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Describimos un protocolo para extraer núcleos de alta calidad de tipos de células madre pluripotentes inducidas, estromales/endoteliales y de células sanguíneas criopreservadas para respaldar los análisis de secuenciación de próxima generación de un solo núcleo. La producción de núcleos intactos de alta calidad es imprescindible para los experimentos multiómicos, pero puede ser una barrera de entrada en el campo para algunos laboratorios.
Los modelos basados en células madre pluripotentes inducidas (iPSC) son excelentes plataformas para comprender el desarrollo sanguíneo, y las células sanguíneas derivadas de iPSC tienen utilidad traslacional como reactivos de pruebas clínicas y terapias celulares transfundibles. El advenimiento y la expansión del análisis multiómico, que incluye, entre otros, la secuenciación de ARN de un solo núcleo (snRNAseq) y el ensayo para la secuenciación de cromatina accesible a la transposasa (snATACseq), ofrece el potencial de revolucionar nuestra comprensión del desarrollo celular. Esto incluye la biología del desarrollo utilizando modelos hematopoyéticos in vitro . Sin embargo, puede ser técnicamente difícil aislar núcleos intactos de células cultivadas o primarias. Los diferentes tipos de células a menudo requieren preparaciones nucleares personalizadas en función de la rigidez y el contenido celular. Estas dificultades técnicas pueden limitar la calidad de los datos y actuar como una barrera para los investigadores interesados en realizar estudios multiómicos. La criopreservación de muestras suele ser necesaria debido a las limitaciones de la recolección y/o el procesamiento de células, y las muestras congeladas pueden presentar desafíos técnicos adicionales para el aislamiento nuclear intacto. En este manuscrito, proporcionamos un método detallado para aislar núcleos de alta calidad de células derivadas de iPSC en diferentes etapas del desarrollo hematopoyético in vitro para su uso en flujos de trabajo multiómicos de un solo núcleo. Hemos centrado el desarrollo del método en el aislamiento de núcleos de células estromal/endoteliales adherentes derivadas de iPSC y células progenitoras hematopoyéticas no adherentes, ya que representan tipos celulares muy diferentes en cuanto a identidad estructural y celular. Los pasos de solución de problemas descritos limitaron la aglomeración y los desechos nucleares, lo que permitió la recuperación de núcleos en cantidad y calidad suficientes para los análisis posteriores. Métodos similares pueden adaptarse para aislar núcleos de otros tipos de células criopreservadas.
La hematopoyesis es un sistema de desarrollo relativamente bien caracterizado, pero la incapacidad de recapitular la formación de células sanguíneas in vitro demuestra una comprensión incompleta de los factores relacionados. Los modelos de hematopoyesis basados en células madre pluripotentes inducidas (iPSC) pueden ayudar a dilucidar los factores clave del desarrollo y la biología relacionada. El sistema iPSC también ofrece un excelente modelo para estudiar los trastornos sanguíneos, y se han desarrollado células sanguíneas basadas en iPSC para producir reactivos relevantes desde el punto de vista traslacional y terapéutico ....
1. Criopreservación de células
2. Descongelación de células
Empleamos el protocolo mencionado anteriormente para extraer núcleos de células estromalas/endoteliales adherentes derivadas de iPSC criopreservadas y células progenitoras hematopoyéticas no adherentes (flotantes). En la Figura 1 se puede encontrar una representación esquemática detallada del procedimiento de aislamiento nuclear.
Para el examen morfológico, los núcleos aislados se tiñeron con azul de tripano y se visualizaron bajo un microscopio. El exame.......
Pasos críticos dentro del protocolo
El aislamiento de núcleos de alta calidad es esencial para la implementación exitosa de las modalidades actuales de secuenciación de próxima generación basadas en un solo núcleo, que están evolucionando rápidamente. En reconocimiento de las barreras existentes para los laboratorios interesados en estos enfoques, particularmente para los especímenes criopreservados, nuestra intención era diseñar una técnica de aislamiento nuclear adaptada para células p.......
Los autores no tienen ningún conflicto de intereses que revelar.
Los autores agradecen a Jason Hatakeyama (10x Genomics) y Diana Slater (Centro de Genómica Aplicada del Hospital Infantil de Filadelfia) por su orientación y sugerencias. Este estudio contó con el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud (HL156052 a CST).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell Culture Reagents | |||
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO) | Sigma | 673439 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Corning | 21031CV | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GeminiBio | 100106 | |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875093 | |
Cells | |||
Induced pluripotent stem cells | N/A | N/A | The iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility |
Cell Staining Reagents | |||
Trypan Blue Solution | Corning | 25900CI | |
Dead Cell Removal Reagents | |||
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C4901 | |
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) Kit | StemCell Technologies | 17899 | This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube. |
Materials | |||
10 µl Micropipette | Wards science | 470231606 | |
100 µl Micropipette | Wards science | 470231598 | |
1000 µl Extended Universal Tip | Oxford Lab Products | OAR-1000XL-SLF | |
1000 µl Micropipette | Wards science | 470231602 | |
2.0 ml Cryogenic vials | Corning | 431386 | |
20 µl Micropipette | Wards science | 470231608 | |
200 µl Micropipette | Wards science | 470231600 | |
5ml Polystyrene Round-Bottom Tube | Falcon | 352063 | |
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip Station | Corning | 4143 | |
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip Station | Corning | 4144 | |
Counting chamber | CytoSMART | 699910591 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
Magnet | StemCell Technologies | 18000 | |
NALGENE Cryo 1°C Freezing Container | Nalgene | 51000001 | |
Nuclei Isolation Reagents | Nuclei isolation reagents include Lysis Buffer, Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283). | ||
Dead Cell Removal kit | STEMCELL | 17899 | |
Digitonin | Thermo Fisher Scientific | BN2006 | |
DL-Dithiothreitol solution (DTT) | Sigma | 646563 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
MACS bovine serum albumin (BSA) stock Solution | Miltenyi Biotec | 130091376 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | 7786303 | |
Magnesium Chloride Solution, 1 M | Sigma | M1028 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385 | |
Nuclease-Free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9937 | |
Nuclei Buffer (20X) | 10X Genomics | 2000153 | |
Protector RNase inhibitor | Sigma | 3335399001 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653-250G | |
Sodium Chloride Solution, 5 M | Sigma | 59222C | |
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4 | Sigma | T2194 | |
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4) | Sigma | T3252-500G | |
Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Other equipment | |||
Automated cell counter | CytoSMART | 699910591 | |
Microscope | Zeiss | Primostar 3 |
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