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당사는 단일핵 차세대 염기서열분석 분석을 지원하기 위해 동결보존, 유도만능줄기세포, 유래 기질/내피세포 및 혈액 세포 유형에서 고품질 핵을 추출하기 위한 프로토콜을 설명합니다. 고품질의 온전한 핵을 생산하는 것은 멀티오믹스 실험에 필수적이지만 일부 실험실에서는 이 분야의 진입 장벽이 될 수 있습니다.
유도만능줄기세포(iPSC) 기반 모델은 혈액 발달을 이해하는 데 탁월한 플랫폼이며, iPSC 유래 혈액 세포는 임상 시험 시약 및 수혈 가능한 세포 치료제로서 중개적 유용성을 가지고 있습니다. 단핵 RNA 염기서열분석(snRNAseq) 및 Transposase-Accessible Chromatin 염기서열분석(snATACseq)을 포함하되 이에 국한되지 않는 멀티오믹스 분석의 출현과 확장은 세포 발달에 대한 우리의 이해를 혁신할 수 있는 잠재력을 제공합니다. 여기에는 체외 조혈 모델을 사용하는 발달 생물학이 포함됩니다. 그러나 배양된 세포 또는 일차 세포에서 온전한 핵을 분리하는 것은 기술적으로 어려울 수 있습니다. 다양한 세포 유형은 종종 세포 강성과 함량에 따라 맞춤형 핵 제제를 필요로 합니다. 이러한 기술적 어려움은 데이터 품질을 제한하고 멀티오믹스 연구에 관심이 있는 연구자에게 장벽으로 작용할 수 있습니다. 세포 수집 및/또는 처리의 한계로 인해 표본 동결 보존이 필요한 경우가 많으며, 동결 샘플은 온전한 핵 분리를 위한 추가적인 기술적 문제를 야기할 수 있습니다. 이 원고에서는 단핵 다중오믹스 워크플로우에 사용하기 위해 체외 조혈 발달의 여러 단계에서 iPSC 유래 세포에서 고품질 핵을 분리하는 자세한 방법을 제공합니다. 우리는 iPSC 유래 부착성 기질/내피 세포와 비부착성 조혈 전구 세포에서 핵을 분리하는 데 방법을 집중적으로 개발해 왔는데, 이는 이들 세포가 구조적 및 세포 정체성과 관련하여 매우 다른 세포 유형을 나타내기 때문입니다. 설명된 문제 해결 단계는 핵 응집과 파편을 제한하여 다운스트림 분석을 위한 충분한 양과 품질로 핵을 회수할 수 있도록 했습니다. 다른 동결 보존된 세포 유형으로부터 핵을 분리하기 위해 유사한 방법을 적용할 수 있습니다.
조혈은 비교적 잘 특성화된 발달 시스템이지만, 체외에서 혈액 세포 형성을 재현할 수 없다는 것은 관련 요인에 대한 이해가 불완전하다는 것을 보여줍니다. 유도만능줄기세포(iPSC) 기반 조혈 모델은 주요 발달 요인 및 관련 생물학을 규명하는 데 도움이 될 수 있습니다. iPSC 시스템은 또한 혈액 질환을 연구하기 위한 우수한 모델을 제공하며, iPSC 기반 혈액 세포는 번역 및 치료 관련 시약을 생산하기 위해 개발되었습니다 1,2,3,4. 단세포 연구는 조혈 과정에서 생성되는 세포 유형을 포함하여 iPSC 기반 발달 생물학을 조사하는 데 광범위하게 사용되어 왔습니다5. 세포 하위집단 간의 관계를 추론할 수 없는 벌크 RNA 염기서열분석6과 비교하여, 단일세포 양식은 세포 이질성을 평가할 수 있게 하고 세포 발달의 식별 및 특성화를 용이하게 할 수 있습니다 6,7.....
1. 세포의 동결 보존
2. 세포의 해동
우리는 앞서 언급한 프로토콜을 사용하여 냉동 보존된 iPSC 유래 부착 기질/내피 세포 및 비부착(부동) 조혈 전구 세포에서 핵을 추출했습니다. 핵 격리 절차의 자세한 개략도는 그림 1에서 확인할 수 있습니다.
형태학적 검사를 위해 분리된 핵을 트리판 블루로 염색하고 현미경으로 시각화했습니다. 핵 형태학적 검사는 처리 직전에 매우 중요한데, 파편?.......
프로토콜 내의 중요한 단계
고품질 핵을 분리하는 것은 빠르게 발전하고 있는 현재의 단일 핵 기반 차세대 염기서열분석 기법을 성공적으로 구현하는 데 필수적입니다. 이러한 접근 방식, 특히 동결 보존된 표본에 관심이 있는 실험실에 대한 기존 장벽을 인식하여 우리의 의도는 이전에 동결된 세포에 적합한 핵 분리 기술을 만드는 것이었습니다. 냉동 보존된 검체에서 핵을 분리?.......
저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.
저자는 지도와 제안을 해준 Jason Hatakeyama(10x Genomics)와 Diana Slater(Children's Hospital of Philadelphia Center for Applied Genomics)에게 감사를 표합니다. 이 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health, HL156052에서 CST)의 지원을 받았습니다.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell Culture Reagents | |||
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO) | Sigma | 673439 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Corning | 21031CV | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GeminiBio | 100106 | |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875093 | |
Cells | |||
Induced pluripotent stem cells | N/A | N/A | The iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility |
Cell Staining Reagents | |||
Trypan Blue Solution | Corning | 25900CI | |
Dead Cell Removal Reagents | |||
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C4901 | |
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) Kit | StemCell Technologies | 17899 | This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube. |
Materials | |||
10 µl Micropipette | Wards science | 470231606 | |
100 µl Micropipette | Wards science | 470231598 | |
1000 µl Extended Universal Tip | Oxford Lab Products | OAR-1000XL-SLF | |
1000 µl Micropipette | Wards science | 470231602 | |
2.0 ml Cryogenic vials | Corning | 431386 | |
20 µl Micropipette | Wards science | 470231608 | |
200 µl Micropipette | Wards science | 470231600 | |
5ml Polystyrene Round-Bottom Tube | Falcon | 352063 | |
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip Station | Corning | 4143 | |
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip Station | Corning | 4144 | |
Counting chamber | CytoSMART | 699910591 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
Magnet | StemCell Technologies | 18000 | |
NALGENE Cryo 1°C Freezing Container | Nalgene | 51000001 | |
Nuclei Isolation Reagents | Nuclei isolation reagents include Lysis Buffer, Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283). | ||
Dead Cell Removal kit | STEMCELL | 17899 | |
Digitonin | Thermo Fisher Scientific | BN2006 | |
DL-Dithiothreitol solution (DTT) | Sigma | 646563 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
MACS bovine serum albumin (BSA) stock Solution | Miltenyi Biotec | 130091376 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | 7786303 | |
Magnesium Chloride Solution, 1 M | Sigma | M1028 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385 | |
Nuclease-Free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9937 | |
Nuclei Buffer (20X) | 10X Genomics | 2000153 | |
Protector RNase inhibitor | Sigma | 3335399001 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653-250G | |
Sodium Chloride Solution, 5 M | Sigma | 59222C | |
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4 | Sigma | T2194 | |
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4) | Sigma | T3252-500G | |
Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Other equipment | |||
Automated cell counter | CytoSMART | 699910591 | |
Microscope | Zeiss | Primostar 3 |
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