Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención (HL 098 256), por un Premio Nacional y Mentored Investigaciones para el Desarrollo de Ciencia (K01 AR052840) y el Premio Científico Independiente (K02 HL105799) de los NIH concedido a JP Konhilas y la Beca de Formación Interdisciplinaria en Ciencias Cardiovasculares (HL007249 ). Se recibió apoyo del Centro de Corazón Sarver de la Universidad de Arizona y de la Fundación Steven M. Gootter.

Todos los experimentos, la vivienda y el cuidado de los animales se realizó mediante los protocolos que se adhirieron a las guías y aprobados por el Comité de Cuidado de Animales institucional y Uso de la Universidad de Arizona, y en 2011 las directrices del NIH para el cuidado y uso de animales de laboratorio. 1. El tratamiento con 4-vinilciclohexeno diepóxido <ol><li> VCD protocolo de dosificación: En una campana para vapores químicos, añadir 0,587 ml de VCD a un frasco limpio y llevar el volumen final a 10 ml con aceite de sésamo, y luego mezclar por inversión suave, tapar y sellar con parafilm. Transfiera la solución a un vial de dosis, sellarlo con Parafilm y almacenar a 4 ° C durante un máximo de 7 días. Asegúrese de que todos los reactivos son estériles. <ol><li> Utilice aceite de sésamo como el control del vehículo como se disuelve VCD en aceite de sésamo. VCD tienda (PM = 140,2 g / mol, densidad = 1,09 g / ml) a -20 ° C. </li><li> Protocolo de inyección VCD: A los 2 meses de edad, pesar y administrar inyecciones intraperitoneales diarias de temperamento habitaciónVCD peratura a una dosis de 160 mg / kg durante 20 días consecutivos. Inyectar ratones de control en una manera similar con la solución de vehículo, aceite de sésamo, a un volumen de 2,5 ml / kg. Nota: Durante el período de inyección, trate de alternar los lugares de inyección para reducir las posibilidades de infección local. Utilice la siguiente ecuación para calcular el volumen necesario para la inyección: Peso corporal (g) x kg / 1000 GX 2,5 ml / kg = volumen (ml) de solución para inyectar resultante en aproximadamente 50 ml / inyección usando una aguja de calibre 27. Debido al tamaño de la aguja no son necesarios los anestésicos locales. </li><li> Vigilancia del ciclo estral: Después del período de inyección se ha completado, monitorear los ciclos de celo al día mediante la obtención de frotis vaginales. Restringir los ratones utilizando el método pescuezo dorso. Insertar un gotero con 0,2 ml de solución salina estéril en el orificio vaginal hasta una profundidad de 0,5 cm. Se tritura solución salina (3x) y colocar 1 gota en una diapositiva en blanco. Inmediatamente evaluar muestras al microscopio utilizando una microsc luz estándarope una magnitud de 100X. Nota:. Citología vaginal está decidido a asegurar la pérdida de la bicicleta y, por tanto, validar insuficiencia ovárica Figura 2A ilustra la citología vaginal típico en las distintas fases del ciclo estral en ratones, a saber proestro, estro, metaestro, diestro 17-19. Durante el proestro, células incluyen células epiteliales nucleadas (Figura 2A, las flechas indican las células nucleadas); durante el estro, las células se Cornified predominantemente células epiteliales escamosas; Metaestro se caracteriza por una mezcla de tipos de células, con un predominio de leucocitos; Diestro está dominado por los leucocitos. Ajuste del plano focal puede ser necesaria para visualizar las células y los núcleos a lo largo de la muestra. Como se ilustra en la Figura 2B, un ciclo típico de estro murino es de 4-5 días. Los ratones son considerados acíclico después de 15 días consecutivos en el diestro persistente. Un seguimiento continuo de los ciclos de estro durante toda la duración del estudio porIOD para confirmar la falta de ciclos de estro en ratones tratados VCD. </li></ol></li></ol> 2. Voluntario de Ejercicio Jaula ruedas Endogámicas C57BL / 6 y B6C3F1 ratones hembras, con edades entre 7 meses, están expuestos a la voluntaria rueda de jaula en ejecución. Animales Casa individual en una jaula (47 cm x 26 cm x 14,5 cm) con un acceso sin trabas a una rueda de la jaula durante 28 días. <ol><li> Colocación del equipamiento: El aparato de rueda de jaula consta de una rueda de diámetro de 11,5 cm, con una 5,0 cm de ancho que se ejecutan superficie equipada con un contador magnético digital que se activa por la rotación de la rueda. Antes de cada ensayo de la rueda en marcha, calibrar la rueda de la jaula