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Este protocolo describe la colección de válvulas aórticas humanas extraídas durante procedimientos quirúrgicos de reemplazo de válvula aórtica o de tejido cadavérico, y el posterior aislamiento, expansión y caracterización de células endoteliales e intersticiales de válvula primaria específicas del paciente. Se incluyen detalles importantes sobre los procesos necesarios para garantizar la viabilidad celular y la especificidad del fenotipo.
La valvulopatía aórtica calcificante (CAVD) está presente en casi un tercio de la población de edad avanzada. El engrosamiento, endurecimiento y calcificación de la válvula aórtica causa estenosis aórtica y contribuye a la insuficiencia cardíaca y al accidente cerebrovascular. La patogénesis de la enfermedad es multifactorial, y tensiones como la inflamación, la remodelación de la matriz extracelular, el flujo turbulento y el estrés mecánico y la tensión contribuyen a la diferenciación osteogénica de las células endoteliales valvulares e intersticiales valvulares. Sin embargo, los factores iniciadores precisos que impulsan la transición osteogénica de una célula sana a una célula calcificante no están completamente definidos. Además, la única terapia actual para la estenosis aórtica inducida por CAVD es el reemplazo de la válvula aórtica, mediante el cual se extrae la válvula nativa (reemplazo quirúrgico de la válvula aórtica, SAVR) o se inserta una válvula de reemplazo totalmente plegable a través de un catéter (reemplazo de la válvula aórtica transcatéter, TAVR). Estos procedimientos quirúrgicos tienen un alto costo y con graves riesgos; Por lo tanto, es imperativo identificar nuevos objetivos terapéuticos para el descubrimiento de fármacos. Con ese fin, el presente estudio desarrolla un flujo de trabajo en el que los tejidos extirpados quirúrgicamente de pacientes y tejidos de cadáveres de donantes se utilizan para crear líneas primarias específicas del paciente de células valvulares para el modelado de enfermedades in vitro. Este protocolo introduce la utilización de una solución de almacenamiento en frío, comúnmente utilizada en el trasplante de órganos, para reducir el daño causado por el tiempo de obtención a menudo largo entre la escisión de tejidos y el procesamiento de laboratorio con el beneficio de estabilizar en gran medida las células del tejido extirpado. Los resultados del presente estudio demuestran que las células valvulares aisladas conservan su capacidad proliferativa y los fenotipos endoteliales e intersticiales en cultivo más de varios días después de la extracción de la válvula del donante. El uso de estos materiales permite la recolección de células de control y CAVD, a partir de las cuales se establecen líneas celulares de control y enfermedad.
La valvulopatía aórtica calcificada (CAVD) es una patología crónica caracterizada por inflamación, fibrosis y macrocalcificación de las valvas valvulares aórticas. La remodelación progresiva y la calcificación de las valvas (denominada esclerosis aórtica) pueden conducir a la obstrucción del flujo sanguíneo (estenosis aórtica) que contribuye al accidente cerebrovascular y conduce a la insuficiencia cardíaca. Actualmente, el único tratamiento para la CAVD es el reemplazo quirúrgico o transcatéter de la válvula aórtica (SAVR y TAVR, respectivamente). No existe una opción no quirúrgica para detener o revertir la progresión de la CAVD, y sin reemplazo valvular, las tasas ....
Todas las muestras de pacientes se recogen de individuos inscritos en estudios aprobados por la junta de revisión institucional de la Universidad de Pittsburgh de acuerdo con la Declaración de Helsinki. Los tejidos cadavéricos obtenidos a través del Centro para la Recuperación y Educación de Órganos (CORE) fueron aprobados por el Comité de Supervisión de Investigación y Capacitación Clínica con Difuntos (CORID) de la Universidad de Pittsburgh.
1. Homologación y seguridad
El protocolo anterior describe los pasos necesarios para el manejo de tejidos valvulares humanos y el aislamiento y establecimiento de líneas celulares viables a partir de estos tejidos. Las valvas de la válvula aórtica se procesan para la incrustación de parafina, se congelan a presión para su almacenamiento a largo plazo para análisis bioquímicos o genéticos y se digieren para el aislamiento de VEC y CIV (Figura 1). Mientras que las muestras quirúrgicas probablemente tendrán un d.......
