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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Este protocolo describe la colección de válvulas aórticas humanas extraídas durante procedimientos quirúrgicos de reemplazo de válvula aórtica o de tejido cadavérico, y el posterior aislamiento, expansión y caracterización de células endoteliales e intersticiales de válvula primaria específicas del paciente. Se incluyen detalles importantes sobre los procesos necesarios para garantizar la viabilidad celular y la especificidad del fenotipo.

Resumen

La valvulopatía aórtica calcificante (CAVD) está presente en casi un tercio de la población de edad avanzada. El engrosamiento, endurecimiento y calcificación de la válvula aórtica causa estenosis aórtica y contribuye a la insuficiencia cardíaca y al accidente cerebrovascular. La patogénesis de la enfermedad es multifactorial, y tensiones como la inflamación, la remodelación de la matriz extracelular, el flujo turbulento y el estrés mecánico y la tensión contribuyen a la diferenciación osteogénica de las células endoteliales valvulares e intersticiales valvulares. Sin embargo, los factores iniciadores precisos que impulsan la transición osteogénica de una célula sana a una célula calcificante no están completamente definidos. Además, la única terapia actual para la estenosis aórtica inducida por CAVD es el reemplazo de la válvula aórtica, mediante el cual se extrae la válvula nativa (reemplazo quirúrgico de la válvula aórtica, SAVR) o se inserta una válvula de reemplazo totalmente plegable a través de un catéter (reemplazo de la válvula aórtica transcatéter, TAVR). Estos procedimientos quirúrgicos tienen un alto costo y con graves riesgos; Por lo tanto, es imperativo identificar nuevos objetivos terapéuticos para el descubrimiento de fármacos. Con ese fin, el presente estudio desarrolla un flujo de trabajo en el que los tejidos extirpados quirúrgicamente de pacientes y tejidos de cadáveres de donantes se utilizan para crear líneas primarias específicas del paciente de células valvulares para el modelado de enfermedades in vitro. Este protocolo introduce la utilización de una solución de almacenamiento en frío, comúnmente utilizada en el trasplante de órganos, para reducir el daño causado por el tiempo de obtención a menudo largo entre la escisión de tejidos y el procesamiento de laboratorio con el beneficio de estabilizar en gran medida las células del tejido extirpado. Los resultados del presente estudio demuestran que las células valvulares aisladas conservan su capacidad proliferativa y los fenotipos endoteliales e intersticiales en cultivo más de varios días después de la extracción de la válvula del donante. El uso de estos materiales permite la recolección de células de control y CAVD, a partir de las cuales se establecen líneas celulares de control y enfermedad.

Introducción

La valvulopatía aórtica calcificada (CAVD) es una patología crónica caracterizada por inflamación, fibrosis y macrocalcificación de las valvas valvulares aórticas. La remodelación progresiva y la calcificación de las valvas (denominada esclerosis aórtica) pueden conducir a la obstrucción del flujo sanguíneo (estenosis aórtica) que contribuye al accidente cerebrovascular y conduce a la insuficiencia cardíaca. Actualmente, el único tratamiento para la CAVD es el reemplazo quirúrgico o transcatéter de la válvula aórtica (SAVR y TAVR, respectivamente). No existe una opción no quirúrgica para detener o revertir la progresión de la CAVD, y sin reemplazo valvular, las tasas ....

Protocolo

Todas las muestras de pacientes se recogen de individuos inscritos en estudios aprobados por la junta de revisión institucional de la Universidad de Pittsburgh de acuerdo con la Declaración de Helsinki. Los tejidos cadavéricos obtenidos a través del Centro para la Recuperación y Educación de Órganos (CORE) fueron aprobados por el Comité de Supervisión de Investigación y Capacitación Clínica con Difuntos (CORID) de la Universidad de Pittsburgh.

1. Homologación y seguridad

  1. Obtener la aprobación de la Junta de Revisión Institucional (IRB) o un memorando exento para cualquier recolección de muestras de pacientes o tejidos cadavéricos ....