de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Medir el diámetro interior de la rueda de rodadura, calcular la circunferencia y entrar en este valor en el contador digital como tamaño de la rueda. <ol><li> Fije la parte informática del contador magnético digital al soporte de la rueda utilizando cinta. </li><li> Conecte el puerto del ordenadorion del contador magnético digital al soporte de la rueda utilizando cinta. </li><li> Ponga el imán libre del contador magnético digital a la barra central en el mismo lado que el imán envió un cable a la computadora, de nuevo la grabación lo suficiente como para proteger el imán de la masticación daños. Los imanes deben colocarse de manera que cada giro de la rueda es registrada por la computadora sin ninguna interferencia o resistencia para completar la rotación de la rueda. Nota: La cinta adhesiva se ha utilizado con éxito para unir los componentes de la barra magnética digital a la rueda de funcionamiento. Grabado debe ser suficiente para cubrir completamente el imán y prevenir el daño de mascar por el animal. El imán debe estar colocado lo más cerca posible a la rueda sin impedir su movimiento. Sin embargo, la configuración debe ser revisado diariamente para masticar daño y reparar si es necesario. </li><li> Monte la rueda a la jaula deslizando la rueda de pie a través del cableado de la parte superior de la jaula de los animales. Fije el soporte de la rueda en tque el cableado jaula con clips de la carpeta. Nota: El clip debe estar en la parte superior del cableado, lejos del animal. Alimente la parte informática y cualquier cable adicional a través del cableado de la jaula. Sitúe el sistema y el exceso de cable fuera del alcance de los animales. Esto se puede lograr mediante la colocación de un plástico de tamaño mediano pesar la cápsula en la parte superior del cableado de la jaula para mantener el ordenador y el exceso de cable. </li></ol></li><li> Ejercicio: Para una camada dado, asignar al azar a los ratones, ya sea el control sedentarios o régimen de ejercicios. Dar a todos los animales del agua y el estándar de roedores chow duro ad libitum. <ol><li> Grabar manualmente los valores diarios para el ran distancia (km / día) y el tiempo total empleado en funcionamiento (h / día), propuesta por el contador magnético. Distancia y tiempo récord valores dentro del mismo marco de tiempo de 1 hora cada día para los valores exactos y consistentes a lo largo de la duración 28 días del período de ejercicio. Clear (cero) el contador magnético después de la grabación de cada día para asegurar lecturas precisas del seguimientoing días. </li><li> Cálculo de los valores medios de la distancia y la velocidad para cada grupo. Cálculo de velocidad en base a los valores dados de distancia y el tiempo cada día para cada ratón. Los datos se pueden mostrar como diario o promedios semanales para cada parámetro medido. </li></ol></li><li> La cosecha de tejidos: al final del período de ejercicio específico, la eutanasia a los animales de control ejerce y sedentarias en los 30 minutos de la eliminación de las jaulas por dislocación cervical bajo anestesia inhalada. Pesar de masa corporal y los corazones rápidamente especiales, músculo esquelético, y los ovarios. <ol><li> En el momento de la recolección de tejido, montar y manchar los ovarios recogidos con hematoxilina y eosina (H &amp; E, Figura 2C). Bajo aumento, contar y clasificar los folículos como primordial, primaria, secundaria o antral para cada VCD tratados y de control de animales 20. Un folículo primordial contiene una pequeña ovocito primario, una sola capa de células de la granulosa aplanadas o escamosas estrechamente opuestas a la de los ovocitos, y una basaleslámina. Un folículo primario se define por la presencia de una o más células de la granulosa cúbicas que están dispuestas en una sola capa que rodea el oocito. Un folículo secundario contiene células de la granulosa que forman múltiples capas que rodean el ovocito, y una teca. Un folículo antral se caracteriza por una cavidad o &quot;antro&quot; que contiene fluido. </li><li> Para extirpar el corazón, hacer una incisión medial en la parte ventral y visualizar el corazón después de la apertura del diafragma. Rápidamente extirpar el corazón en la base y el lugar en buffer fosfato salina fría para lavar Salida suficiente sangre ventricular residual. Recorte el corazón de exceso de tejido, sopesar todo el corazón y snap-congelado en nitrógeno líquido. </li><li> Lave