È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.
Descriviamo un protocollo per l'estrazione di nuclei di alta qualità da cellule staminali stromali/endoteliali e ematiche derivate da cellule staminali pluripotenti indotte crioconservate per supportare le analisi di sequenziamento di nuova generazione a singolo nucleo. La produzione di nuclei intatti di alta qualità è fondamentale per gli esperimenti multiomici, ma può essere una barriera all'ingresso nel campo per alcuni laboratori.
I modelli basati su cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) sono piattaforme eccellenti per comprendere lo sviluppo del sangue e le cellule ematiche derivate da iPSC hanno utilità traslazionale come reagenti per test clinici e terapie cellulari trasfusibili. L'avvento e l'espansione dell'analisi multiomica, che include, a titolo esemplificativo ma non esaustivo, il sequenziamento dell'RNA a nucleo singolo (snRNAseq) e il saggio per il sequenziamento della cromatina accessibile alla trasposasi (snATACseq), offrono il potenziale per rivoluzionare la nostra comprensione dello sviluppo cellulare. Ciò include la biologia dello sviluppo utilizzando modelli ematopoietici in vitro . Tuttavia, può essere tecnicamente difficile isolare nuclei intatti da cellule coltivate o primarie. Diversi tipi di cellule spesso richiedono preparazioni nucleari su misura a seconda della rigidità e del contenuto cellulare. Queste difficoltà tecniche possono limitare la qualità dei dati e fungere da barriera per i ricercatori interessati a perseguire studi multiomici. La crioconservazione dei campioni è spesso necessaria a causa delle limitazioni con la raccolta e/o l'elaborazione delle cellule e i campioni congelati possono presentare ulteriori sfide tecniche per l'isolamento nucleare intatto. In questo manoscritto, forniamo un metodo dettagliato per isolare nuclei di alta qualità da cellule derivate da iPSC in diverse fasi dello sviluppo ematopoietico in vitro per l'uso in flussi di lavoro multiomici a nucleo singolo. Abbiamo focalizzato lo sviluppo del metodo sull'isolamento di nuclei da cellule stromali/endoteliali aderenti derivate da iPSC e da cellule progenitrici ematopoietiche non aderenti, in quanto queste rappresentano tipi cellulari molto diversi per quanto riguarda l'identità strutturale e cellulare. Le fasi di risoluzione dei problemi descritte hanno limitato l'aggregazione nucleare e i detriti, consentendo il recupero di nuclei in quantità e qualità sufficienti per le analisi a valle. Metodi simili possono essere adattati per isolare nuclei da altri tipi di cellule crioconservate.
L'emopoiesi è un sistema di sviluppo relativamente ben caratterizzato, ma l'incapacità di ricapitolare la formazione delle cellule del sangue in vitro dimostra una comprensione incompleta dei fattori correlati. I modelli di emopoiesi basati su cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) possono aiutare a chiarire i fattori chiave dello sviluppo e la biologia correlata. Il sistema iPSC offre anche un eccellente modello per studiare le malattie del sangue e le cellule del sangue basate su iPSC sono state sviluppate per produrre reagenti traslazionali e terapeuticamente rilevanti 1,2,3,4.
1. Crioconservazione delle cellule
2. Scongelamento delle cellule
Abbiamo impiegato il suddetto protocollo per estrarre nuclei da cellule stromali/endoteliali aderenti derivate da iPSC crioconservate e da cellule progenitrici ematopoietiche non aderenti (galleggianti). Una rappresentazione schematica dettagliata della procedura di isolamento nucleare si trova nella Figura 1.
Per l'esame morfologico, i nuclei isolati sono stati colorati con blu di tripano e visualizzati al microscopio. L'esame morfologico nucleare è fondamentale.......
Passaggi critici all'interno del protocollo
L'isolamento di nuclei di alta qualità è essenziale per l'implementazione di successo delle attuali modalità di sequenziamento di nuova generazione basate su un singolo nucleo, che sono in rapida evoluzione. Riconoscendo le barriere esistenti per i laboratori interessati a questi approcci, in particolare per i campioni crioconservati, la nostra intenzione era quella di creare una tecnica di isolamento nucleare su misura per le cellule precedentemente cong.......
Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi da rivelare.
Gli autori ringraziano Jason Hatakeyama (10x Genomics) e Diana Slater (Children's Hospital of Philadelphia Center for Applied Genomics) per indicazioni e suggerimenti. Questo studio è stato supportato dal National Institutes of Health (HL156052 a CST).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell Culture Reagents | |||
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO) | Sigma | 673439 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Corning | 21031CV | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GeminiBio | 100106 | |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875093 | |
Cells | |||
Induced pluripotent stem cells | N/A | N/A | The iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility |
Cell Staining Reagents | |||
Trypan Blue Solution | Corning | 25900CI | |
Dead Cell Removal Reagents | |||
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C4901 | |
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) Kit | StemCell Technologies | 17899 | This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube. |
Materials | |||
10 µl Micropipette | Wards science | 470231606 | |
100 µl Micropipette | Wards science | 470231598 | |
1000 µl Extended Universal Tip | Oxford Lab Products | OAR-1000XL-SLF | |
1000 µl Micropipette | Wards science | 470231602 | |
2.0 ml Cryogenic vials | Corning | 431386 | |
20 µl Micropipette | Wards science | 470231608 | |
200 µl Micropipette | Wards science | 470231600 | |
5ml Polystyrene Round-Bottom Tube | Falcon | 352063 | |
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip Station | Corning | 4143 | |
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip Station | Corning | 4144 | |
Counting chamber | CytoSMART | 699910591 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
Magnet | StemCell Technologies | 18000 | |
NALGENE Cryo 1°C Freezing Container | Nalgene | 51000001 | |
Nuclei Isolation Reagents | Nuclei isolation reagents include Lysis Buffer, Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283). | ||
Dead Cell Removal kit | STEMCELL | 17899 | |
Digitonin | Thermo Fisher Scientific | BN2006 | |
DL-Dithiothreitol solution (DTT) | Sigma | 646563 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
MACS bovine serum albumin (BSA) stock Solution | Miltenyi Biotec | 130091376 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | 7786303 | |
Magnesium Chloride Solution, 1 M | Sigma | M1028 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385 | |
Nuclease-Free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9937 | |
Nuclei Buffer (20X) | 10X Genomics | 2000153 | |
Protector RNase inhibitor | Sigma | 3335399001 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653-250G | |
Sodium Chloride Solution, 5 M | Sigma | 59222C | |
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4 | Sigma | T2194 | |
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4) | Sigma | T3252-500G | |
Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Other equipment | |||
Automated cell counter | CytoSMART | 699910591 | |
Microscope | Zeiss | Primostar 3 |
Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE
Richiedi AutorizzazioneThis article has been published
Video Coming Soon