Schließen Sie die Muskel und Haut Schichten in der standard Mode mit 2: 0 und 3: 0 resorbierbaren Naht.</li>
		<li>Verwenden Sie Hautkleber für Haut Schließung über den Schnitt.</li>
		<li>Verwalten einer Gesamtdosis von 1 mg/kg Bupivacain intramuskulär an mehreren Standorten entlang der Länge des Schnittes am Ende des Verfahrens. Verwalten von Meloxicam 0,2 mg/kg SQ vor dem Transport an die Recovery-Bereich.</li>
		<li>Das Tier aus dem Beatmungsgerät zu entwöhnen, da die Hautschicht geschlossen ist.</li>
		<li>Lassen Sie das Tier an das Anästhesiegerät angeschlossen, bis es spontan atmen kann und schützenden Reflexe beginnen, zurückzukehren.</li>
		<li>Entfernen Sie endotrachealen Schlauch nicht, bis das Tier schlucken kann, um die Atemwege zu schützen.</li>
		<li>Wenden Sie einen sterilen, nicht-adhärenten Verband mit dreifach-Antibiotikum-Salbe über den Schnitt.</li>
	</ol></li>
	<li>Nach der Operation<ol>
<li>Aufzeichnung der Herzfrequenz, Atemfrequenz, Körpertemperatur und Schleimhaut Farbe alle 15 min, bis das Tier die sternale Lage ohne fremde Hilfe halten kann.</li>
		<li>Nicht das Tier unbeaufsichtigt lassen bis es kann heben und halten Sie den Kopf oben und kann ohne fremde Hilfe stehen.</li>
		<li>Geben Sie Meloxicam (0,2 mg/kg) subkutan.</li>
		<li>Verabreichen Sie verzögerter Freisetzung Buprenorphin 6 h nach der ersten präoperative Dosis.</li>
		<li>Lassen Sie das Dressing auf den Einschnitt für bis zu 3 Tage, wenn es sauber und trocken bleibt. Das Dressing zu ersetzen, wenn es verschmutzt.</li>
		<li>Überwachen der Schmerzgrenze, allgemeines Wohlbefinden und den Zustand des Schnittes für 5 Tage nach dem Eingriff. Hinweis: Eine Ferkel Grimasse Waage ist jetzt zur Verfügung, um das Niveau der Schmerz bei diesen Tieren postoperativ bewerten14. Verwenden Sie eine halbe Dosis Meloxicam bei Bedarf einmal pro Tag für Durchbruchschmerzen.</li>
		<li>Single-Haus das Tier während der Erholungsphase der 5-tägige Tätigkeit einzuschränken und die Wunde zu heilen.</li>
		<li>Können Sie 8 Wochen den Winterschlaf Myokard-Phänotyp voll entfalten.</li>
	</ol></li>
</ol>(2) Revaskularisation oder Pumpe Bypass
<ol><li>Tierische Vorbereitung<ol>
<li>Wiegen Sie das Tier innerhalb von 3 Tagen vor der Operation.</li>
		<li>Das Tier schnell für 12 h vor der Operation. Sicherstellen Sie, dass Wasser für Fasten Tiere jederzeit abrufbar ist.</li>
		<li>Geben Sie verzögerter Freisetzung Buprenorphin 0,18 mg/kg intramuskulär 24 h vor der Operation.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Induktion<ol>
<li>Das Tier mit 6,6 mg/kg Tiletamin-Zolazepam/Xylazin Cocktail intramuskulär gesetzt. 5-15 min nach der Sedierung, bereiten die Ohr-Vene aseptisch für die Platzierung des Katheters. Hinweis: Wenn eine Ohr-Ader nicht ausreicht, eine andere periphere Vene kann sein (d. h. cephalic) verwendet.</li>
		<li>Ophthalmologische Salbe auf beide Augen anwenden.</li>
		<li>Anästhesie mit 1-2 mg/kg Propofol IV zu induzieren.</li>
		<li>Das Tier mit einer entsprechend großen Endotrachealtubus Intubation.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Chirurgie<ol>
<li>Rasieren Sie, Brustbein, linken seitlichen Brust und femoralen Dreiecke für die Operation des Tieres.</li>
		<li>10-15 Atemzüge pro Minute, bei 1-4 L/min Sauerstoff und Isofluran bei 1,0-3,0 % je nach Bedarf weiterhin eine chirurgischen Ebene der Narkose Beatmung soll.</li>
		<li>Positionieren Sie die Überwachung Ausrüstungen (Herzfrequenz, EKG, SpO2, direkte FTMV2 , Blutdruck und Temperatur) auf das Tier.</li>
		<li>Schließen Sie den IV-Katheter an einen Tropf mit normalen Kochsalzlösung oder LRS.</li>
		<li>Aseptisch bereiten Sie die Haut mit Povidon-Jod-Peeling oder eine andere Methode der FDA-Zulassung.</li>
		<li>Bewerten Sie das Tier für die Tiefe der Narkose. Hinweis: Das Tier wird als tief narkotisierten wenn das Auge oder Kiefer Reflex fehlt.</li>
		<li>Positionieren Sie das Tier dorsal, bereiten Sie die Haut wie oben beschrieben und Drapieren Sie das Tier mit sterilen Tüchern.</li>
		<li>Führen Sie einen Schnitt bis in die Femoral Arterie und Kanülierung. Monopolare Elektrokauter verwenden, um erstellen ein ca. 3 cm Hautschnitt über der Femoral Arterie, es für Kanülierung verfügbar zu machen.</li>
		<li>Nach der Schnitt präzise Platzierung des Medikaments zu ermöglichen erfolgt, durchführen Sie eine femoral Nervenblockade. Verbinden Sie die femorale Kanüle mit einen Wandler, Blutdruck während der Operation zu überwachen.</li>