todos los demás tejidos extirpados con una solución modificada helado de buffer fosfato salino (PBS), y complemento de congelación en isopentano enfriado en nitrógeno líquido. </li></ol></li></ol> 3. Ejercicio Caminadora Forzada <ol><li> Cuando se emplea un ejercicio forzado paradigma to medir la capacidad de ejercicio, use una cinta de correr y configurar de la siguiente manera: <ol><li> Coloque una rejilla de descarga eléctrica en la base de la rampa de laboratorio. Este choque generada sirve como un estímulo para el ejercicio. La intensidad y frecuencia de los estímulos eléctricos son controlados manualmente por los usuarios. Grids pueden activarse o desactivarse individualmente para cada carril. Toda la recogida de datos se realiza de forma manual. </li><li> Periódicamente, calibrar la cinta de acuerdo con las instrucciones del fabricante. <ol><li> Asegúrese de que la palanca del panel frontal del controlador rueda de ardilla se establece en &quot;STOP&quot;. </li><li> Coloque el sensor de velocidad en lane1 cinta caminadora y asegure firmemente con la tuerca de tornillo en la posición indicada a continuación. </li><li> Utilización del dial en el panel frontal del controlador para correr, ajuste la velocidad de 88,7 m / min A continuación, establezca la frecuencia del estímulo eléctrico a 2 Hz en el panel frontal del controlador caminadora. </li><li> Pulse el botón de &quot;reinicio del odómetro&quot; para iniciar el procedimiento de calibración. <strong&gt; Nota: Los grupos de control sedentarios o no ejercicio se deben incluir en el diseño experimental. El grupo sedentario es emparejados por edad para el grupo de ejercicio. Hemos demostrado anteriormente que la vivienda los ratones sedentarios individualmente en jaulas de igual tamaño a los ratones ejercitados no afectaron los parámetros de interés en comparación con ratones sedentarios alojados con sus hermanos. Por lo tanto, los ratones sedentarios se mantuvieron con los hermanos en la misma habitación que los ratones ejercitados. </li></ol></li></ol></li><li> Aclimatación: Aclimatar ratones para la cinta de correr 3-7 días antes del experimento todos los días. Para ello, coloque los ratones en la cinta de correr con los cinturones de rejillas inmóviles y choque fuera, pero con el motor de la banda sobre (ruido). Deja los ratones no alterados por lo menos durante 15 min. </li><li> Calentamiento: Calentar los pasos tal como se utiliza en este protocolo son las siguientes: <ol><li> Coloque cada ratón en la caminadora. Desactivar la cuadrícula de choque y aumentar la velocidad de la correa de 4 m / min durante 15 min. </li><li> Habilitar la cuadrícula de choque y mantener la velocidad de la correa en4 velocidad de la banda m / min durante 10 minutos adicionales. </li></ol></li><li> Regímenes de entrenamiento Ejercicio <ol><li> Después del calentamiento, mantener las redes de choque en y aumentar la velocidad de la correa a 5 m / min durante 15 min. </li><li> Aumentar la velocidad de la correa de 15 m / min durante 15 min. </li><li> Después de la capacitación, la transferencia de los ratones de vuelta a sus jaulas. Nota: En este estudio, la práctica de ejercicio se realizó diariamente durante 1 semana. </li><li> Régimen de ejercicios aguda: Un régimen de ejercicio agudo está diseñado para determinar los efectos a corto y largo plazo del estrés ejercicio extremo. <ol><li> Después de calentamiento, aumentar la velocidad de la cinta de 5 m / min a 10, 15, 20, 25, y 30 m / min en intervalos de 10 min. Nota: Terminar el ejercicio si los ratones no pueden continuar en ejecución o mostrar signos de cansancio o angustia. En nuestro estudio, la mayoría de los animales se detuvieron a 25 m / min, y ningún animal pasaron el 30 m / min etapa. </li><li> Pruebe cada ratón tres veces, dejando 2-3 días entre cada prueba. Calcular los valores promedio de todos los ejerciciossesiones precisas para cada ratón. </li></ol></li><li> Régimen de ejercicios para la resistencia: Un protocolo de ejercicio de resistencia está diseñado para capacitar a los ratones de una exposición prolongada al ejercicio estímulo caminadora. Este tipo de protocolo a prueba la capacidad de tolerar los efectos a largo plazo del estrés de ejercicio moderado. <ol><li> Comience con la velocidad de la cinta se indica durante el período de calentamiento, 4 m / min. </li><li> Poco a poco aumentar la velocidad de la cinta por 1m/min hasta una velocidad final de 20 m / min se alcanza. La duración total de un protocolo de estudio típico es 50 min. </li><li> Después de un régimen de ejercicio, transferir los ratones de vuelta a sus jaulas. Nota: La ejecución de ratones hasta el agotamiento se evita. Si en algún momento durante el experimento un ratón muestra signos de agotamiento, desactive la cuadrícula de choque y permitir que el ratón para descansar y recuperarse. