Method Article
Este protocolo describe un ensayo basado en actividades para la detección de metaloproteinasas de la matriz en sobrenadantes de cultivo o los fluidos corporales.
Metaloproteinasas de matriz (MMP) son endopeptidasas que contienen zinc. Se degradan las proteínas de la escisión de los enlaces peptídicos. Más de una veintena de MMPs han sido identificados y se dividen en seis grupos según su estructura y especificidad de sustrato (colagenasas, gelatinasas, tipo de membrana [MT-MMP], estromelisinas, matrilysins, y otros). MMP juegan un papel crítico en la invasión celular, la degradación del cartílago, la remodelación de tejidos, la cicatrización de heridas, y la embriogénesis. Por lo tanto, participar en los procesos normales y en la patogénesis de muchas enfermedades, como la artritis reumatoide, cáncer o enfermedad pulmonar obstructiva crónica 1-6. Aquí, nos centraremos en la MMP-2 (gelatinasa A, colagenasa tipo IV), una MMP ampliamente expresada. Vamos a demostrar cómo detectar MMP-2 en los sobrenadantes de cultivo celular por zymography, uno de uso común, técnica simple, pero muy sensible describió por primera vez en 1980 por C. Heussen y EB 10.7 Dowdle. Esta técnica es semi-cuantitativo, por lo tanto, se puede utilizar para determinar los niveles de MMP en las muestras cuando las concentraciones conocidas de MMP recombinante se cargan en el mismo gel 11.
Las soluciones que contienen MMPs (por ejemplo, sobrenadantes de cultivo celular, la orina o el suero) se cargan en un gel de poliacrilamida que contiene dodecil sulfato sódico (SDS, para linealizar las proteínas) y gelatina (sustrato de la MMP-2). El tampón de la muestra está diseñada para aumentar la viscosidad de la muestra (para facilitar la carga de gel), proporcionan un medio de seguimiento (azul de bromofenol, para controlar la migración de la muestra), proporcionan moléculas de desnaturalización (para linealizar las proteínas), y controlar el pH de la muestra. Las proteínas se dejan de migrar en una corriente eléctrica en un tampón de diseñado para proporcionar una tasa de migración constante. La distancia de la migración está inversamente correlacionado con el peso molecular de la proteína (proteínas pequeñas se mueven más rápido a través del gel de proteínas de gran tamaño y por lo tanto no migran más por el gel). Después de la migración, el gel se coloca en un buffer de renaturalización de las proteínas permiten a recuperar su estructura terciaria, es necesario para la actividad enzimática. El gel se coloca en un búfer de desarrollo diseñado para permitir la proteasa para digerir su sustrato. El tampón de desarrollo también contiene p-aminophenylmercuric acetato (APMA) para activar el no proteolíticas pro-MMP a MMP activas. El siguiente paso consiste en teñir el sustrato (la gelatina en nuestro ejemplo). Después de lavar el exceso de tinte el gel, las áreas de la digestión de la proteasa aparecen como bandas claras. La más clara de la banda, la mayor concentración de la proteasa que contiene. Intensidad de la banda de tinción puede ser determinada por densitometría, utilizando un software como ImageJ, que permite la comparación de la muestra.
1. Cargar y ejecutar el Gel
2. Renaturalización y desarrollo del Gel
3. Análisis de Datos
4. Resultados representante
Se muestra un gel con 11 pozos cargados con diferentes sobrenadantes de cultivo de células que contienen diferentes cantidades de MMP-2 (Figura 1). La observación directa de este gel muestran diferencias obvias en las concentraciones de MMP-2 entre algunos de los pozos. Por ejemplo, está claro que los pozos 4 y 5 contienen mucho más que la MMP-2 y # 11, o bien hasta 10 #. Para la cuantificación objetiva de las bandas que han utilizado la densitometría con el software ImageJ (Figura 1B-D), lo que confirma una diferencia de aproximadamente 4 veces en la MMP-2 entre las cantidades y # 11 y los pozos 4 y 5 y una diferencia de aproximadamente 2 veces en MMP-2 entre las cantidades y # 10 y # pozos 4 y 5.
Figura 1. Detección de MMP-2 por zymography gelatina. Una imagen, escaneada de un gel de gelatina. Números también se indican en la parte superior del gel. B, gel Igual que en una muestra en blanco y negro de la densitometría. Cada grupo fue seleccionado con un rectángulo en ImageJ. C, dos ejemplos de los perfiles de la densitometría para el gel mostrado en A y B (bandas # 4 y # 11). Una línea recta que se elaboró en la base de cada pico para crear un área cerrada. D, Parcela de las áreas de pico para el gel mostrado en A y B antes (izquierda) y después (derecha) la normalización de la densidad de la banda # 1.
Figura 2. Esta cifra demuestra cómo zymography se puede utilizar como una técnica semi-cuantitativo. Hemos cargado diluciones seriadas (pasos de 1:01 diluciones) en 7 pozos consecutivos y se mide la densidad de banda para los pro-MMP-2 y MMP-2.
Hemos demostrado cómo realizar el análisis zimográfico de MMP-2 en el sobrenadante de cultivo celular.