		<li>Verwenden Sie Elektro-Cautery aus das Manubrium zum Xiphoid einzuschneiden sowie die Muskeln, Fettgewebe und Bindegewebe auf die Ebene des Brustbeins einzuschneiden.</li>
		<li>Teilen Sie das Brustbein mit einer oszillierenden Säge. Hinweis: Mit Hilfe einer oszillierenden sah, als eine standard sternale Säge vermeidet mögliche Myokard-Schädigung von Herzbeutel Verwachsungen infolge der Thorakotomie für Constrictor Platzierung auf der Bursche.</li>
		<li>Verwalten von Lidocain (be-Dosis von 2 mg/kg IV, 50 µg/kg/min Dauerinfusion IV), Rhythmusstörungen zu verhindern. Lidocain in einen 500 mL-Beutel mit normalen Kochsalzlösung in einer Konzentration von 1 mg/mL zu verdünnen.</li>
		<li>Teilen Sie die hintere sternale Platte mit geraden Mayo Schere.</li>
		<li>Verwenden Sie eine Truhe Aufrollvorrichtung, um der Brusthöhle verfügbar zu machen.</li>
		<li>Nehmen Sie sich die Verwachsungen mit monopolare Elektro-Cautery.</li>
		<li>Mit dem gleichen Retraktor, mit sanften Erhebung der linken sternale Grenze von einem Assistenten sezieren Sie die linke interne Milch-Arterie frei von der Brustwand.</li>
		<li>Steuern Sie die arterielle Zweige mit Hemoclips.</li>
		<li>Heparinize das Tier mit 100-300 Einheiten/kg Heparin IV.</li>
		<li>Nach 3 min, teilen die Arterie mit dem distalen Ende über genäht. Bereiten Sie das proximale Ende für die Pfropfung.</li>
		<li>Öffnen und das Perikard einfahren. Bestätigen Sie, dass die Länge der LIMA ausreichend ist, um die entsprechende Anastomosen Site auf den Knaben zu erreichen.</li>
		<li>Führen Sie die LIMA auf LAD Anastomose mit 7: 0 Polypropylen Naht mit einer aus Pumpe Technik mit kardialen Stabilisator, Form Federclip und entsprechend dimensionierte Intraluminal Geräten.</li>
		<li>Legen einer Thoraxdrainage zwischen den Rippen auf der linken seitlichen Brust, externalisiert und Vakuum, Luft aus der Brusthöhle für 15-30 min entfernen an.</li>
		<li>Ungefähre Brustbein mit #5 Polyester Nähte mit einem acht-Muster.</li>
		<li>Schließen Sie den Muskel, Haut und subkutanen Schichten in der üblichen Weise wie beschrieben in den Winterschlaf-Chirurgie. Entfernen Sie die Thoraxdrainage, während ein Valsalva Manöver um Restluft aus der Brusthöhle zu entfernen und den Schnitt mit einem Haut-Naht zu schließen.</li>
		<li>Haut-Kleber auf der Haut, den sternalen Schnitt zu schützen. Vorsichtig entfernen Sie die femoralen Katheter und reparieren Sie die Arterie mit 7: 0 Polypropylen Naht in eine Handtasche Saitenbild. Schließen Sie die Haut mit 2: 0 Polyglactin Naht in einem Subcuticular Muster.</li>
		<li>Verwalten einer Gesamtdosis von 1 mg/kg Bupivacain intramuskulär an mehreren Standorten entlang der Länge des Schnittes am Ende des Verfahrens.</li>
		<li>Verwalten von Meloxicam 0,2 mg/kg subkutan vor dem Transport in die Recovery-Bereich.</li>
		<li>Folgen Sie die postoperative Protokoll im Ruhezustand Verfahren.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mozaffarian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2016+Update+A+Report+From+the+American+Heart+Association.">Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 350 (2015).</li><li>Di Carli, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Value+of+metabolic+imaging+with+positron+emission+tomography+for+evaluating+prognosis+in+patients+with+coronary+artery+disease+and+left+ventricular+dysfunction.">Value of metabolic imaging with positron emission tomography for evaluating prognosis in patients with coronary artery disease and left ventricular dysfunction.</a> Am J Cardiol. 73 (8), 527-533 (1994).</li><li>Gerber, B. 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Impact of pre-operative myocardial function, perfusion, and metabolism.</a> Eur Heart J. 21 (2), 125-136 (2000).</li></ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Hier zeigen wir, dass unsere Schweine-Modell der HM genau die klinische Erfahrung von Patienten mit Erkrankungen der einzigen Behälter imitiert und linke ventricular Funktion erhalten. Vor der Revaskularisation zeigen Tiere mit einzelnen Schiff HM minimale Beeinträchtigung in der globalen Funktion gemessen am Auswurffraktion, sondern zeigen signifikante Reduktion in regionalen Wand Verdickung. Im Anschluss an die Revaskularisation zeigt CMR Bildgebung zu einem oder drei Monaten der Genesung erhaltenen Lebensfähigkeit ...