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Los datos y análisis estadístico <ol><li> Presentar los resultados como media ± SEM y el uso de 2-way ANOVA (grupo de tratamiento y exercise como factores principales) seguida de una prueba de Student-Newman Keuls post hoc o la prueba t de Student para comparar las diferencias entre los valores medios. </li><li> Determinar el porcentaje de cambio en la masa cardíaca con el ejercicio mediante la comparación de la masa de cada animal ejercido a la masa media cardiaco del grupo sedentario. La diferencia en la masa cardíaca se expresa como un porcentaje de cambio de los animales sedentarios para cada animal en cuestión. valores de p de &lt;0,05 se consideraron estadísticamente significativos. </li></ol>

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Los autores no tienen nada que revelar.

Tanto el ejercicio de la rueda de la jaula y carrera en cinta rodante regímenes de ejercicio se han utilizado en nuestros estudios previos 16,21,22. Todos los animales se mantienen en salas de ejercicio específicos para reducir al mínimo las perturbaciones ambientales o humanas. Cualquier alteración de los animales ritmo biológico puede afectar significativamente a los animales el rendimiento del ejercicio. Por lo tanto, los de atención de todo animal, monitoreo del desempeño y de grabación, y regímenes de ejercicio se debe hacer dentro del mismo marco de tiempo diario. Los investigadores deberían esforzarse por evitar el estrés adicional para los animales, al mostrar precauciones tales como la limitación de la duración de la exposición al estrés y cubrir las jaulas cuando sea apropiado. Ejercicio de la rueda de la jaula Al preparar el aparato de la rueda de la jaula, la rueda debe ser fácilmente accesible para el ratón para montar y salir. No debería ropa de cama mínima en la parte inferior de la jaula para evitar que los ratones de los nidos de alrededor de la rueda e impidiendo frecuenciamovimiento de la rueda e. El sensor magnético se coloca sobre la parte fija de la rueda y el imán fijado a la rueda libre, así como para contar cada rotación de la rueda como ejerce el ratón. El dispositivo de registro conectado al sensor magnético debe colocarse encima de la tapa de alambre de la jaula, y todos los cables expuestos deben ser ya sea grabada o mantenerse fuera del alcance de los ratones, con el fin de proporcionar una barrera contra el daño de mascar. Los sensores magnéticos y magnéticos también fueron grabadas con las estructuras adecuadas para prevenir los daños y el movimiento no deseado. Durante la recogida diaria de datos, todos los cables con cinta deben estar estrechamente seleccionados para asegurar los cables permanecen intactos y deben ser retaped según sea necesario. Ya que puede requerir varios días para que los ratones se aclimatan al nuevo entorno y comenzar a hacer ejercicio con regularidad, el registro de datos se debe adaptar a cada animal individual. Aunque los animales tienden a pasar muchas horas en el volante, la mayor parte de la carrera se produce en la noche. Por lo tanto, algunos animales pueden revelar high actividad de rendimiento, incluso si parecen latentes durante el día. Además, no es infrecuente que algunos animales exhibirán limitada rueda de jaula de funcionamiento. Por lo general, la actividad de la rueda jaula que equivale a un 1 km / día promedio o menos es el resultado de la actividad de la jaula al azar y no se asocia a ningún estímulo funcionamiento significativo. Por lo tanto, los animales cuyos parámetros de funcionamiento están a 1 km / día o 1 hora / día o menos deben ser excluidos en las finales no corredores de análisis de datos. En función de los fines específicos de un estudio individual y cepas de ratones que participan, la duración de ejercicio se puede modificar. Nuestro estudio anterior mostró que para ambas cepas de ratón que participan, las velocidades medias de las ruedas de marcha y la duración del ejercicio en la rueda de la jaula se incrementaron gradualmente con el tiempo y se estabilizaron por 