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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

El protocolo presentado describe la homogeneización de muestras con un mezclador de laboratorio, la digestión ácida de muestras de alimentos utilizando una mezcla de 68% en peso deHNO3 y 30% en peso deH2O2a través de digestión ácida húmeda asistida por microondas, y la determinación de elementos múltiples realizada con espectrometría de masas de plasma acoplado inductivamente. 

Resumen

La preparación de la muestra es crucial para la determinación elemental, y existen varias técnicas, una de las cuales implica la homogeneización seguida de la digestión ácida. Se requiere un cuidado especial durante la manipulación de la muestra en la etapa de preparación para eliminar o minimizar la posible contaminación y pérdida de analito. La homogeneización es un proceso que reduce simultáneamente el tamaño de partícula y distribuye uniformemente los componentes de la muestra. Después de la homogeneización, la muestra se somete a una digestión ácida, en la que se digiere con ácidos y productos químicos auxiliares a temperaturas elevadas, transformando las muestras sólidas en estado líquido. En este proceso, los metales de la muestra original reaccionan con los ácidos para formar sales solubles en agua. Las muestras preparadas mediante digestión ácida son adecuadas para el análisis elemental utilizando técnicas como la espectrometría de masas de plasma acoplado inductivamente, la espectroscopia de emisión óptica de plasma acoplado inductivamente, la espectroscopia de absorción atómica, los métodos electroquímicos y otras técnicas analíticas. En este trabajo se detalla la preparación de muestras de alimentos para la determinación de elementos múltiples mediante espectrometría de masas de plasma acoplado inductivamente. El procedimiento paso a paso implica el proceso de homogeneización utilizando un mezclador de tamaño de laboratorio con cuchillas de cerámica, seguido de la digestión ácida en recipientes cerrados utilizando la digestión ácida húmeda asistida por microondas. Una mezcla de 5,0 mL de 68% en peso deHNO3 y 1,0 mL de 30% en peso deH2O2 sirve como reactivo auxiliar. Esta guía proporciona una explicación de los procesos involucrados en ambas etapas.

Introducción

El análisis elemental es un proceso analítico para determinar la composición elemental de varias muestras. Se puede utilizar para controlar la ingesta de metales en el cuerpo humano (especialmente metales pesados1) ya que sus altas concentraciones pueden causar problemas de salud no deseados. Los metales pesados también son uno de los principales contaminantes ambientales, por lo tanto, es necesario el control de su presencia en el medio ambiente2. Además, el análisis elemental puede emplearse para determinar el origen geográfico de los productos alimenticios3 y para controlar la calidad de los alimentos y los recursos hídricos4. Además, se utiliza para la determinación de micro y macronutrientes en los suelos5 y para obtener información sobre los procesos geológicos a lo largo de la historia mediante el examen de la composición química de minerales y sedimentos6. También se han realizado estudios para determinar la presencia de metales raros en residuos eléctricos y electrónicos para su posterior regeneración de metales7, para evaluar el éxito de los tratamientos farmacológicos8 y para verificar la composición elemental de los implantes metálicos9.

La espectrometría de masas con plasma acoplado inductivamente (ICP-MS) y la espectroscopia de emisión óptica con plasma acoplado inductivamente (ICP-OES) son técnicas comúnmente utilizadas para el análisis elemental de diversas muestras10. Permiten la determinación simultánea de múltiples elementos con límites de detección (LOD) y límites de cuantificación (LOQ) tan bajos como ng/L. En general, ICP-MS tiene valores de LOD11 más bajos y un rango de concentración lineal más amplio en comparación con ICP-OES12. Otras técnicas para determinar la composición elemental son la espectrometría de emisión óptica de plasma inducida por microondas13 y varias variantes de espectroscopia de absorción atómica (AAS), incluida la espectroscopia de absorción atómica de llama, la espectroscopia de absorción atómica electrotérmica2, la espectroscopia de absorción atómica de vapor frío y la espectroscopia de absorción atómica de generación de hidruros14. Además, la determinación elemental con bajo LOD y LOQ es posible con diferentes métodos electroanalíticos, especialmente con voltamperometría de stripping anódico15,16. Por supuesto, existen otros métodos para determinar la composición elemental de las muestras, pero no se emplean con tanta frecuencia como los métodos mencionados anteriormente.