Koronarer Herzkrankheit (KHK) wirkt sich auf schätzungsweise 15,5 Millionen Menschen in den Vereinigten Staaten 1 und ist eine der häufigsten Todesursachen weltweit. Während die Sterblichkeit verbunden mit KHK in den letzten Jahren gesunken ist, bleiben die Inzidenz und die Belastung für die Patienten und das Gesundheitssystem hoch 1. Primäre Behandlung von schweren CAD ist Revaskularisation, das Überleben verbessert und reduziert die Angina pectoris2,3,4. Herzfunktion oft bleibt jedoch deprimiert, vor allem unter zunehmenden Arbeitsbelastung und kann den Fortschritt an Herzinsuffizienz5,6. Klinische Studien der koronaren Bypass-Operation (CABG) für chronische Ischämie zeigen Verbesserungen in überleben und die Symptome, aber Auswurffraktion zeigt nur geringe Verbesserungen von 8-10 % 7,8. Unsere innovative und gut charakterisierten Schweine der chronischen myokardialen Ischämie ist ein Modell des klinischen CAD mit progressive vaskuläre Stenose. Wir haben reduzierte myokardiale Kontraktilität durch schrittweise Verringerung der Blut fließen 9gezeigt. Das Myokard tut nicht Infarkt und kann in diesem Szenario lebensfähig bleiben. Erholung ist möglich, wenn Ergebnisse variabel auch mit rechtzeitigen Revaskularisation sind. Chronisch ischämischen Myokard, die lebensfähig bleibt wurde geprägt durch Minderdurchblutung und Funktion in Ruhe mit beibehaltenen kontraktile Reserve hat HM genannt und behandlungsbedürftigen CABG. Obwohl die Revaskularisation des HM kontraktile Funktion wiederhergestellt werden soll, zeigen experimentelle und klinische Beobachtungen, dass die Erholung unvollständig8,10.
HM zeichnet sich durch die Anwesenheit von lebensfähigen noch dysfunktionalen Myokard in Anwesenheit von regionalen Blut fließen11reduziert. Trotz beeinträchtigte Kontraktilität und Stoffwechselaktivität im Ruhezustand, HM ist funktionelle und metabolische Reserve unter inotrope Stimulation12nachweisen. HM wird verdächtigt, in der Mehrzahl der Patienten mit KHK und umfasst ein breites Spektrum von Krankheiten. In diesem Protokoll zeigen wir unsere etablierten Schweine-Modell der HM umgangen mit linken interne Milch-Arterie (LIMA), LAD Arterie, die das klinische Szenario imitiert. Die Schweine bieten ein hervorragendes Modell von Herzerkrankungen über andere Großtiere wie sie nicht epicardial Überbrückung Sicherheiten verfügen. Dadurch kann die Stenose des Knaben allein zu regionalen Ischämie13führen.
Hier beschreiben wir die chirurgische Methode des Verursachens Winterschlaf Myokard bei Schweinen durch ihre Single-Schiff Stenose bei der LAD-Arterie. Wenn chronische Ischämie hergestellt wurde (8 Wochen post-Implantat LAD constrictor), beschreiben wir die Methode der Neuerstellung der klinischen Behandlung für HM in unserem Schweine-Modell: ein off-Pump-Koronararterien-bypass Graft. Diese chirurgische Methoden können verwendet werden, nicht nur eine klinisch relevante Modell der chronische kardiale Ischämie, studieren, sondern auch zu untersuchen die Auswirkungen der Bypass-Operation auf kardiale Ischämie sowie mögliche Alternative oder unterstützende Therapien für kardiale Ischämie zu testen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1155px;" width="1154">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Bair Hugger</td>
			<td style="width:223px;">3M</td>
			<td style="width:203px;">Model 505</td>
			<td style="width:468px;">Patient Warming system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">SR Buprenorphine 10 mg/mL</td>
			<td style="width:223px;">Abbott Labs</td>
			<td style="width:203px;">NADA 141-434</td>
			<td>Post operative Analgesic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Surgical Spring Clip</td>
			<td>Applied Medical</td>
			<td>A1801</td>
			<td>Clamp end of LIMA after takedown</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Arterial Line Kit</td>
			<td>Arrow</td>
			<td>ASK-04510-HF</td>
			<td>Femoral catheter for blood pressure monitoring</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">1000mL 0.9% Sodium chloride</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2B1324X</td>
			<td>IV replacement fluid</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">250 mL 0.9% saline</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>&#160;UE1322D</td>
			<td>Replacement IV Fluid&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">500mL 0.9% Sodium chloride</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2B1323Q</td>
			<td>Drug delivery, Provide mist for Blower Mister</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Flo-thru 1.0</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>FT-12100</td>
			<td>used to anastomos LIMA to L</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Flo-thru 1.25</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>FT-12125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Flo-thru 1.5</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>FT-12150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Flo-thru 2.0</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>FT-12200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Cloroprep</td>
			<td style="width:223px;">Becton Dickenson</td>
			<td style="width:203px;">260815</td>
			<td>Surgical skin prep</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Meloxicam</td>
			<td>Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc.</td>
			<td>0010-6013-01</td>
			<td>NSAID for analgesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Hypafix</td>
			<td>BSN Medical</td>
			<td>4210</td>
			<td>Secure wound dressing and IV catheters</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">IV Tubing for Blower Mister</td>
			<td>Carefusion</td>
			<td>42493E</td>
			<td>Adapts to IV Fluids for Blower/Mister</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Bovie Cautery hand piece&#160;</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>E2516</td>
			<td>Hemostasis&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Chest Tube</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>8888561043</td>
			<td>Evacuates air from chest cavity&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Monopolar Cautery&#160;</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>Valleylab FT10</td>
			<td>Hemostasis&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Telpha pad</td>
			<td style="width:223px;">Covidien</td>
			<td style="width:203px;">2132</td>
			<td>Sterile wound dressing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">4-0 Tevdek II Strands</td>
			<td style="width:223px;">Deknatel</td>
			<td style="width:203px;">7-922</td>
			<td>Suture to secure constrictor around LAD</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Propofol</td>
			<td style="width:223px;">Diprivan</td>
			<td style="width:203px;">269-29</td>
			<td>Induction agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">&#160;long blade for laryngoscope&#160;</td>
			<td style="width:223px;">DRE</td>
			<td>12521</td>
			<td>Allows for visualization of trachea for intubation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">ECG Pads</td>
			<td>DRE</td>
			<td>1496</td>
			<td>Monitor heart rhythm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">laryngoscope&#160;</td>
			<td style="width:223px;">DRE</td>
			<td>12515</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Anesthesia Machine + ventilator</td>
			<td style="width:223px;">DRE Drager- Fabius Tiro</td>
			<td style="width:203px;">DRE0603FT</td>
			<td>Deliver Oxygen and inhalant to patient</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">&#160;5 Ethibond&#160;</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>MG46G</td>
			<td>Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">0 Vicryl</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J208H</td>
			<td>Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">2-0 Vicryl</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J317H</td>
			<td>Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">3-0 Vicryl</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>VCP824G</td>
			<td>Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">7-0 Prolene</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>M8702</td>