Resultados

El protocolo anterior describe los pasos necesarios para el manejo de tejidos valvulares humanos y el aislamiento y establecimiento de líneas celulares viables a partir de estos tejidos. Las valvas de la válvula aórtica se procesan para la incrustación de parafina, se congelan a presión para su almacenamiento a largo plazo para análisis bioquímicos o genéticos y se digieren para el aislamiento de VEC y CIV (Figura 1). Mientras que las muestras quirúrgicas probablemente tendrán un d.......

Discusión

La obtención de tejidos de control y enfermedades de los seres humanos es fundamental para el modelado de enfermedades in vitro y ex vivo; Sin embargo, mientras que a menudo se habla de los desafíos de cerrar la brecha entre el banco y la cabecera, el orden inverso, pasar de la sala quirúrgica al banco, a menudo es una brecha igual de desalentadora. Esencial para que un científico básico obtenga muestras primarias de tejido humano es una colaboración con un científico cirujano invertido que tenga un equipo de enfe.......

Divulgaciones

IS recibe apoyo institucional de investigación de Atricure y Medtronic y sirve como consultor para Medtronic Vascular. Ninguno de estos conflictos está relacionado con este trabajo. Todos los demás autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Jason Dobbins por la perspicaz discusión y la lectura crítica de este manuscrito. Nos gustaría reconocer al Centro para la Recuperación y Educación de Órganos por su ayuda y apoyo y agradecer a los donantes de tejidos y sus familias por hacer posible este estudio. Todas las muestras de pacientes se recogen de individuos inscritos en estudios aprobados por la junta de revisión institucional de la Universidad de Pittsburgh de acuerdo con la Declaración de Helsinki. Los tejidos cadavéricos obtenidos a través del Centro para la Recuperación y Educación de Órganos (CORE) fueron aprobados por el Comité de Supervisión de Investigación y Capacitación ....