La determinación elemental directa de muestras sólidas es factible utilizando espectroscopía de ruptura inducida por láser y fluorescencia de rayos X17. Sin embargo, para la determinación elemental con ICP-MS, ICP-OES y AAS es necesario convertir las muestras sólidas en estado líquido. Para ello, la digestión ácida se realiza utilizando ácidos y reactivos auxiliares (en la mayoría de los casosH2O2). La digestión ácida se realiza a temperatura y presión elevadas, convirtiendo la parte orgánica de la muestra en productos gaseosos y convirtiendo los elementos metálicos en sales solubles en agua, disolviéndolos así en la solución18.

Hay dos tipos principales de digestión ácida, la digestión de vasos abiertos y la digestión de vasos cerrados. La digestión en recipiente abierto es rentable14 pero tiene limitaciones, como la temperatura máxima de digestión, que coincide con la temperatura de ebullición de los ácidos a presión atmosférica. La muestra se puede calentar en placas calefactoras, bloques calefactores, baños de agua, baños de arena2 y microondas19. Al calentar la muestra de esa manera, gran parte del calor generado se pierde en el entorno20, lo que prolonga el tiempo de digestión14. Otras desventajas de la digestión en recipientes abiertos incluyen un mayor consumo de productos químicos, la mayor posibilidad de contaminación del ambiente circundante y la posible pérdida de analitos debido a la formación de componentes volátiles y su evaporación de la mezcla de reacción21.

Los sistemas de recipientes cerrados son más convenientes para la digestión de muestras orgánicas e inorgánicas en comparación con los sistemas de recipientes abiertos. Los sistemas de recipientes cerrados utilizan una variedad de fuentes de energía para calentar las muestras, como el calentamiento por conducción y las microondas22. Los métodos de digestión que utilizan microondas incluyen la combustión inducida por microondas23, los sistemas de cámara de reacción única24 y la digestión ácida húmeda asistida por microondas (MAWD) de uso común25,26. MAWD permite la digestión a temperaturas de funcionamiento más altas, que oscilan entre 220 °C y 260 °C y presiones máximas de hasta 200 bar, dependiendo de las condiciones de trabajo del instrumento27.

La eficiencia y la tasa de MAWD dependen de varios factores, incluyendo la composición química de las muestras, la temperatura máxima, el gradiente de temperatura, la presión en el recipiente de reacción, la cantidad de ácidos añadidos y la concentración de ácidos utilizados28. En MAWD, la digestión ácida completa se puede lograr en unos pocos minutos debido a las condiciones de reacción elevadas en comparación con las digestiones más duraderas en sistemas de recipientes abiertos. Se requieren volúmenes y concentraciones más bajos de ácidos en MAWD, lo que está en línea con las pautas actuales de química verde29. En MAWD, se necesita una cantidad menor de muestra en comparación con la digestión en recipiente abierto para realizar la digestión ácida, por lo general, hasta 500 mg de muestra son suficientes 30,31,32. Se pueden digerir grandes cantidades de muestras, pero requieren una mayor cantidad de productos químicos.

Dado que el instrumento para MAWD controla automáticamente las condiciones de reacción y la persona no entra en contacto directo con los productos químicos durante el calentamiento, MAWD es más seguro de operar que las digestiones de recipientes abiertos. Sin embargo, la persona siempre debe proceder con precaución al agregar productos químicos a los recipientes de reacción para evitar que entren en contacto con el cuerpo y causen daño. Los recipientes de reacción también deben abrirse lentamente, ya que la presión se acumula en su interior durante la digestión ácida.