La cantidad de muestra a la carga en un gel debe ser determinada empíricamente en función del origen y MMP de interés. Carga demasiado poco evitar su detección durante la carga en exceso puede conducir a la saturación, ya que es único sustrato tanto una proteasa pueden digerir en el área de la banda. Si es necesario, la muestra se puede diluir en agua desionizada antes de mezclarse con tampón de carga o el tiempo de desarrollo puede reducirse de la noche a 4 horas. También es posible concentrar las proteínas de una solución a base de concentradores (por ejemplo, catálogo Millipore # UFC803024). Si las bandas siguen siendo apenas visible, puede ser necesario el desarrollo de los geles durante un largo periodo de tiempo, incluso hasta 48 horas. En la preparación de las muestras de los sobrenadantes de cultivo de tejidos, cabe señalar que el suero fetal bovino (y otros sueros) contiene MMPs que pueden afectar los resultados. Por esta razón, recogemos todas nuestras sobrenadantes después de la cultura en el medio libre de suero.
Los lavados se describe en los párrafos 2.9 y 2.10 del protocolo es necesario para eliminar el fondo de tinción de las bandas de digerir. Veces más tiempo de lavado se eliminan más de fondo, pero se atenúa también la coloración del sustrato a través del gel. Si ya los tiempos de lavado son necesarias, se recomienda escanear el gel a cada rato para seleccionar el escaneo con el mejor contraste.
Esta técnica puede utilizarse para detectar otras MMP. Por ejemplo, la MMP-9 puede ser detectada en geles de gelatina, y también en menor medida MMP-1, MMP-8 y MMP-13 como la gelatina no es el sustrato preferido. MMP-1 y MMP-13 se detecta más fácilmente en zimografía colágeno, mientras que la caseína es el sustrato preferido para la MMP-11 y también permite la detección de MMP-1, MMP-3, MMP-7, MMP-12, y MMP-13 9. MMP-7 (matrilisina) y colagenasas (MMP-1 y MMP-13) son difíciles de detectar cuando están presentes en bajas concentraciones en caseína o geles de gelatina. Además de la heparina a la muestra en el momento de carga de gel mejora significativamente el límite de detección de MMP-7. De MMP-1 y MMP-13, la heparina se debe agregar el gel después de la electroforesis ya está en marcha 12.
Dado que las medidas de zymography actividad enzimática después de la desnaturalización y renaturalización de las enzimas, se medirá la actividad de todas las MMPs presente en la muestra. Esto incluye las enzimas, las enzimas pro-, y enzimas ligadas a los inhibidores endógenos (por ejemplo, TIMP-2). Sin embargo, es posible determinar el nivel de activación de MMP en la muestra mediante la comparación de la densidad de banda de la enzima activa y de la de la pro-enzima, que tendrá un peso molecular ligeramente superior.
Zymography a menudo no es suficiente para identificar un MMP. Comparación del nivel de migración de un sistema de RPP con estándares de peso molecular conocido le ayuda en la identificación, pero hay que señalar que algunas de estas normas contienen un agente reductor y que cuando se usa bajo condiciones no reductoras pueden indicar diferentes pesos moleculares 9. Una opción es cargar una MMP recombinante soluble en el mismo gel, como las muestras de prueba. MMPs sin embargo puede estar asociada con otras proteínas, induciendo un cambio en el peso molecular aparente. Los inhibidores selectivos de MMP se pueden añadir al gel (o parte de un recorte en gel por la mitad) durante la incubación en buffer de desarrollo como herramientas farmacológicas para la identidad de la MMP de la técnica interest.A segundo (Western Blot, inmunocitoquímica, o ELISA) se recomienda ayudar en la identificación de la MMP de interés. Cabe señalar que los límites de detección por Western Blot son a menudo mucho más bajos que los de los geles de zimográfico, que puede conducir a resultados falsos negativos cuando se utiliza esta técnica.
Nos gustaría agradecer al Dr. S. Ressler (Departamento de Biología Molecular y Celular, Facultad de Medicina Baylor) por sugerir el uso de concentradores de proteínas para aumentar la concentración de MMP en los sobrenadantes de cultivo celular.
Este proyecto fue apoyado por subvenciones del Fondo de la señora Clifford pastor White Investigación Graham Dotado y el NIH / NIAMS (AR059838) al CB. El contenido es responsabilidad exclusiva de sus autores y no representa necesariamente las opiniones oficiales de los NIH.
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
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Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Xcell SureLock Mini-Cell CE mark electrophoresis apparatus | Invitrogen | EI0001 | ||
Power supply (model 302) | VWR | 93000-744 | ||
Novex 10% gelatin zymogram gels, 1.0 mm, 12 wells | Invitrogen | EC61752BOX | ||
Blue Juice gel loading buffer | Invitrogen | 10816015 | ||
Gel loading tips | VWR | 53509-015 | ||
Protein molecular weight standard | Invitrogen | LC5800 | ||
Novex Tris-Glycine-SDS running buffer | Invitrogen | LC2675 | ||
Novex zymogram renaturing buffer | Invitrogen | LC2670 | ||
Novex zymogram developing buffer | Invitrogen | LC2671 | ||
SimplyBlue SafeStain | Invitrogen | LC6060 | ||
Epson Perfection 4490 Photo Scanner | Amazon | n/a | ||
ImageJ software | http://rsbweb.nih.gov/ij/ | n/a | Authored by W. Rasband, NIH/NIMH |
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