4 semanas. Rueda de la jaula de funcionamiento es un tipo de ejercicio voluntario en modelos animales, que se toma generalmente como que se realiza bajo condiciones menos estresantes. Unlde esfuerzo ike en el que algunos parámetros pueden estar predefinidos, todos corriendo en la jaula de prueba es voluntaria y fácilmente afectado por señales ambientales o de comportamiento. Por lo tanto, las comparaciones entre diferentes parámetros experimentales se evitan típicamente menos que se utilicen grandes números de grupos experimentales. Otras áreas potenciales de investigación que pueden beneficiarse de este tipo de paradigma de ejercicio son los estudios que incorporan respuestas de comportamiento con consecuencias fisiológicas como la neurociencia cognitiva. Para los estudios que utilizan el paradigma voluntaria rueda de jaula, los pasos más críticos son la jaula de configurar y seguimiento de las actividades de ejercicio. Ejercicios de rutina Etapas de aclimatación son necesarios para preparar los animales para el protocolo de ejercicio en cinta ergométrica. Dependiendo de la finalidad específica del estudio individual, la duración del periodo de aclimatación puede variar. En este estudio, se eligió un período de una semana para que los animales puedan acclimcomieron al aparato caminadora y el ruido del motor en la jaula, calentar períodos son un paso importante del régimen de entrenamiento de ejercicio. Al igual que sus homólogos humanos, los ratones deben calentarse antes de entrar en cualquier regimen de ejercicios intensivos para evitar lesiones y artefactos de datos posibles. En este estudio, comenzamos la cinta a la velocidad más baja posible (4 m / min) con las rejillas de choque apagados durante 15 min. Todos los ratones involucrados comenzaron a correr dentro y fuera de la correa. Las rejillas de choque fueron luego encendidos y la velocidad de la cinta mantuvieron a 4 m / min. Para evitar el exceso de hincapié en los ratones, fijamos el choque eléctrico a un nivel leve (1 Hz). A los pocos días, todos los ratones adaptados a la cinta sin fin. La duración de funcionamiento, así como la aceleración también se pueden adaptar a cada diseño experimental. Una tasa de aceleración de partida recomendada es de 1 m / min. Los carriles de la rueda de ardilla de los ratones que muestran signos de agotamiento se deben apagar inmediatamente. Típicamente signos de agotamiento exhibidos por mice en la cinta son los siguientes: <ol><li> La exposición continua a la red de choque para&gt; 5-10 segundos, </li><li> La pérdida de la capacidad de funcionamiento como resultado una exposición rejilla de choque&gt; 5x durante un solo régimen de ejercicio, y </li><li> La pérdida de la capacidad de funcionamiento como resultado una exposición rejilla de choque&gt; 2 segundos por lo menos 3 veces durante un solo régimen de ejercicios. </li></ol> Los valores indicados arriba son para ser utilizado principalmente como directrices para un experimento específico. Estos parámetros deben determinarse para cada protocolo de ejercicio ya que varía de cepa de ratón de la cepa de ratón, un experimento a otro, y el investigador a investigador. A diferencia del ejercicio de rueda de la jaula, los estudios de la rueda de ardilla se deben repetir varias veces para eliminar los efectos de los factores ambientales y biológicos sobre el rendimiento de carrera. No es raro ver a las fluctuaciones en el rendimiento de la carrera entre las pruebas, incluso para el mismo animal. Dado que cada régimen de ejercicio expone corriendo los ratones a un stress, un intervalo de descanso adecuado entre las pruebas es necesario. En nuestra experiencia, 2-3 días de descanso entre cada período de prueba fue suficiente para que los ratones se recuperan. Al igual de esfuerzo humano, la velocidad para el ejercicio de resistencia se determina mejor por el ritmo cardíaco o la saturación de oxígeno en sangre, una hazaña difícil técnicamente con los estudios del ratón. El paso más crítico de los estudios de la rueda de ardilla es la determinación del agotamiento, que suele variar entre los ratones individuales, y se fijó en un 80% la velocidad máxima. En nuestra propia experiencia de la grabación de los resultados pueden diferir considerablemente entre los investigadores individuales, ya que los criterios de agotamiento son en su mayoría subjetiva. De este modo, la aplicación coherente de los mismos criterios durante la grabación es crítica.