Aunque la digestión ácida es una técnica útil para la preparación de muestras para la determinación elemental, la persona que la realiza debe ser consciente de sus posibles limitaciones. La digestión ácida puede no ser adecuada para todas las muestras, especialmente aquellas con matrices complejas y aquellas que son altamente reactivas o podrían reaccionar explosivamente. Por lo tanto, la composición de la muestra siempre debe evaluarse para seleccionar los productos químicos y las condiciones de reacción apropiados para una digestión completa que disuelva todos los elementos deseados en la solución. Otras preocupaciones que el usuario debe tener en cuenta y abordar son las impurezas y la pérdida de analitos en cada paso de la preparación de la muestra. La digestión ácida debe realizarse siempre de acuerdo con normas específicas o mediante protocolos.

El protocolo que se describe a continuación proporciona instrucciones para la homogeneización de muestras de alimentos en un mezclador de tamaño de laboratorio, un procedimiento para limpiar los componentes del mezclador, pesar adecuadamente la muestra, agregar productos químicos, realizar la digestión ácida mediante MAWD, limpiar los recipientes de reacción una vez completada la digestión, preparar las muestras para la determinación elemental y realizar una determinación cuantitativa de múltiples elementos con ICP-MS. Siguiendo las instrucciones que se dan a continuación, se debería poder preparar una muestra adecuada para la determinación elemental y realizar las mediciones de las muestras digeridas.

Protocolo

1. Homogeneización de muestras

  1. Con un cuchillo de cerámica limpio, corte manualmente las muestras de alimentos (brócoli, champiñones, salchichas y fideos) en trozos más pequeños para acelerar el proceso de secado. Prepare suficientes muestras para un mínimo de 6 réplicas de la digestión ácida (asegúrese de que la masa mínima de las muestras secas sea de 1500 mg).
    NOTA: Al aumentar el área de superficie de la muestra, se expone una porción más grande de la muestra al aire circundante calentado, lo que aumenta la tasa de evaporación del agua.
  2. Colocar la muestra en un vaso de precipitados de vidrio de 250 ml y secarla a 105 °C con un peso constante utilizando un secador.
  3. Retire el vaso de vidrio con la muestra de la secadora e insértelo en el desecador.
  4. Deje que la muestra se enfríe a temperatura ambiente.
    NOTA: Las muestras deben pesarse a una temperatura constante para garantizar que el peso refleje con precisión la masa. Las variaciones de temperatura pueden afectar el volumen y la densidad de las muestras medidas.
  5. Abra el desecador y transfiera el vaso de vidrio con la muestra en la balanza analítica. Mida el peso del vaso de vidrio con la muestra.
  6. Una vez completado el pesaje, vuelva a colocar la muestra en la secadora.
    NOTA: Si la muestra se encogió significativamente durante el secado, se podría transferir a un vaso de vidrio más pequeño utilizando una espátula de plástico para un pesaje más conveniente.
  7. Repita el proceso como se describe en los pasos 1.3-1.6 hasta lograr un peso constante de la muestra.
  8. Introduzca la muestra heterogénea seca en el vaso mezclador (véase la tabla de materiales), asegurándose de que no supere el volumen máximo del vaso mezclador.
  9. Inserte el vaso mezclador en el mezclador y cierre la puerta de protección (Figura 1).
  10. Presione el botón de inicio para activar las cuchillas para moler y mezclar la muestra.
  11. Realice la molienda hasta que la muestra se convierta en un polvo fino o en una pasta homogénea. Para lograr dicho producto, repita el proceso de molienda varias veces.
  12. Cuando la muestra esté homogeneizada, apague el mezclador, abra la puerta de protección y retire el vaso de precipitados del mezclador.
  13. Retire la muestra homogeneizada del vaso mezclador y transfiérala a un vaso de precipitados de vidrio limpio de 50 ml con una espátula de plástico limpia (Figura 2).
    NOTA: Si la muestra es demasiado dura y podría dañar los componentes de la mezcladora, como las cuchillas y el vaso de precipitados de la mezcladora, se puede homogeneizar por otros medios, como triturarla en morteros. Los mezcladores no suelen ser adecuados para homogeneizar materiales duros, muestras congeladas o muestras fácilmente inflamables, lo que podría dañar los componentes del mezclador. Se desaconseja el uso de disolventes orgánicos en el mezclador.
    PRECAUCIÓN: Use equipo de seguridad y asegúrese de que la puerta de la batidora esté bien cerrada a medida que las cuchillas de la batidora giran a altas velocidades.