La obtención de tejidos de control y enfermedades de los seres humanos es fundamental para el modelado de enfermedades in vitro y ex vivo; Sin embargo, mientras que a menudo se habla de los desafíos de cerrar la brecha entre el banco y la cabecera, el orden inverso, pasar de la sala quirúrgica al banco, a menudo es una brecha igual de desalentadora. Esencial para que un científico básico obtenga muestras primarias de tejido humano es una colaboración con un científico cirujano invertido que tenga un equipo de enfe.......
IS recibe apoyo institucional de investigación de Atricure y Medtronic y sirve como consultor para Medtronic Vascular. Ninguno de estos conflictos está relacionado con este trabajo. Todos los demás autores no tienen nada que revelar.
Nos gustaría agradecer a Jason Dobbins por la perspicaz discusión y la lectura crítica de este manuscrito. Nos gustaría reconocer al Centro para la Recuperación y Educación de Órganos por su ayuda y apoyo y agradecer a los donantes de tejidos y sus familias por hacer posible este estudio. Todas las muestras de pacientes se recogen de individuos inscritos en estudios aprobados por la junta de revisión institucional de la Universidad de Pittsburgh de acuerdo con la Declaración de Helsinki. Los tejidos cadavéricos obtenidos a través del Centro para la Recuperación y Educación de Órganos (CORE) fueron aprobados por el Comité de Supervisión de Investigación y Capacitación ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.45 μm filter | Thermo Scientific | 7211345 | Preparing plate with collagen coating |
10 cm cell culture plate | Greiner Bio-One | 664160 | Cell culture/cell line expansion |
10 mL serological pipet | Fisher | 14955234 | VEC/VIC isolation, cell culture, cell line expansion |
1000 μL filter tips | VWR | 76322-154 | Cell culture/cell line expansion |
10XL filter tips | VWR | 76322-132 | Cell culture/cell line expansion |
15 mL conical tubes | Thermo Scientific | 339650 | Tissue storage, VIC/VEC isolation |
16% paraformaldehyde aqueous solution | Electron Microscopy Sciences | 15710S | Tissue and cell fixative |
190 proof ethanol | Decon | 2801 | Disinfection |
1x DPBS: no calcium, no magnesium | Gibco | 14190250 | Saline solution. VIC/VEC isolation |
1x PBS | Fisher | BP2944100 | Saline solution. Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
20 μL filter tips | VWR | 76322-134 | Cell culture/cell line expansion |
200 proof ethanol | Decon | 2701 | Deparaffinizing tissue samples |
2-propanol | Fisher | A416P 4 | Making collagen coated plates |
5 mL serological pipet | Fisher | 14955233 | VEC/VIC isolation, cell culture, cell line expansion |
50 mL conical tubes | Thermo Scientific | 339652 | Tissue storage, VIC/VEC isolation |
60 mm dish | GenClone | 25-260 | VEC isolation |
6-well cell culture plate | Corning | 3516 | Cell culture/cell line expansion |
Acetic acid, glacial | Fisher | BP2401 500 | Making collagen coated plates |
AlexaFluor 488 phalloidin | Invitrogen | A12379 | Fluorescent f-actin counterstain |
Belzer UW Cold Storage Transplant Solution | Bridge to Life | BUW0011L | Tissue storage solution |
Bovine Serum Albumin, Fraction V - Fatty Acid Free 25g | Bioworld | 220700233 | VEC confirmation with CD31+ Dynabeads |
Calponin 1 antibody | Abcam | ab46794 | Primary antibody (VIC positive stain) |
CD31 (PECAM-1) (89C2) | Cell Signaling | 3528 | Primary antibody (VEC positive stain) |
CD31+ Dynabeads | Invitrogen | 11155D | VEC confirmation with CD31+ Dynabeads |
CDH5 | Cell Signaling | 2500 | Primary antibody (VEC positive stain) |
Cell strainer with 0.70 μm pores | Corning | 431751 | VIC isolation |
Collagen 1, rat tail protein | Gibco | A1048301 | Making collagen coated plates |
