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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Este protocolo describe un método colorimétrico de alta a través de poner que se basa en la formación de un complejo entre el yodo y cadenas de moléculas de glucosa en el almidón. El yodo forma complejos con tanto la amilosa y la amilopectina dentro de cadenas largas. Después de la adición de yodo a una muestra de almidón, la absorción máxima de la amilosa y la amilopectina se produce a 620 y 550 nm, respectivamente. La relación amilosa / amilopectina puede estimarse a partir de la relación de los valores de absorbancia 620 nm y 550 y la comparación de ellos con una curva patrón en la que concentraciones específicas conocido se representan frente a los valores de absorción. Este alto rendimiento, método barato es confiable y reproducible, lo que permite la evaluación de grandes poblaciones de clones de papa.

Resumen

Este protocolo describe un método colorimétrico de alta a través de poner que se basa en la formación de un complejo entre el yodo y cadenas de moléculas de glucosa en el almidón. El yodo forma complejos con tanto la amilosa y la amilopectina dentro de cadenas largas. Después de la adición de yodo a una muestra de almidón, la absorción máxima de la amilosa y la amilopectina se produce a 620 y 550 nm, respectivamente. La relación amilosa / amilopectina puede estimarse a partir de la relación de los valores de absorbancia 620 nm y 550 y la comparación de ellos con una curva patrón en la que concentraciones específicas conocido se representan frente a los valores de absorción. Este alto rendimiento, método barato es confiable y reproducible, lo que permite la evaluación de grandes poblaciones de clones de papa.

Introducción

Aproximadamente el 80% del peso fresco de un tubérculo de la patata es agua; casi la totalidad de la materia seca restante es el almidón 1. La mayor parte del almidón (70%) se compone de amilopectina, mientras que el resto es amilosa. La relación entre amilosa y amilopectina es la propiedad más importante que influye en las propiedades físicas del almidón. La amilosa es una cadena lineal de glucosa alfa 1-4, mientras que la amilopectina es una lineal cadena alfa 1-4 con alfa 1-6 ramas 2. Métodos como el yodo vinculante, calorimetría diferencial de barrido (DSC), el tamaño de alto rendimiento cromatografía de exclusión (HPSEC) y concanavalina A interacciones se han desarrollado para la determinación del almidón en diferentes especies de cultivo 3,4. Cada protocolo requiere de habilidades y equipos especiales, por lo que es difícil de escalar para cuantificar numerosas muestras a la vez. El método que aquí presentamos es un protocolo modificado de Hovenkamp-Hermelink et al. 5, que es una unión de doble longitud de onda de yodométodo basado en los gránulos de almidón teñidos. Las ventajas de este método frente a otros incluyen la determinación de amilosa de almidón en bruto sin purificar y el uso del sistema de doble longitud de onda para aumentar la precisión del método de 4,6.

Protocolo

1. Determinación de amilosa del almidón de la papa

  1. Pelar y cortar los tubérculos frescos en cubos pequeños.
  2. Coloca los cubos de papa en pequeñas bolsas de papel y almacenar toda la noche a -80 ° C.
  3. Transfiera los cubos de papa a las bolsas de nylon y de liofilización.
  4. Después de secado por congelación, moler la muestra de patata en polvo utilizando mortero o un molino Wiley.
  5. En un tubo de 50 ml, añadir 20-30 mg de la, muestra de tubérculo suelo liofilizado.
  6. Preparar una solución de 45% (w / v) de ácido perclórico (mezclar 24,4 ml de ácido perclórico al 60% y 25,6 ml de agua ultra-pura.
  7. Añadir 500 l de 45% (w / v) de ácido perclórico y agitar o removerlo para dispersar los gránulos de almidón.
  8. Después de un período de incubación de cuatro minutos a temperatura ambiente, añadir 16 ml de agua ultrapura a la solución y mezclar mediante agitación.
  9. Después de material no soluble se ha asentado en el fondo del tubo (7-10 minutos más tarde), transferir 40 l de la solución a una placa de microtitulación (evitando el pipeteado de todas las partículas).
  10. Añadir 50 l de solución de yodo (2 g de KI + 1 g de I 2 en 900 ml de agua ultrapura) y mezclar la muestra con la pipeta.
  11. Lea la absorbancia a 550 nm y 620 nm inmediatamente.
  12. Determinar el porcentaje de amilosa después de comparar la relación amilosa / amilopectina de cada muestra (620 nm/550 nm de absorbancia) con una curva estándar generada a partir de soluciones de amilosa y amilopectina en un intervalo de concentraciones. Este procedimiento se describe a continuación. Leer la (solución de yodo y ácido perclórico) en blanco junto con las muestras de ensayo. Uso blanqueó a los datos para los análisis.