2. Limpieza del mezclador

  1. Añada agua ultrapura (véase la tabla de materiales) a la marca del vaso mezclador vacío.
  2. Inserte el vaso mezclador en el mezclador y realice el procedimiento de mezcla estándar.
  3. Saque el vaso de precipitados de la batidora y vierta las aguas residuales. Si es necesario, repita el proceso con agua ultrapura varias veces hasta que el agua permanezca limpia incluso después de mezclar.
  4. Retire las cuchillas y el sello de diafragma contaminados de la batidora y límpielos a fondo con agua ultrapura.
    NOTA: Utilice detergentes neutros para mejorar la eficiencia de la limpieza, especialmente cuando se trata de muestras con un alto contenido de grasa, ya que la grasa se adhiere fácilmente a la superficie del inventario del laboratorio.
    PRECAUCIÓN: Use el equipo de protección adecuado, como guantes, al quitar y limpiar las cuchillas para reducir el riesgo de posibles lesiones por sus bordes afilados.
  5. Seque los componentes limpios en la secadora a 105 °C y vuelva a insertarlos en la batidora.
    NOTA: Asegúrese de que los componentes del mezclador estén completamente secos antes de volver a instalarlos en el mezclador, para evitar el arrastre del agua a la siguiente muestra.

3. Pesaje de muestras

  1. Retire la tapa del recipiente de reacción TFM-PTFE de 100 ml de trifluorometoxilo-politetrafluoroetileno33.
  2. Coloque el recipiente de reacción abierto en la balanza analítica y asegúrese de que la balanza esté nivelada y puesta a cero antes de cada medición (Figura 3).
    NOTA: El pesaje debe realizarse a temperatura ambiente. Evite las áreas donde las fluctuaciones severas de temperatura y el flujo de aire puedan afectar el peso medido. Asegúrese de que el área de pesaje esté limpia y libre de contaminantes.
  3. Transfiera la muestra homogeneizada al recipiente de reacción con una espátula de plástico y pese 250 mg de la muestra. No pese la muestra por debajo del límite de peso mínimo de la balanza analítica.
  4. Una vez finalizado el pesaje, coloque la tapa de la tapa en el recipiente de reacción para proteger la muestra de la contaminación.
    NOTA: Exceder el límite de peso del procedimiento de digestión puede resultar en una digestión incompleta. Manipule la muestra y los recipientes de reacción con cuidado para evitar cualquier contaminación externa.