La aparición natural de la menopausia se caracteriza por el agotamiento de los folículos primordiales de ovario a través de la atresia, resultando eventualmente en la senescencia de ovario. En los Estados Unidos, más del 30% de toda la vida de la mujer se gastará después de la menopausia. En respuesta a una disminución de la función ovárica, pueden ocurrir varias consecuencias fisiológicas y psicológicas, incluyendo el aumento de la adiposidad, la inestabilidad vascular, y el estado de ánimo o trastornos del sueño. Debido al aumento de la obesidad / adiposidad en comparación con sus homólogos premenopáusicas 1,2, las mujeres posmenopáusicas son particularmente más susceptibles al síndrome metabólico y las comorbilidades asociadas, incluyendo la enfermedad cardiovascular (ECV) 3. Por otra parte, cada vez es más evidente que la rehabilitación cardiaca exitosa para los pacientes con ECV incluye el ejercicio aeróbico regular, y que el ejercicio reduce la morbilidad y mortalidad cardiovascular en estos temas 4,5. Sin embargo, ¿cómo cha capacidad de ejercicionges durante la transición de pre-a post-menopáusicas no ha sido bien estudiada. Más importante aún, el papel del ejercicio como medida preventiva por riesgo de las enfermedades cardiovasculares en las mujeres post-menopáusicas sigue siendo muy poco estudiada. El modelo inducible más comúnmente utilizado para imitar la menopausia en las mujeres es el ovariectomizadas (OVX) de roedores. Recientemente, el químico diepóxido 4-vinilciclohexeno ocupacional (VCD) se ha demostrado que dirigirse específicamente a pequeños folículos ováricos primarios y primordiales mediante la aceleración del proceso natural de la atresia, en última instancia, resulta en insuficiencia ovárica sin toxicidad evidente que se encuentra en otros tejidos 6. El ciclo estral de los ratones tratados con VCD, que es análoga a un ciclo menstrual humano, deja a los 2-3 meses después de la finalización de las inyecciones de VCD, que a su vez se traduce en una retirada gradual de los estrógenos, la imitación de la peri y post-menopáusicas transición. Así, un folículo agotan, animal ovario intacto se aproxime a la humana naturalprogresión a través del pre-peri-a la transición post-menopáusica 7-9. Además, proporciona una alternativa no quirúrgica a la modelo OVX reducir las complicaciones de la cirugía, como la infección. En este estudio, se emplearon ratones de la menopausia inducida VCD-para estudiar el impacto del ejercicio sobre la adaptación cardiaca en ratones de la menopausia. Hay varios casos que sugieren que la asociación entre el estrógeno y el ejercicio de la rueda de jaula en roedores de ambos sexos 10-13. Agotamiento de estrógeno por quirúrgica OVX reduce la actividad ejercicio voluntario en ratones y ratas 14,15. Dos métodos de ejercicio se utilizaron en este estudio para probar la capacidad de ejercicio de los ratones de la menopausia inducida por VCD. Rueda de la jaula de funcionamiento es generalmente considerado como un tipo de ejercicio voluntario en modelos animales y se realizó, presumiblemente, en condiciones menos estresantes. Sin embargo, la rueda de la jaula correr no es indicativo de la capacidad de ejercicio relativo de los animales, lo que requiere que los animales exerciSE a niveles mucho más altos. De esfuerzo forzado se utilizó para determinar la capacidad de ejercicio, medida como una tolerancia a la intensidad del ejercicio y la resistencia. Además, hemos demostrado que el ejercicio de la rueda jaula proporciona un estímulo para la hipertrofia cardíaca y este crecimiento hipertrófico es dependiente del sexo 16. Por lo tanto, también medimos la adaptación cardiaca al ejercicio rueda de jaula en ratones de la menopausia inducida-VCD.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="682">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr>
			<td>4-vinylcyclohexene diepoxide (VCD)</td>
			<td>Sigma, cat# V-3630</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>11.5-cm-diameter wheel with a 5.0-cm-wide running surface</td>
			<td>Petsmart,model 6208</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital magnetic counter</td>
			<td>Sigma Sport,model BC 600</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Treadmill exercise</td>
			<td>Columbus Instruments , model 1055SDRM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a method to study the impact of chemically-induced ovarian failure on exercise capacity and cardiac adaptation in mice