			<td>Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Dermabond</td>
			<td style="width:223px;">Ethicon</td>
			<td>DNX12</td>
			<td>Skin adhesive</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Ligaclips</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>MSC20</td>
			<td>Surgical Staples for LIMA takedown</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Sterile Saline 20 mL</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>20T700220</td>
			<td>Flush for IV catheters</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Telazol 100 mg/mL</td>
			<td style="width:223px;">Fort Dodge</td>
			<td style="width:203px;">01L60030</td>
			<td>Pre operative Sedative</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Triple Antibiotic Ointment</td>
			<td style="width:223px;">Johnson &#38; Johnson</td>
			<td style="width:203px;">23734</td>
			<td>Topical over wound</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">6.0 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Mallinckrodt</td>
			<td>86049</td>
			<td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">1&#34; medical tape</td>
			<td style="width:223px;">Medline</td>
			<td>MMM15271Z</td>
			<td>Secure wound dressing and IV catheters</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">4.0 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND43040</td>
			<td>Establish airway for Hibernation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">4.5 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND43045</td>
			<td>Establish airway for Hibernation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">5.0 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND43050</td>
			<td>Establish airway for Hibernation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">6.5 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND43065</td>
			<td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">7.0 mm ID endotracheal tube</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND43070</td>
			<td>Establish airway for Revasc,MRI and Termination</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:261px;">Bair Hugger Blanket -&#160; Large size, underbody</td>
			<td>Medline</td>
			<td>AUG55501</td>
			<td>Patient Warming system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Basic pack</td>
			<td style="width:223px;">Medline</td>
			<td style="width:203px;">DYNJP1000</td>
			<td>Sterile drapes and table cover</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Bone Wax</td>
			<td>Medline</td>
			<td>ETHW31G</td>
			<td>Hemostasis of cut bone</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Suction&#160; tubing</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND50223</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Suction Container&#160;</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYNDCL03000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">1 mL Syringe</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>1188100777</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">12 mL Syringe</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>8881512878</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">20 mL Syringe</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>8881520657</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">3 mL Syinge</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>1180300555</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">6&#160; mL Syringe</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>1180600777</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">60 mL Syringe</td>
			<td style="width:223px;">Medtronic/Covidien</td>
			<td>8881560125</td>
			<td>Administer injectable agents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blower Mister Kit</td>
			<td>Medtronic/Covidien</td>
			<td>22120</td>
			<td>Clears surgical field for vessel anastomosis</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Roncuronium</td>
			<td>Mylan</td>
			<td>67457-228-05</td>
			<td>Neuromuscular blocking agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;"># 40 clipper blade</td>
			<td>Oster</td>
			<td>078919-016-701</td>
			<td>Remove hair from surgery sites</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Hair Clipper</td>
			<td>Oster</td>
			<td>078566-011-002</td>
			<td>Remove hair from surgery sites</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Bupivicaine</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>00409-1161-01</td>
			<td>Local Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Cephazolin</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>00409-0805-01</td>
			<td>Antibiotic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Heparin&#160;</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>&#160;0409-2720-03</td>
			<td>anticoaggulant</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Lidocaine 2%</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>00409-4277-01</td>
			<td>Local Anesthetic/ antiarrthymic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Succinylcholine 20 mg/mL</td>
			<td style="width:223px;">Pfizer</td>
			<td style="width:203px;">00409-6629-02</td>
			<td>Neuromuscular blocking agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Anesthesia Monitor</td>
			<td>Phillips&#160; Intellivue&#160;</td>
			<td style="width:203px;">MP70&#160;</td>
			<td>Supports ventilation with inhalant</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Artificial Tears</td>
			<td style="width:223px;">Rugby</td>
			<td style="width:203px;">0536-1086-91</td>
			<td>Lubricate eyes to prevent corneal drying</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Buprenorphine 0.3 mg/mL</td>
			<td style="width:223px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:203px;">B9275</td>
			<td>Pre operative Analgesic for survivial procedures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:223px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:203px;">CDS019936</td>
			<td>General Anesthestic- Inhalant</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">36&#8221; Pressure monitoring tubing</td>
			<td>Smith&#8217;s Medical</td>
			<td>MX563</td>
			<td>Connect art. Line&#160; to transducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">48&#8221; Pressure monitoring tubing</td>
			<td>Smith&#8217;s Medical</td>
			<td>MX564</td>
			<td>Connect art. Line&#160; to transducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Jelco 18 ga IV catheter&#160;</td>
			<td style="width:223px;">Smiths medical</td>
			<td style="width:203px;">4054</td>
			<td>IV access in Revasc, MRI and Term</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Jelco 20 ga IV catheter</td>
			<td style="width:223px;">Smiths medical</td>
			<td style="width:203px;">4059</td>
			<td>IV access in the MRI</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Jelco 22 ga&#160; IV catheter</td>
			<td style="width:223px;">Smiths medical</td>
			<td>4050</td>
			<td>IV access in Hibernation Procedure</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">OPVAC Synergy II</td>
			<td>Terumo Cardiovascular System</td>
			<td>401-230</td>
			<td>Heart positioner and Stabilizer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Sternal Saw/ Necropsy Saw</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>812822</td>
			<td>Used to open chest cavity</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Delrin Constrictor</td>
			<td style="width:223px;">U of MN</td>
			<td style="width:203px;">Custom made</td>
			<td>Creates stenosis of LAD</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Oxygen Tank E cylinder</td>
			<td>various</td>
			<td>various</td>
			<td>Used for Blower Mister if anesthesia machine doesn&#39;t have auxiliary flow meter</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Pressure Transducer</td>
			<td>various</td>
			<td>Must adapt to anesthesia monitor</td>
			<td>Monitor direct arterial pressures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Xylazine 100 mg/mL</td>
			<td style="width:223px;">Vedco</td>
			<td style="width:203px;">468RX</td>
			<td>Pre operative Sedative/ analgesic</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