4. Adición de ácido

  1. Vierta aproximadamente 40,0 ml de HNO3 al 68 % en peso y 5,0 ml de 30 % en peso de H2O2 en vasos de precipitados de vidrio de 50 ml separados, respectivamente.
    NOTA: Los productos químicos deben ser de alta pureza con impurezas de metales traza de menos de 1,0 μg/L (ppb), idealmente en el rango de ng/L (ppt). Las impurezas de trazas de metales afectan la precisión y la repetibilidad de la determinación elemental.
  2. Coloque los recipientes de reacción en una campana extractora, abra las tapas de la tapa y agregue los volúmenes mencionados a continuación de 68 % en peso de HNO3 y 30 % en peso de H2O2 con pipetas automáticas de 1 ml o 5 ml, de acuerdo con las siguientes especificaciones:
    1. brócoli, champiñones, salchichas y fideos; por 250 mg de muestra añadir 5,0 mL 68% en peso de HNO3 y 1,0 mL 30% en peso de H2O2. Prepare tres réplicas para cada muestra.
    2. Para determinar la precisión del método (en términos de recuperación, Rec), utilice el procedimiento descrito en el paso 4.2.1 y añada 37,5 μL de solución patrón multielemento ICP de 100 mg/L (véase la Tabla de materiales) en los recipientes de reacción utilizando una pipeta automática de 200 μL. Para cada muestra, prepare tres réplicas.
      NOTA: Se seleccionó el volumen de 37,5 μL porque corresponde a un aumento de 15,0 μg/L para las soluciones enriquecidas de las muestras en comparación con la concentración en las soluciones no enriquecidas de las muestras. Además, el aumento de la concentración para la solución enriquecida de las muestras corresponde a la concentración final que todavía se encuentra en el rango de concentración lineal para cada analito medido.
    3. Preparar una muestra en blanco utilizando el mismo volumen de 68 % en peso de HNO3 y 30 % en peso deH2O2 que se utiliza para la digestión de muestras de alimentos en el paso 4.2.1. Para una muestra en blanco, no agregue la muestra a los recipientes de reacción.
      PRECAUCIÓN: El HNO3 utilizado para la digestión es corrosivo y produce humos. Por esta razón, la adición de ácido debe realizarse en una campana extractora. Se debe emplear equipo de protección de laboratorio estándar (guantes, gafas de seguridad y bata de laboratorio). Si hay contacto con ácido, el área afectada debe enjuagarse inmediatamente con un chorro de agua fría y se debe buscar ayuda médica.
  3. Coloque la tapa de la tapa en los recipientes de reacción y deje que las muestras reaccionen con el 68% en peso de HNO3 y el 30% en peso de H2O2 durante 2-3 min.
  4. Atornille la tapa de la rosca en el recipiente y apriete las tapas de la tapa.
  5. Agite el recipiente de reacción con ligeros movimientos de la mano para incorporar completamente las muestras a los productos químicos.
    NOTA: No deje las muestras en las paredes o tapas de los recipientes de reacción, ya que existe la posibilidad de que no se digieran por completo.

5. Digestión ácida húmeda asistida por microondas

  1. Encienda el sistema de microondas (consulte la Tabla de materiales) para la digestión ácida presionando el botón de inicio (Figura 4).
  2. Abra la puerta del horno microondas y retire la rejilla.
  3. Distribuya los recipientes de reacción cerrados simétricamente en el bastidor para garantizar una irradiación uniforme de las muestras mediante microondas.
  4. Inserte la rejilla en la cámara del microondas y móntela en un soporte (Figura 5).
  5. Cierre la puerta del horno microondas.
  6. Establezca un programa de digestión adecuado en la pantalla táctil del horno microondas con una herramienta en forma de bolígrafo. Elija un gradiente de temperatura adecuado, la temperatura final y el número de muestras que se van a digerir. El programa de digestión recomendado para diferentes muestras de alimentos se enumera a continuación:
    1. Brócoli, champiñones, salchichas y fideos: 10 min de aumento a 160 °C, 10 min de aumento a 200 °C, 15 min a 200 °C, potencia máxima de 900 W.
  7. Inicie el programa de digestión y controle el cambio en las condiciones de reacción en la pantalla. Detenga el proceso de digestión si la temperatura no aumenta de acuerdo con el programa prescrito.
    NOTA: Durante la digestión, se pueden ver picos repentinos de temperatura en la pantalla del horno microondas. Se producen cuando las muestras reaccionan exotérmicamente con los productos químicos. El sistema de microondas regulará automáticamente la temperatura ajustando la potencia de salida.
  8. Espere hasta que se complete la digestión asistida por microondas y la temperatura de la muestra disminuya.
  9. Abra la puerta del horno microondas y retire la rejilla de la cámara del horno microondas. Cierre la puerta y apague el instrumento.
  10. Retire los recipientes de reacción de la rejilla y espere a que se enfríen a temperatura ambiente.
  11. Abra lentamente las tapas de las tapas manualmente para liberar los gases formados durante la digestión ácida. Gire los recipientes de reacción en la dirección de la campana extractora (Figura 6).
  12. Retire completamente la tapa y enjuague la tapa y las paredes del recipiente de reacción con una pequeña cantidad de agua ultrapura.
  13. Transfiera cuantitativamente el contenido del recipiente de reacción a un matraz volumétrico de vidrio limpio de 25 ml a través de un embudo de vidrio enjuagando repetidamente la tapa y el recipiente de reacción con agua ultrapura.
  14. Diluir la muestra con agua ultrapura hasta la marca del matraz aforado. Cierre el matraz aforado con un tapón y mezcle el contenido del matraz aforado.
    NOTA: Se debe realizar una dilución adicional de las muestras digeridas con agua ultrapura, ya que deben contener menos del 5% (V/V) de ácidoresidual 34 y menos de 2 g/L de elementos disueltos, también denominados sólidos disueltos totales35.
  15. Tome una jeringa de plástico de 20 ml y conéctela con un filtro de jeringa de poliamida (25 mm de diámetro, tamaño de poro de 0,20 μm). Llene la jeringa de plástico con la muestra diluida y filtre su contenido en un tubo de centrífuga de plástico de 50 ml aplicando presión. Utilice una jeringa de plástico nueva y un filtro de jeringa para cada muestra para evitar cualquier contaminación cruzada.
    NOTA: Las muestras deben filtrarse para eliminar cualquier material insoluble o partículas sólidas que puedan quedar sin digerir después de MAWD. Estas partículas pueden interferir con las mediciones de determinación elemental al obstruir los componentes del instrumento. Al filtrar las muestras, asegúrese de desechar el primer par de gotas. Utilice filtros hidrófilos (hechos de poliamida) para soluciones acuosas. Los filtros hidrófobos (PTFE) no son adecuados para la filtración de soluciones acuosas, ya que requieren una presión aplicada más alta, lo que podría provocar la ruptura de la membrana36.
  16. Cierre el tubo de centrífuga de plástico de 50 ml con un tapón de rosca y coloque la muestra en el refrigerador hasta las mediciones.
    NOTA: Las muestras digeridas se almacenan en el refrigerador a temperaturas más bajas para conservarlas y prolongar su tiempo de almacenamiento.