Collagenase II | Worthington Biochemical Corporation | LS004176 | Tissue digestion. Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Conflikt Ready-to-use Disinfectant Spray | Decon | 4101 | Disinfection |
Countess II Automated Cell Counter | Invitrogen | A27977 | Automated cell counter |
Countess II reusable slide coverslips | Invitrogen | 2026h | Automated cell counter required slide cover |
Coverslips | Fisher | 125485E | Mounting valve samples |
Cryogenic vials | Olympus Plastics | 24-202 | Freezing cells/tissue samples |
Disinfecting Bleach with CLOROMAX - Concentrated Formula | Clorox | N/A | Disinfection |
DMEM | Gibco | 10569044 | Growth media. VIC expansion |
EBM - Endothelial Cell Medium, Basal Medium, Phenol Red free 500 | Lonza Walkersville | CC3129 | Growth media. VEC expansion |
EGM-2 Endothelial Cell Medium-2 - 1 kit SingleQuot Kit | Lonza Walkersville | CC4176 | Growth media supplement. VEC expansion |
EVOS FL Microscope | Life Technologies | Model Number: AME3300 | Fluorescent imaging |
EVOS XL Microscope | Life Technologies | AMEX1000 | Visualizing cells during cell line expansion |
Fetal Bovine Serum - Premium Select | R&D Systems | S11550 | VIC expansion |
Fine scissors | Fine Science Tools | 14088-10 | Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Fisherbrand Cell Scrapers | Fisher | 08-100-241 | VIC expansion |
Fungizone | Gibco | 15290-026 | Antifungal: Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Gentamicin | Gibco | 15710-064 | Antibiotic: Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Glass slides | Globe Scientific Inc | 1358L | mounting valve samples |
Goat anti-Mouse 488 | Invitrogen | A11001 | Fluorescent secondary Antibody |
Goat anti-Mouse 594 | Invitrogen | A11005 | Fluorescent secondary Antibody |
Goat anti-Rabbit 488 | Invitrogen | A11008 | Fluorescent secondary Antibody |
Goat anti-Rabbit 594 | Invitrogen | A11012 | Fluorescent secondary Antibody |
Invitrogen Countess II FL Reusable Slide | Invitrogen | A25750 | Automated cell counter required slide |
Invitrogen NucBlue Fixed Cell ReadyProbes Reagent (DAPI) | Invitrogen | R37606 | Fluorescent nucleus counterstain |
LM-HyCryo-STEM - 2X Cryopreservation media for stem cells | HyClone Laboratories, Inc. | SR30002 | Frozen cell storage |
Mounting Medium | Fisher Chemical Permount | SP15-100 | Mounting valve samples |
Mr. Frosty freezing container | Nalgene | 51000001 | Container for controlled sample freezing |
Mycoplasma-ExS Spray | PromoCell | PK-CC91-5051 | Disinfection |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140163 | Antibiotic. VIC expansion |
Plasmocin | Invivogen | ANTMPT | Anti-mycoplasma. VIC/VEC isolation and expansion |
SM22a antibody | Abcam | ab14106 | Primary antibody (VIC positive stain) |
Sstandard pattern scissors | Fine Science Tools | 14001-14 | Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Sterile cotton swab | Puritan | 25806 10WC | VEC isolation |
Swingsette human tissue cassette | Simport Scientific | M515-2 | Tissue embedding container |
Taylor Forceps (17cm) | Fine Science Tools | 11016-17 | Tissue preparation, VIC/VEC isolation |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Gibco | 15250061 | cell counting solution |
TrypLE Express Enzyme | Gibco | 12604021 | Splitting VIC/VECs |
Von Kossa kit | Polysciences | 246331 | Staining paraffin sections of tissues for calcification |
von Willebrand factor antibody | Abcam | ab68545 | Primary antibody (VEC positive stain) |
Xylenes | Fisher Chemical | X3S-4 | Deparaffinizing tissue samples |
αSMA antibody | Abcam | ab7817 | Primary antibody (VIC positive stain) |
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