surgical swine model of chronic cardiac ischemia treated by off-pump coronary artery bypass graft surgery

Chronische kardiale Ischämie, der Herzfunktion beeinträchtigt, aber führt nicht Infarkt, wird Winterschlaf Myokard (HM) bezeichnet. Eine große klinische Teilmenge der koronaren Herzkrankheit (KHK) Patienten haben HM, das neben der Beeinträchtigung der Funktion, wodurch sie höhere für Arrhythmie und zukünftige kardiale Ereignisse gefährdet. Die standard-Behandlung für diese Bedingung ist Revaskularisation, aber dies hat gezeigt, dass eine unvollkommene Therapie sein. Der Großteil der präklinischen kardiologische Forschung konzentriert sich auf Infarkt Modelle der kardialen Ischämie, verlassen diese Teilmenge von chronischer Ischämie Patienten weitgehend unterversorgt. Um diese Lücke in der Forschung zu begegnen, haben wir ein gut charakterisierten und hoch reproduzierbare Modell der Winterschlaf Myokard bei Schweinen, Swine sind ideale translationale Modelle für menschliche Herz-Kreislauferkrankungen entwickelt. Neben der Schaffung dieser einzigartigen Krankheitsmodell, haben wir eine klinisch relevante Behandlungsmodell der koronaren Bypass-Operation bei Schweinen optimiert. Dies ermöglicht es uns, präzise Studie über die Auswirkungen der Bypass-Operation am Herz-Kreislauferkrankungen, sowie zusätzliche oder alternative Therapien zu untersuchen. Dieses Modell induziert chirurgisch einzigen Behälter Stenose durch Implantation einer Constrictor auf der linken vorderen absteigenden (LAD) Arterie in ein junges Schwein. Wie das Schwein wächst, schafft der Würger eine allmähliche Stenose, was zu chronischer Ischämie mit eingeschränkter regionale Funktion, sondern das weitertragen Gewebe Lebensfähigkeit. Nach der Einrichtung des Winterschlaf Myokard Phänotyps führen wir off-Pump-koronare Bypassoperation Transplantat um den ischämischen Region Revaskularisierung imitiert die Gold-Standard-Behandlung für Patienten in der Klinik.