6. Limpieza del recipiente de reacción

  1. Después de transferir las muestras digeridas a matraces aforuados de 50 ml, añadir 5,0 ml de HNO3 al 68 % en peso y 5,0 ml de agua ultrapura con pipetas automáticas de 5 ml en los recipientes de reacción.
  2. Cierre los recipientes de reacción con las tapas de la tapa e insértelos en la rejilla. Transfiera la rejilla a la cámara del horno microondas.
  3. Aplicar el siguiente programa de microondas: aumento de 15 min a 160 °C, aumento de 10 min a 180 °C, potencia máxima 900 W.
  4. Controle las condiciones de reacción durante el calentamiento. Una vez completado el calentamiento, deje que los recipientes de reacción se enfríen.
  5. Abra el horno microondas, retire los recipientes de reacción de la rejilla y ábralos lentamente en la campana extractora.
  6. Deseche el contenido de los recipientes de reacción en contenedores de residuos plásticos.
  7. Enjuague los recipientes de reacción con agua ultrapura para eliminar cualquier exceso de material o productos químicos.
  8. Seque los recipientes de reacción en la secadora a 105 °C antes del siguiente uso.
    NOTA: Se puede utilizar el mismo procedimiento de microondas (tiempo, potencia, gradiente de temperatura y volumen de productos químicos) utilizado para la digestión ácida de las muestras para limpiar los recipientes de reacción. Alternativamente, los recipientes de reacción se pueden limpiar sin el sistema de microondas sumergiéndolos en HNO3 o HCl concentrado durante varias horas y enjuagándolos con agua ultrapura.