2. Curva de amilosa / amilopectina

  1. En tubos separados pesan 12,5 mg de amilosa y 12,5 mg de amilopectina.
  2. Añadir a cada tubo 5 ml de 45% (w / v) de ácido perclórico y disolver completamente.
  3. Para cada una de las soluciones (amilosa y amilopectina), llevar a un volumen final de 50 ml con agua ultrapura.
  4. Mezclar 6,25ml de solución madre de amilosa de la etapa anterior con 18,75 ml de agua ultrapura. Esto hará que una solución de amilosa 6,25 mg / ml.
  5. Repita el procedimiento para la solución de la amilopectina.
  6. El uso de la amilosa y la amilopectina soluciones estándar de los pasos 2.4 y 2.5, preparar las normas de amilosa por ciento que son 0-100% de amilosa (100-0% de amilopectina) a un volumen final de 5 ml para crear la curva estándar en intervalos de 10%.
    Por ejemplo, para preparar:
    La amilosa / amilopectina 100% estándar de 0%, pipeta de 5 ml de solución de amilopectina.
    El estándar de 10% de amilosa / 90% de amilopectina, se combinan 0,5 ml de amilosa y 4,5 ml de soluciones de amilopectina.
    El estándar de 20% de amilosa / 80% de amilopectina, se combinan 1,0 ml de amilosa y 4,0 ml de soluciones de amilopectina.
    El estándar de 30% de amilosa / 70% de amilopectina, se combinan 1,5 ml de amilosa y 3,5 ml de soluciones de amilopectina.
    El estándar de 40% de amilosa / 60% de amilopectina, se combinan 2,0 ml de amilosa y 2,0 ml de soluciones de amilopectina.
    La amilosa 50%/ Estándar amilopectina 50%, se combinan 2,5 ml de amilosa y amilopectina 2,5 ml de soluciones.
    El estándar de 60% de amilosa / 40% de amilopectina, se combinan 3,0 ml de amilosa y amilopectina 2,0 ml, y así sucesivamente).
  7. Transferir 40 l de cada mezcla estándar a una placa de microtitulación. Incluir un pozo con 40 l 45% (w / v) de ácido perclórico como blanco.
  8. Añadir 50 l de solución de yodo (2 g de KI + 1 G I 2 en 900 ml de agua ultra-pura) y mezclar cada muestra (incluyendo el espacio en blanco) por pipeteado.
  9. Leer las absorbancias a 550 nm y 620 nm inmediatamente y calcular la relación amilosa / amilopectina para cada concentración.

Resultados

La curva estándar construida a partir de datos troqueladas de diferentes soluciones de concentración de amilosa / amilopectina muestra razón de absorbancia aproximados que van desde 0,7 hasta 1,6 (Tabla 1). Una línea de tendencia de regresión lineal a partir de estos datos se utiliza posteriormente para inferir el contenido de amilosa en liofilizados muestras de papa (Figura 1).

El ambiente de producción de la planta tiene algún efecto sobre el conten...

Discusión

El contenido de amilosa en tubérculos de patata normalmente oscila entre 20-35% 7,8. Si la mayoría de los valores están fuera de este rango, considerar estos posibles errores: 1) datos brutos se utilizan en lugar de los datos blanqueó para la construcción de la curva estándar de amilosa / amilopectina; 2) datos brutos se utilizan en lugar de los datos blanqueó para la determinación de la amilosa / ratios de amilopectina de las muestras de patata, o 3) el agua utilizada para el análisis no era lo sufi...

Divulgaciones

No tenemos nada que revelar.

Agradecimientos

El financiamiento para esta investigación fue proporcionado en parte por el Programa de Investigación Asociado USDA-ARS y el Comité de Germoplasma de Cultivos USDA.

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
Amylose Sigma859656
Amylopectin SigmaA8515
Perchloric Acid 60%Sigma311413Very hazardous to skin and eyes
IodineSigma23214TD
Potassium iodideSigma08625JE
Equipment
Plate ReaderBio TekELx800

Referencias

  1. Composition Hoover, R. molecular structure, and physicochemical properties of tuber and root starches: a review. Carbohydr. 45 (3), 253-267 (2001).
  2. Bertoft, E., Blennow, A. Structure of Potato Starch. Advances in Potato Chemistry and Technology. , 83-98 (2009).
  3. Campbell, M. R., Yeager, H., Abdubek, N., Pollak, L., Glover, D. Comparison of methods for amylose screening in maize starches from exotic backgrounds. Cereal Chem. 79, 317-321 (2002).
  4. Zhu, T., Jackson, D. S., Wehling, R. L., Geera, B. Comparison of amylose determination methods and the development of a dual wavelength iodine binding technique. Cereal Chem. 85, 51-58 (2008).
  5. Hovenkamp-Hermelink, J., Devries, J., Adamse, P., Jacobsen, E., Witholt, B., Feenstra, W. Rapid estimation of the amylose amylopectin ratio in small amounts of tuber and leaf tissue of the potato. Potato Res. 31, 241-246 (1988).
  6. Shannon, J. C., Garwood, D. L., Boyer, C. D. Genetics and Physiology of Starch Development. Starch. , 23-82 (2009).
  7. Haase, N. U., Plate, J. Properties of potato starch in relation to varieties and environmental factors. Stärke. 48 (5), 167-171 (1996).
  8. Johnston, F. B., Urbas, B., Khanzada, G. Effect of storage on the size distribution and amylose/amylopectin ratio in potato starch granules. Am. Pot. J. 45, 315-321 (1968).
  9. Gibson, T. S., Solah, V. A., McCleary, B. V. A procedure to measure amylose in cereal starches and flours with concanavalin A. J. Cereal Sci. 25 (2), 111-119 (1997).
  10. Sun, S., Matheson, N., Yun, S. -. H. Estimation of amylose content of starches after precipitation of amylopectin by concanavalin A. Starch. 42, 302-305 (1990).

Reimpresiones y Permisos

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