El riesgo de enfermedad cardiovascular (ECV) se incrementa en mujeres post-menopáusicas, sin embargo, el papel del ejercicio, como una medida preventiva para el riesgo de ECV en mujeres post-menopáusicas que no se ha estudiado adecuadamente. En consecuencia, se investigó el impacto del ejercicio jaula ruedas voluntaria y de esfuerzo forzado en la adaptación cardiaca en ratones de la menopausia. El modelo inducible más comúnmente utilizado para imitar la menopausia en las mujeres es el ovariectomizadas (OVX) de roedores. Sin embargo, el modelo OVX tiene algunas diferencias de la menopausia en los seres humanos. En este estudio, se administró diepóxido 4-vinilciclohexeno (VCD) a ratones hembra, lo que acelera la insuficiencia ovárica como un modelo alternativo de la menopausia para estudiar el impacto del ejercicio en ratones de la menopausia. VCD acelera selectivamente la pérdida de folículos primarios y primordiales que resulta en un estado endocrino que imita la progresión natural desde la pre-peri y post-menopausia en los seres humanos. Para determinar el impacto del ejercicio sobre el ejerciciode la capacidad y la adaptación cardiaca en ratones hembra VCD tratados, se utilizaron dos métodos. En primer lugar, nos exponemos a un grupo de ratones VCD-tratadas y sin tratar a una rueda jaula voluntaria. En segundo lugar, hemos utilizado ejercicios de rutina obligada a determinar la capacidad de ejercicio en un grupo de ratones VCD tratados y no tratados separados medidos como la tolerancia a la intensidad del ejercicio y la resistencia.

Un protocolo experimental típico, tal como el utilizado en este estudio, se ilustra en la Figura 1. Después de 20 días consecutivos de tratamiento de VCD, se utilizó la citología vaginal para determinar la presencia o ausencia de ciclicidad en los ratones inyectados con VCD; También se monitorizaron los ratones inyectados con vehículo. La etapa en el ciclo de estro se determinó mediante la proporción de células epiteliales, células epiteliales queratinizadas, y leucocitos en el frotis vaginal (Figura 2A). La presencia de células epiteliales sólo cornificadas indicó el ratón estaba en celo, y por lo tanto todavía iba en bicicleta. El ciclo estral en ratones típicamente dura 4 días, por lo tanto, VCD inyecta animales se consideraron acíclico después de 15 días de diestro persistente, en el que la citología vaginal reveló una mayoría de los leucocitos (Figura 2A). El ciclo estral de los ratones tratados con VCD se convirtió en irregular, y luego cesó el plazo de 2-3 meses después del inicio de las inyecciones de VCD (Figura 2B) </strong&gt;. Tejido ovárico VCD mostró atrofia significativa, en comparación con los controles. A mayor aumento, vemos un agotamiento completo de los folículos primarios y primordiales (Figura 2C). Para probar el efecto de la insuficiencia ovárica inducida VCD-sobre el rendimiento del ejercicio, nos aleatorios de 7 meses VCD-y los ratones tratados con vehículo (dos cepas, C57BL / 6 y B6C3F1) a cualquiera de las ruedas grupos de ejercicios sedentarios o jaula de 4-6 semanas después de la cese de ciclismo (Figura 1). Se registraron los valores de ejercicio diario para el tiempo y la distancia para cada animal ejercido durante todo el período de ejercicio de 4 semanas. Promedios semanales de los valores diarios de funcionamiento de la distancia, tiempo y velocidad se muestran en la Figura 3 para C57BL / 6 ratones tratados con vehículo o VCD. No vimos diferencias significativas en el rendimiento del ejercicio medido por el tiempo medio diario, la distancia y la velocidad en la rueda de la jaula entre-y VCD grupos tratados con vehículo, ya sea en C57BL / 6 o B6C3F1 ratóndeformación (Figura 4 A). Las velocidades de las ruedas de marcha calculadas aumentaron gradualmente durante el período de funcionamiento de 4 semanas como se muestra anteriormente 16, pero no fueron significativamente diferentes entre los grupos experimentales. Estos estudios indican que el impacto de la insuficiencia ovárica inducida VCD en el ejercicio de la rueda jaula voluntaria trasciende al menos 2 cepas de ratón. Después de la duración del protocolo de ejercicio voluntario rueda de jaula, se registraron morfometría del cuerpo y los corazones se extirparon y se pesaron