7. Determinación de elementos múltiples con ICP-MS

  1. Saca del refrigerador los tubos de centrífuga de plástico de 50 ml que contienen las muestras digeridas y deja que se calienten a temperatura ambiente.
  2. Diluir las muestras por un factor de 10 para disminuir la concentración de ácido en la muestra digerida y disminuir la concentración del componente de la matriz de la muestra. Con una pipeta automática, transfiera 2,50 ml de la muestra a un matraz aforado de vidrio de 25 ml y luego llénelo hasta la marca con agua ultrapura.
  3. Transfiera las muestras diluidas a los tubos de plástico de 15 ml y colóquelas en las posiciones adecuadas en el muestreador automático.
  4. Prepare el instrumento ICP-MS (ver Tabla de Materiales) para las mediciones:
    1. Encienda la ventilación y el enfriador que suministra agua de refrigeración al ICP-MS y enfría sus componentes.
    2. Utilice el software compatible para asegurarse de que la solución de enjuague (1 % en peso de HNO3) fluya continuamente desde el muestreador automático hasta el ICP-MS sin pulsaciones.
    3. Cilindros de gas Open Ar (99,999% de pureza) y He (99,999% de pureza) para suministrar ambos gases al ICP-MS. Compruebe el flujo de gas en el software y ajústelo si es necesario.
      NOTA: Utilice la celda de colisión con gas He cuando se esperen interferencias espectrales debidas a la formación de iones poliatómicos (por ejemplo, 40Ar16O+ que interfieren con 56Fe+)37.
    4. Ponga en marcha el plasma y calibre el instrumento utilizando la solución de afinación (consulte la Tabla de materiales).
    5. Una vez calibrado el instrumento (posición de la antorcha, voltaje de ganancia, voltaje de la lente, masa/resolución, calibración de pulso/analógico (P/A), calibración de base de datos (DB) y validación), seleccione el método de medición deseado y realice las mediciones.
  5. Cuando se trabaja con muestras desconocidas, se realiza una determinación semicuantitativa para obtener información sobre qué elementos están presentes en la muestra y su concentración aproximada.
    NOTA: Es aconsejable diluir adicionalmente las muestras para la determinación semicuantitativa, ya que los detectores tienen un límite de concentración de elementos que pueden detectar a la vez. Las concentraciones de muestra más bajas pueden prolongar la vida útil de los componentes del instrumento.
  6. Después de obtener los datos sobre las concentraciones aproximadas de los elementos en las muestras, cree un método para la determinación elemental cuantitativa en el software. Seleccione las condiciones de funcionamiento del ICP-MS (Tabla 1) y seleccione los elementos deseados (en este caso Cu, Fe, Mn y Zn). Determine el número y las concentraciones de soluciones del patrón necesarias para crear una curva de calibración (a veces denominada curva analítica o curva de trabajo) (Tabla 1).
    NOTA: Prepare al menos seis concentraciones diferentes como puntos de calibración para la curva de calibración.
  7. Preparar soluciones de patrón para la curva de calibración. Utilizando pipetas automáticas, pipetear el volumen requerido de soluciones patrón multielemento de 100 mg/L en matraces volumétricos de vidrio de 25 mL, para preparar soluciones de patrones con las siguientes concentraciones: 1,0 μg/L, 2,5 μg/L, 5,0 μg/L, 10,0 μg/L, 20,0 μg/L, 30,0 μg/L, 40,0 μg/L y 50,0 μg/L. Llene los matraces hasta la marca con 1 % en peso de HNO3. Además, prepare un blanco de calibración con la solución HNO3 al 1 % en peso.
  8. Transfiera las soluciones preparadas de patrón y muestras a los tubos de plástico de 15 ml, colóquelos en el muestreador automático y ponga en marcha el instrumento siguiendo el procedimiento descrito en el paso 7.4.
  9. Realizar la medición cuantitativa de los elementos seleccionados utilizando la metodología de la curva de calibración.
  10. Una vez completadas las mediciones, apague el plasma, cierre los suministros de gas Ar y He, apague el enfriador ICP-MS y apague el sistema de ventilación.

Resultados

Homogeneización
Todas las muestras se secaron hasta obtener una masa constante con el secador de laboratorio para eliminar la humedad. La transferencia de la muestra a un desecador permitió que se enfriara a temperatura ambiente sin retener la humedad del entorno circundante. A continuación, las muestras de alimentos se homogeneizaron utilizando el mezclador de laboratorio para obtener un polvo fino. Las partículas homogeneizadas resultantes fueron uniformes en tamaño y distribuidas uniformemente...