Nach der ersten Winterschlaf Operation sollte größer als 70 % Stenose durch klinische bildgebende Verfahren wie z. B. Angiographie oder kardiale MRT (Abb. 1A) beobachtet werden können. 8 Wochen nach der chirurgischen Anwendung der LAD-Würger, zeigt Analyse der regionalen Funktion von ECHO oder kardiale MRT reduzierte Funktion unter zunehmenden Arbeitsbelastung (Abbildung 2). Dies kann durch die Stimulierung d...

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Surgical Swine Model of Chronic Cardiac Ischemia Treated by Off-Pump Coronary Artery Bypass Graft Surgery

Dieses Protokoll stellt eine chirurgische große Tiermodell der chronischen, einzelne Schiff Ischämie, die regionale Anomalien führt aber schafft kein Infarkt, bekannt als Winterschlaf Myokard. Nach Einrichtung der chronische Ischämie werden die Tiere mit off-Pump LIMA-LAD koronare Bypass Graft-Operation zur ischämische Gewebe Revaskularisierung behandelt.

Chirurgische Schweine Modell der chronischen kardialen Ischämie von Off Pump Coronary Artery Bypass Graft-Chirurgie behandelt

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of ...

surgical-swine-model-chronic-cardiac-ischemia-treated-off-pump

Research

JoVE Journal

Medicine

9.4K Aufrufe.  University of Minnesota. Dieses Protokoll stellt eine chirurgische große Tiermodell der chronischen, einzelne Schiff Ischämie, die regionale Anomalien führt aber schafft kein Infarkt, bekannt als Winterschlaf Myokard. Nach Einrichtung der chronische Ischämie werden die Tiere mit off-Pump LIMA-LAD koronare Bypass Graft-Operation zur ischämische Gewebe Revaskularisierung behandelt.

Serie: Surgical Swine Model of Chronic Cardiac Ischemia Treated by Off-Pump Coronary Artery Bypass Graft Surgery

A Swine Model of Neonatal Asphyxia

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, perfusion deficit, hypoxic-ischemic encephalopathy, pulmonary hypertension, vasculopathic enterocolitis, renal failure and thrombo-embolic complications. Animal models are developed to help us understand the patho-physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. In comparison to rodents and newborn lambs, the newborn piglet has been proven to be a valuable model. The newborn piglet has several advantages including similar development as that of 36-38 weeks human fetus with comparable body systems, large body size (&tilde;1.5-2 kg at birth) that allows the instrumentation and monitoring of the animal and controls the confounding variables of hypoxia and hemodynamic derangements.
We here describe an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia and allow us to examine the systemic and regional hemodynamic changes during the asphyxiating and reoxygenation process as well as the respective effects of interventions. Further, the model has the advantage of studying multi-organ failure or dysfunction simultaneously and the interaction with various body systems. The experimental model is a non-survival procedure that involves the surgical instrumentation of newborn piglets (1-3 day-old and 1.5-2.5 kg weight, mixed breed) to allow the establishment of mechanical ventilation, vascular (arterial and central venous) access and the placement of catheters and flow probes (Transonic Inc.) for the continuously monitoring of intra-vascular pressure and blood flow across different arteries including main pulmonary, common carotid, superior mesenteric and left renal arteries. Using these surgically instrumented piglets, after stabilization for 30-60 minutes as defined by Z&lt;10% variation in hemodynamic parameters and normal blood gases, we commence an experimental protocol of severe hypoxemia which is induced via normocapnic alveolar hypoxia. The piglet is ventilated with 10-15% oxygen by increasing the inhaled concentration of nitrogen gas for 2h, aiming for arterial oxygen saturations of 30-40%. This degree of hypoxemia will produce clinical asphyxia with severe metabolic acidosis, systemic hypotension and cardiogenic shock with hypoperfusion to vital organs. The hypoxia is followed by reoxygenation with 100% oxygen for 0.5h and then 21% oxygen for 3.5h. Pharmacologic interventions can be introduced in due course and their effects investigated in a blinded, block-randomized fashion.

Large animal models have good translational values in the examination of physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. Using newborn piglets, we develop an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia which has advantages of studying the systemic and regional hemodynamics, oxygen transport with biochemical and pathologic pathways and correlations.

A Swine Modell von neonataler Asphyxie

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, ...

Forschung

Medizin

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. The long-term clinical results showed excellent patency rates, however, with significant incidence of stenosis. To investigate the cellular and molecular mechanisms of vascular neotissue formation and prevent stenosis development in tissue engineered vascular grafts (TEVGs), we developed a mouse model of the graft with approximately 1 mm internal diameter. First, the TEVGs were assembled from biodegradable tubular scaffolds fabricated from a polyglycolic acid nonwoven felt mesh coated with &#949;-caprolactone and L-lactide copolymer. The scaffolds were then placed in a lyophilizer, vacuumed for 24 hr, and stored in a desiccator until cell seeding. Second, bone marrow was collected from donor mice and mononuclear cells were isolated by density gradient centrifugation. Third, approximately one million cells were seeded on a scaffold and incubated O/N. Finally, the seeded scaffolds were then implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. The implanted grafts demonstrated excellent patency (&#62;90%) without evidence of thromboembolic complications or aneurysmal formation. This murine model will aid us in understanding and quantifying the cellular and molecular mechanisms of neotissue formation in the TEVG.

To improve our knowledge of cellular and molecular neotissue formation, a murine model of the TEVG was recently developed. The grafts were implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. This model achieves similar results to those achieved in our clinical investigation, but over a far shortened time-course.

Die Implantation von Vena Cava Interposition Graft in Maus-Modell

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

Evaluation of a Novel Laser-assisted Coronary Anastomotic Connector - the Trinity Clip - in a Porcine Off-pump Bypass Model

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the Trinity Clip, is developed based on the excimer laser-assisted nonocclusive anastomosis technique. The Trinity Clip connector enables simplified, sutureless, and nonocclusive connection of the graft to the coronary artery, and an excimer laser catheter laser-punches the opening of the anastomosis. Consequently, owing to the complete nonocclusive anastomosis construction, coronary conditioning (i.e., occluding or shunting) is not necessary, in contrast to the conventional anastomotic technique, hence simplifying the off-pump bypass procedure. Prior to clinical application in coronary artery bypass grafting, the safety and quality of this novel connector will be evaluated in a long-term experimental porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) study. In this paper, we describe how to evaluate the coronary anastomosis in the porcine OPCAB model using various techniques to assess its quality. Representative results are summarized and visually demonstrated.

This paper describes a novel nonocclusive coronary anastomotic connector in a porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) model. This easy-to-use coronary connector has intrinsic potential to facilitate minimally invasive OPCAB surgery.