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
0.45 μm filterThermo Scientific7211345Preparing plate with collagen coating
10 cm cell culture plateGreiner Bio-One664160Cell culture/cell line expansion
10 mL serological pipetFisher14955234VEC/VIC isolation, cell culture, cell line expansion
1000 μL filter tipsVWR76322-154Cell culture/cell line expansion
10XL filter tipsVWR76322-132Cell culture/cell line expansion
15 mL conical tubesThermo Scientific339650Tissue storage, VIC/VEC isolation
16% paraformaldehyde aqueous solutionElectron Microscopy Sciences15710STissue and cell fixative
190 proof ethanolDecon2801Disinfection
1x DPBS: no calcium, no magnesiumGibco14190250Saline solution. VIC/VEC isolation
1x PBSFisherBP2944100Saline solution. Tissue preparation, VIC/VEC isolation
20 μL filter tipsVWR76322-134Cell culture/cell line expansion
200 proof ethanolDecon2701Deparaffinizing tissue samples
2-propanolFisherA416P 4Making collagen coated plates
5 mL serological pipetFisher14955233VEC/VIC isolation, cell culture, cell line expansion
50 mL conical tubesThermo Scientific339652Tissue storage, VIC/VEC isolation
60 mm dishGenClone25-260VEC isolation
6-well cell culture plateCorning3516Cell culture/cell line expansion
Acetic acid, glacialFisherBP2401 500Making collagen coated plates
AlexaFluor 488 phalloidinInvitrogenA12379Fluorescent f-actin counterstain
Belzer UW Cold Storage Transplant SolutionBridge to LifeBUW0011LTissue storage solution
Bovine Serum Albumin, Fraction V - Fatty Acid Free 25gBioworld220700233VEC confirmation with CD31+ Dynabeads
Calponin 1 antibody Abcamab46794Primary antibody (VIC positive stain)
CD31 (PECAM-1) (89C2)Cell Signaling3528Primary antibody (VEC positive stain)
CD31+ DynabeadsInvitrogen11155DVEC confirmation with CD31+ Dynabeads
CDH5Cell Signaling2500Primary antibody (VEC positive stain)
Cell strainer with 0.70 μm poresCorning431751VIC isolation
Collagen 1, rat tail proteinGibcoA1048301Making collagen coated plates
Collagenase IIWorthington Biochemical CorporationLS004176Tissue digestion. Tissue preparation, VIC/VEC isolation
Conflikt Ready-to-use Disinfectant SprayDecon4101Disinfection
Countess II Automated Cell CounterInvitrogenA27977Automated cell counter
Countess II reusable slide coverslipsInvitrogen2026hAutomated cell counter required slide cover
CoverslipsFisher125485EMounting valve samples
Cryogenic vialsOlympus Plastics24-202Freezing cells/tissue samples
Disinfecting Bleach with CLOROMAX - Concentrated Formula CloroxN/ADisinfection
DMEMGibco10569044Growth media. VIC expansion
EBM - Endothelial Cell Medium, Basal Medium, Phenol Red free 500Lonza WalkersvilleCC3129Growth media. VEC expansion
EGM-2 Endothelial Cell Medium-2 - 1 kit SingleQuot KitLonza WalkersvilleCC4176Growth media supplement. VEC expansion
EVOS FL MicroscopeLife TechnologiesModel Number: AME3300Fluorescent imaging
EVOS XL MicroscopeLife TechnologiesAMEX1000Visualizing cells during cell line expansion
Fetal Bovine Serum - Premium SelectR&D SystemsS11550VIC expansion
Fine scissorsFine Science Tools14088-10Tissue preparation, VIC/VEC isolation
Fisherbrand Cell ScrapersFisher08-100-241VIC expansion
FungizoneGibco15290-026Antifungal: Tissue preparation, VIC/VEC isolation
GentamicinGibco15710-064Antibiotic: Tissue preparation, VIC/VEC isolation
Glass slidesGlobe Scientific Inc1358Lmounting valve samples
Goat anti-Mouse 488InvitrogenA11001Fluorescent secondary Antibody
Goat anti-Mouse 594InvitrogenA11005Fluorescent secondary Antibody
Goat anti-Rabbit 488InvitrogenA11008Fluorescent secondary Antibody
Goat anti-Rabbit 594InvitrogenA11012Fluorescent secondary Antibody
Invitrogen Countess II FL Reusable SlideInvitrogenA25750Automated cell counter required slide
Invitrogen NucBlue Fixed Cell ReadyProbes Reagent (DAPI)InvitrogenR37606Fluorescent nucleus counterstain
LM-HyCryo-STEM - 2X Cryopreservation media for stem cellsHyClone Laboratories, Inc.SR30002Frozen cell storage
Mounting MediumFisher Chemical PermountSP15-100Mounting valve samples
Mr. Frosty freezing containerNalgene51000001Container for controlled sample freezing
Mycoplasma-ExS SprayPromoCellPK-CC91-5051Disinfection
Penicillin-StreptomycinGibco15140163Antibiotic. VIC expansion
PlasmocinInvivogenANTMPTAnti-mycoplasma. VIC/VEC isolation and expansion
SM22a antibodyAbcamab14106Primary antibody (VIC positive stain)
Sstandard pattern scissorsFine Science Tools14001-14Tissue preparation, VIC/VEC isolation
Sterile cotton swabPuritan25806 10WCVEC isolation
Swingsette human tissue cassetteSimport ScientificM515-2Tissue embedding container
Taylor Forceps (17cm)Fine Science Tools11016-17Tissue preparation, VIC/VEC isolation
Trypan Blue Solution, 0.4%Gibco15250061cell counting solution
TrypLE Express EnzymeGibco12604021Splitting VIC/VECs
Von Kossa kitPolysciences246331Staining paraffin sections of tissues for calcification
von Willebrand factor antibodyAbcamab68545Primary antibody (VEC positive stain)
XylenesFisher ChemicalX3S-4Deparaffinizing tissue samples
αSMA antibodyAbcamab7817Primary antibody (VIC positive stain)

Referencias

  1. Lamprea-Montealegre, J. A., Otto, C. M. Health behaviors and calcific aortic valve disease. Journal of Amercan Heart Association. 7, (2018).
  2. Nishimura, R. A., et al.

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