Die Sucrose Preference und Novelty-Induced Hypophagia Tests sind etablierte Techniken zur Bewertung von Anhedonia. Ihre Kombination mit dem automatisierten Ansaugüberwachungssystem ermöglicht eine detaillierte Analyse mit hoher Genauigkeit. Dieses Protokoll reduziert die Fehlerhäufigkeit, indem Verschüttungen in die Datenanalyse integriert werden, um Harding zu verhindern und unbeabsichtigten Flüssigkeitsverlust zu reduzieren.
Darüber hinaus ermöglicht das Protokoll die Beurteilung der Aufnahmemikrostruktur. Diese Technik zielt darauf ab, den Bedarf an gültigen Tests zu decken, anHedonia bei Nagetieren zu erkennen. Angesichts der zunehmenden Prävalenz depressiver Störungen.
Es kann auch verwendet werden, um antidepressive Wirkungen von Medikamenten zu studieren. Bei der Verwendung des Automated Intake Monitoring Systems ist es wichtig, sich daran zu erinnern, dass es täglich ordnungsgemäß gewartet und gereinigt werden muss, um genaue Daten bereitzustellen. Um das Training durchzuführen, schließen Sie alle Tore und entfernen Sie den Lebensmittelbehälter und die Wasserflasche, von den Mikrowaagen.
Vorgewlastete Lebensmittel auf den Käfig legen und sein Gewicht täglich dokumentieren. Füllen Sie eine saubere Wasserflasche mit ca. 100 Milliliter Wasser und legen Sie sie wieder auf den Trichter. Füllen Sie eine zweite Flasche mit 100 Milliliter frisch hergestellten 1%Saccharose-Lösung, und legen Sie sie auf den Trichter.
Achten Sie darauf, die Flaschen zu markieren und ihre Standorte zu dokumentieren. Dokumentieren Sie den Beginn der Schulung im Überwachungssystem, und öffnen Sie alle Gates. Lassen Sie die Tore für 24 Stunden offen, was zu ad libido maxes für beide Flaschen führt.
Dann dokumentieren Sie das Ende des Trainings und schließen Sie die Tore. Bereiten Sie täglich frische Saccharoselösung vor und achten Sie darauf, Flaschen alle 24 Stunden zu reinigen und nachzufüllen. Schalten der Position der Flaschen, um Gewöhnung zu vermeiden.
Führen Sie das Training für mindestens 48 Stunden durch. Nur im Verfahren mit tests, Wenn die Saccharose Präferenzverhältnisse erreichen etwa ein. 24 Stunden vor dem Test die Flasche mit der Saccharoselösung entfernen, so dass die Ratte nur Zugang zu Standard-Chow und Wasser hat.
Bereiten Sie vor dem Testen eine frische Flasche zu, die mit Leitungswasser und eine weitere mit 1%Saccharose gefüllt ist. Schließen Sie alle Tore. Entfernen Sie den Lebensmittelbehälter aus dem Trichter und ersetzen Sie ihn durch die vorbereiteten Wasser- und Saccharoseflaschen.
Dokumentieren Sie dann den Teststart im Überwachungssystem und öffnen Sie alle Tore. Lassen Sie die Tore 60 Minuten offen. Dokumentieren Sie dann das Ende des Tests, und schließen Sie sie.
Um sich auf die Trainingszeit vorzubereiten, schließen Sie alle Tore und entfernen Sie den Trichter mit dem Standard-Chow. Füllen Sie einen frischen Trichter mit einem schmackhaften Snack, setzen Sie die Cracker sorgfältig, um ein Zerbröckeln zu verhindern. Legen Sie dann den Trichter auf die Käfighalterung auf der Mikrowaage.
Dokumentieren Sie den Beginn der Ausbildung im Überwachungssystem und öffnen Sie die Tore für 30 Minuten, so dass die Ratte ad libitum maxes zum Snack und Wasser hat. Dokumentieren Sie nach 30 Minuten das Ende des Trainings und schließen Sie die Tore. Dann ersetzen Sie den Snack durch Standard-Chow.
Wiederholen Sie das Training täglich, bis eine stabile Ausgangsbasis der schmackhaften Snackaufnahme erreicht ist und sich statistisch nicht zwischen den Trainingstagen unterscheidet. Wenn Sie bereit sind, den Test durchzuführen, bereiten Sie einen leeren, frisch gereinigten Käfig ohne Einstreu oder Anreicherung vor und befestigen Sie ihn am automatisierten Lebensmittelaufnahmeüberwachungssystem. Legen Sie einen Trichter mit einer Flasche Leitungswasser und einen Trichter mit einem schmackhaften Snack auf die Käfighalterungen.
Entfernen Sie die Ratte aus dem Hauskäfig und legen Sie sie in den neuartigen Käfig. Öffnen Sie die Tore für 30 Minuten. Stellen Sie sicher, dass Sie den Anfang und das Ende des Tests dokumentieren.
Wenn Sie fertig sind, legen Sie die Ratte wieder in ihren Heimischenkäfig. Ein Saccharose-Präferenztest, der acht Ratten verabreicht wurde, zeigte einen Anstieg des Saccharoseverbrauchs und eine Abnahme der Wasseraufnahme während des Testzeitraums. Das Sucrose Preference Ratio stieg von durchschnittlich 0,8 am ersten Tag auf 0,99 am zweiten Tag.
Die Mikrostruktur der Saccharoseaufnahme wurde automatisch mit dem Überwachungssystem bewertet. Die Mahlzeitengröße, die Dauer der Mahlzeiten, die Anzahl der Mahlzeiten und neun weitere Parameter wurden automatisch gemessen. Um die Vorteile des automatisierten Aufnahmeüberwachungssystems zu demonstrieren, wurden automatisierte Messungen mit denen verglichen, die mit herkömmlichen manuellen Bewertungen durchgeführt wurden.
Alle Messungen waren von Gruppen zu Gruppen unterschiedlich. Möglicherweise aufgrund irrtümlich hoher Messungen oder Verschüttungen bei manueller Bewertung. Während der Trainingszeit für den neuartigen Hypophagie-Test nahm die Gesamtaufnahme der schmackhaften Snacks stetig zu, was auf eine Anpassung während der ersten zwei bis drei Tage hindeutet.
In ähnlicher Weise tendierte die Essensgröße zu einer Erhöhung zwischen den Trainingstagen, während die Essensdauer dies nicht tat. Am Testtag zeigten naive Ratten, die dem Snack und einer neuartigen Umgebung ausgesetzt waren, eine schmackhafte Snackaufnahme von etwa einem Gramm. Andere Parameter der Mikrostruktur der Nahrungsaufnahme, wie die Essensdauer, die Zeit, die in den Mahlzeiten verbracht wird, und die Latenz bis zum ersten Kampf wurden ebenfalls automatisch bewertet.
Dokumentieren Sie beim Ausführen dieses Protokolls alle Prozeduren in einem gemeinsamen Abschnitt der Überwachungssoftware, um die Zeit des Beginns und das Ende jeder Sitzung zu sparen. Dokumentieren Sie immer, welcher Stoff auf welchem Waagenverhältnis platziert wird. Da diese Methode nicht mit Stress verbunden ist, kann die Aufgabe nach einer geeigneten Trainingszeit zwischen den Tests wiederholt werden.
Nach der Etablierung dieser Technik wurde es verwendet, um anhedonische Merkmale, von verschiedenen Neuropeptide und ungestörten Tieren zu erforschen und das Wissen über ihre Funktionen zu erweitern.