Evaluierung eines neuartigen Lasergestützte Koronare Anastomotische Steckverbinder - Dreifaltigkeit Clip - in einem Schweine Off-Pumpe Bypass-Modell

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the ...

Ultrasound Based Assessment of Coronary Artery Flow and Coronary Flow Reserve Using the Pressure Overload Model in Mice

Transthoracic Doppler echocardiography (TTDE) is a clinically useful, noninvasive tool for studying coronary artery flow velocity and coronary flow reserve (CFR) in humans. Reduced CFR is accompanied by marked intramyocardial and pericoronary fibrosis and is used as an indication of the severity of dysfunction. This study explores, step-by-step, the real-time changes measured in the coronary flow velocity, CFR and systolic to diastolic peak velocity (S/D) ratio in the setting of an aortic banding model in mice. By using a Doppler transthoracic imaging technique that yields reproducible and reliable data, the method assesses changes in flow in the septal coronary artery (SCA), for a period of over two weeks in mice, that previously either underwent aortic banding or thoracotomy. 
During imaging, hyperemia in all mice was induced by isoflurane, an anesthetic that increased coronary flow velocity when compared with resting flow. All images were acquired by a single imager. Two ratios, (1) CFR, the ratio between hyperemic and baseline flow velocities, and (2) systolic (S) to diastolic (D) flow were determined, using a proprietary software and by two independent observers. Importantly, the observed changes in coronary flow preceded LV dysfunction as evidenced by normal LV mass and fractional shortening (FS). 
The method was benchmarked against the current gold standard of coronary assessment, histopathology. The latter technique showed clear pathologic changes in the coronary artery in the form of peri-coronary fibrosis that correlated to the flow changes as assessed by echocardiography. 
The study underscores the value of using a non-invasive technique to monitor coronary circulation in mouse hearts. The method minimizes redundant use of research animals and demonstrates that advanced ultrasound-based indices, such as CFR and S/D ratios, can serve as viable diagnostic tools in a variety of investigational protocols including drug studies and the study of genetically modified strains.

Coronary flow reserve (CFR) is useful for assessment of myocardial oxygen demand and evaluation of cardiovascular risk. This study establishes a step-by-step transthoracic Doppler echocardiographic (TTDE) method for longitudinal monitoring of the changes in CFR, as measured from coronary artery in mice, under the experimental pressure overload of aortic banding.

Ultraschall Basierend Beurteilung der koronaren Herzfluss und koronare Flussreserve Mit der Drucküberlastung Modell an der Maus

Transthoracic Doppler echocardiography (TTDE) is a clinically useful, noninvasive tool for studying coronary artery flow velocity and coronary flow ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. Research models for bypass graft failure are essential for a better understanding of pathobiological and pathophysiological processes during graft patency loss. Large animal models, such as pigs or sheep, resemble human anatomical structures but require special facilities and equipment. This video describes a rat vein interposition model to investigate vein graft patency loss. Rats are inexpensive and easy to handle. Compared to mouse models, the convenient size of rats permits better operability and enables a sufficient amount of material to be obtained for further diverse analysis. In brief, the inferior epigastric vein of a donor rat is harvested and used to replace a segment of the femoral artery. Anastomosis is conducted via single stitches and sealed with fibrin glue. Graft patency can be monitored non-invasively using duplex sonography. Myointimal hyperplasia, which is the main cause for graft patency loss, develops progressively over time and can be calculated from histological cross sections.

This video demonstrates a model to study the development of myointimal hyperplasia after venous interposition surgery in rats.

Vein Interposition Modell: ein geeignetes Modell zur Untersuchung Bypass Graft Durchgängigkeit

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but regardless of the approach, an in vivo model is needed to test each treatment. The pig is one of the most used large animal models for cardiovascular disease. Its heart is very similar in anatomy and function to that of a human. The ameroid placement technique creates an ischemic area of the heart, which has many useful applications in studying myocardial infarction. This model has been used for surgical research, pharmaceutical studies, imaging techniques, and cell therapies.
There are several ways of inducing an ischemic area in the heart. Each has its advantages and disadvantages, but the placement of an ameroid constrictor remains the most widely used technique. The main advantages to using the ameroid are its prevalence in existing research, its availability in various sizes to accommodate the anatomy and size of the vessel to be constricted, the surgery is a relatively simple procedure, and the post-operative monitoring is minimal, since there are no external devices to maintain. This paper provides a detailed overview of the proper technique for the placement of the ameroid constrictor.

The purpose of this protocol is to demonstrate the placement of a delayed constricting device (an ameroid constrictor) around a coronary artery in a swine model. This device creates an ischemic area of the heart that is useful for studying new diagnostic imaging techniques and new methods of treatment.

Ein chronischer kardialer Ischämie-Modell bei Schweinen, die mit einem Ameroid Constrictor

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but ...