Discusión

Homogeneización
Para garantizar resultados reproducibles en la determinación elemental, es necesario homogeneizar las muestras antes de la digestión ácida debido a su estructura y composición complejas y poco homogéneas. La homogeneización tiene como objetivo eliminar la heterogeneidad constitucional y distributiva. La mezcla de la muestra minimiza la heterogeneidad distribucional al redistribuir uniformemente los componentes en toda la muestra. Del mismo modo, al reducir el tamaño de partícu...

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores agradecen el apoyo financiero de la Agencia Eslovena de Investigación (subvención Nº P2-0414, P2-0118, J1-2470, NK-0001 y J1-4416).

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Ar gasMesser7440-37-1Ar 5.0 gas (purity 99.999%).
AS-10 Autosampler systemShimadzuAutosampler connected to the ICP-MS, containing 68 ports for samples.
Automatic pipettesSartorius200 µL, 1 mL, and 5 mL automatic pipettes.
Balance XSE104Mettler Toledo, Columbus, Ohio, USAAnalytical balance scale with a maximum weighing mass of 120 g.
Ceramic knifeCeramic knife used for cutting fresh food samples.
DessicatorGlass desiccator with lumps of silica gel.
ETHOS LEANMilestone, Sorisole, ItalyMicrowave system for wet acid digestion in closed 100 mL vessels made of TFM-PTFE.
Fume hoodLaboratory fume hood with adjustable air flow.
Glass beakers RASOTHERMCarlRoth GmbH + Co.KG50 mL, 250 mL glass beakers
Glass funnelsSmall glass funnels fitting into the neck of volumetric flasks.
He gasMesser7440-59-7He 5.0 gas (purity 99.999%).
Hydrogen peroxideThermoFisher Scientific7722-84-1Hxdrogen peroxide 100 volumes 30 wt.% solution. Laboratory reagent grade.
ICP multi-element standard solution VIIISupelco109492100 mg/L ICP multi-element standard solution containing 24 elements (Al, B, Ba, Be, Bi, Ca, Cd, Co, Cr, Cu, Fe, Ga, K, Li, Mg, Mn, Na, Ni, Pb, Se, Sr, Te, Tl, Zn) in 2 % dilute nitric acid.
ICPMS 2030ShimadzuInductively coupled plasma mass spectrometry system for multi-element analysis of digested samples.
ICP-MS Tuning Solution ACarlRoth GmbH + Co.KG250 mL tuning solution containing 6 elements (Be, Bi, Ce, Co, In, Mn) in 1 % nitric acid.
KIMTECH Purple Nitrile glovesKimberly-Clark GmbHDisposable Purple Nitrile gloves (S, M or L).
Laboratory coatAny available supplier/
Mixer B-400BÜCHI Labortechnik AG, Flawil, SwitzerlandLaboratory mixer with ceramic blades.
Nitric acidThermoFisher Scientific7697-37-2Nitric acid, trace analysis grade, 68 wt%, density 1.42, Primar Plus, For Trace Metal Analysis.
Plastic centrifuge tubesIsolab50 mL plastic centrifuge tubes with screw caps, single use.
Plastic syringes InjektB. Braun2 pice, single use 20 mL syringes.
Plastic tubes for autosamplerShimadzu046-00147-04Plastic tubes for autosampler, 15 mL capacity, 16 mm diameter, 100 mm length.
Plastic waste containersPlastic containers for the removal of chemicals after the cleaning procedure of reaction vessels.
Protective googles/
Samples (broccoli, sausage, noodles, zucchini, mushrooms)Fresh samples, which were dried to a constant weight and homogenized during the procedure. The samples were purchased from a local shop.
SpatulaPlastic spatula.
Sterilizator Instrumentaria ST 01/02InstrumentariaDryer with adjustable temperature.
Syringe filtersCHROMAFIL Xtra729212Syringe filters with polypropylene housing and polyamide hydrophilic membrane. Membrane diameter 25 mm, membrane pore size 0.2 µm.
Ultrapure waterELGA Labwater, Veolia Water Technologies.Ultrapure water with a resistivity of 18.2 MΩcm, obtained with laboratory water purification system.
Volumetric flasks25 mL glass volumetric flasks.

Referencias

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