Tachycardia-Induced Cardiomyopathy As a Chronic Heart Failure Model in Swine

A stable and reliable model of chronic heart failure is required for many experiments to understand hemodynamics or to test effects of new treatment methods. Here, we present such a model by tachycardia-induced cardiomyopathy, which can be produced by rapid cardiac pacing in swine.
A single pacing lead is introduced transvenously into fully anaesthetized healthy swine, to the apex of the right ventricle, and fixated. Its other end is then tunneled dorsally to the paravertebral region. There, it is connected to an in-house modified heart pacemaker unit that is then implanted in a subcutaneous pocket. 
After 4 - 8 weeks of rapid ventricular pacing at rates of 200 - 240 beats/min, physical examination revealed signs of severe heart failure - tachypnea, spontaneous sinus tachycardia, and fatigue. Echocardiography and X-ray showed dilation of all heart chambers, effusions, and severe systolic dysfunction. These findings correspond well to decompensated dilated cardiomyopathy and are also preserved after the cessation of pacing.
This model of tachycardia-induced cardiomyopathy can be used for studying the pathophysiology of progressive chronic heart failure, especially hemodynamic changes caused by new treatment modalities like mechanical circulatory supports. This methodology is easy to perform and the results are robust and reproducible.

Here, we present a protocol to produce tachycardia-induced cardiomyopathy in swine. This model represents a potent way to study the hemodynamics of progressive chronic heart failure and the effects of applied treatment.

Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie als Vorbild chronischer Herzinsuffizienz bei Schweinen

A stable and reliable model of chronic heart failure is required for many experiments to understand hemodynamics or to test effects of new treatment ...

Brachial Artery Catheterization in Swine

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This technique enables researchers to measure arterial blood pressure continuously and collect arterial blood samples to assess arterial blood gas measurements. Arterial blood pressures and arterial blood gases are important physiological parameters to monitor during experimental procedures. In swine, four common methods of arterial catheterization have been described, including catheterization of the carotid, femoral, auricular, and medial saphenous arteries. Each of these techniques have advantages, such as ease of access for the auricular artery, and disadvantages that include deep tissue dissection for carotid artery catheterization. The described alternative method of arterial catheterization in swine, the catheterization of the distal aspect of the brachial artery, is a rapid procedure that requires relatively minimal tissue dissection and provides information that is in line with data collected from other arterial catheterization sites. The procedure uses a medial approach along an oblique plane of the lower brachium, positioned between the olecranon and the flexor aspect of the elbow joint, and this approach allows researchers the major advantage of unimpeded freedom for procedures that involve the caudoventral, caudodorsal back, or hind limbs of the pig. Due to the location of the upper forelimb of the catheterized vessel and potential challenges of effective homeostasis following catheter removal from the artery, this technique may be limited to non-recovery procedures.

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This procedure accurately measures arterial blood pressure and is a simple and fast method to collect samples for arterial blood gas measurements.

Brachial Arterie Katheterisierung bei Schweinen

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This technique enables researchers to measure arterial blood ...

Murine Myocardial Infarction Model using Permanent Ligation of Left Anterior Descending Coronary Artery

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine models of MI with permanent ligation of left-anterior descending (LAD) coronary artery closely mimics MI in humans. Murine models benefit from the extensive genetic engineering available nowadays. Here we propose a reproducible murine surgical model of myocardial infarction by permanent LAD coronary ligation. Our technique comprises anesthesia with ketamine/xylazine that can be rapidly reversed by administration of an antagonist, intubation without tracheotomy for mechanical-assisted ventilation, ventilation with application of extrinsic positive end-expiratory pressure (PEEP) to avoid alveolar collapse, a thoracotomy method limiting to the minimum surgical lesions made to skeletal muscles, and lung inflation without thoracentesis. This method is sparsely invasive, reproducible and reduces post-surgery mortality and complications.

Herein we describe a surgical procedure showing how to achieve permanent ligation of the left-anterior descending coronary artery in mice. This model is of high relevance to investigate the pathophysiology of myocardial infarction and the concomitant biological processes.

Murine Myokardinfarkt Modell mit permanenten Ligation der linken Anterior absteigende Koronararterie

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine ...

A Large Animal Model for Acute Kidney Injury by Temporary Bilateral Renal Artery Occlusion

Acute kidney injury (AKI) is associated with higher risk for morbidity and mortality post-operatively. Ischemia-reperfusion injury (IRI) is the most common cause of AKI. To mimic this clinical scenario, this study presents a highly reproducible large animal model of renal IRI in swine using temporary percutaneous bilateral balloon-catheter occlusion of the renal arteries. The renal arteries are occluded for 60 min by introducing the balloon-catheters through the femoral and carotid artery and advancing them into the proximal portion of the arteries. Iodinated contrast is injected in the aorta to assess any opacification of the kidney vessels and confirm the success of the artery occlusion. This is furtherly confirmed by the flattening of the pulse waveform at the tip of the balloon catheters. The balloons are deflated and removed after 60 min of bilateral renal artery occlusion, and the animals are allowed to recover for 24 h. At the end of the study, plasma creatinine and blood urea nitrogen significantly increase, while eGFR and urine output significantly decrease. The need for iodinated contrast is minimal and does not affect renal function. Bilateral renal artery occlusion better mimics the clinical scenario of perioperative renal hypoperfusion, and the percutaneous approach minimizes the impact of the inflammatory response and the risk of infection seen with an open approach, such as a laparotomy. The ability to create and reproduce this clinically relevant swine model eases the clinical translation to humans.

This study presents a highly reproducible large animal model of renal ischemia-reperfusion injury in swine using temporary percutaneous bilateral balloon-catheter occlusion of the renal arteries for 60 min and reperfusion for 24 h.

Ein Großtiermodell für akute Nierenverletzungen durch vorübergehenden bilateralen Nierenarterienverschluss

Acute kidney injury (AKI) is associated with higher risk for morbidity and mortality post-operatively. Ischemia-reperfusion injury (IRI) is the most ...