rápidamente. Anteriormente hemos demostrado que el ejercicio de la rueda jaula voluntaria induce un aumento en la masa cardíaca 16. Aquí, también mostramos la hipertrofia cardíaca en respuesta a ejercicio rueda jaula mide por el peso absoluto del corazón (HW) y HW normalizó a la longitud de la tibia (TL) (Tabla 1). La masa cardíaca absoluta y relación de HW / TL fueron significativamente mayores en los ratones-y vehículos VCD tratados en comparación con los sedentarios. Sin embargo, no hubo measurables diferencias en la hipertrofia cardiaca entre el control y los ratones insuficiencia ovárica inducida VCD-siguiente ejercicio rueda jaula voluntaria. A continuación, hemos utilizado involuntaria (forzada) carrera en cinta rodante para determinar la capacidad de ejercicio. En primer lugar, los ratones sometidos a un protocolo de alta intensidad que el aumento gradual de la velocidad media de cada 10 minutos hasta el agotamiento. En promedio, la velocidad máxima de los ratones tratados con vehículo fue 26,7 ± 0,95 m / min y la velocidad máxima de VCD ratones tratados fue de 28 ± 1,4 m / min antes del agotamiento. Utilizamos de menor intensidad funcionando a 20 m / min (alrededor del 80% de máxima) para ensayar la capacidad de resistencia. Como se muestra en la Figura 4B, no se encontraron diferencias significativas en la capacidad de alta o baja intensidad de ejercicio entre el vehículo y el grupo VCD tratada, lo que indica que la insuficiencia ovárica inducida VCD-no tuvo ningún efecto sobre la capacidad de ejercicio de ratón. En conclusión, inducida por el tratamiento de la menopausia VCD no tiene efecto en R ya sea voluntaria o forzada<html> capacidad Unning, así como la respuesta de adaptación cardiaca para hacer ejercicio. <img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51083/51083fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51083/51083fig1.jpg" /> Figura 1. VCD-administración y protocolo experimental. Ratones se les administró VCD (160 mg / kg) o aceite de sésamo (control de vehículo) a partir de 2 meses de edad durante 20 días consecutivos. Después de VCD o vehículos inyecciones, ciclos de estro fueron controlados y ciclicidades se determinaron como se describe en la sección Métodos. La pérdida de función ovárica se produjo dentro de 60-90 días y se confirmó por citología vaginal. A los 7 meses de edad, los ratones fueron expuestos a ejercicio rueda jaula voluntaria durante 4 semanas o sometidos al protocolo de ejercicio en cinta ergométrica. oad/51083/51083fig2highres.jpg &quot;src =&quot; / files/ftp_upload/51083/51083fig2.jpg &quot;/&gt; . Figura 2 insuficiencia ovárica inducida VCD en ratones A:. Citología de una citología vaginal sin mancha desde un vehículo de ratón inyectado demostrar las cuatro etapas del ciclo estral: 1) proestro, predominantemente formado por células epiteliales nucleadas 2) Estro, que se caracteriza por la ONU -nucleado células cornificadas; 3) metaestro, que consiste en células epiteliales nucleadas (flechas), un-nucleadas cornificadas células epiteliales (flechas) y leucocitos; 4) el diestro, que consiste principalmente de los leucocitos; y B:. Duración media (días) del ciclo estral de vehículos y grupos VCD-inyectado. Un ciclo se mide desde el primer día en estro para el primer día del siguiente período en estro. La citología vaginal comenzó aproximadamente 6 semanas después del inicio de las inyecciones. Los ciclos de celo de los animales inyectados con VCD se vuelven irregulares, en comparación con los animales inyectados con vehículos, y después de 12 ciclos de estro, la citología de todos VCD inyecta animales ya no se indica el ciclismo C:. tinción H &amp; E de tejido de ovario a los 8 meses de edad. Las secciones transversales hechas en espesor 5μm para vehículos tratados (panel izquierdo) y (panel derecho) ratones VCD tratados en 20X (panel superior) y 200X (panel inferior) de aumento. Tejido ovárico con una ampliación de 200X muestra un número de folículos en vehículo-en comparación con los ratones tratados con VCD. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51083/51083fig2highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 3" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51083/51083fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51083/51083fig3.jpg" /> Figura 3. Rendimiento de la rueda jaula Voluntaria en vehículo o C57Bl/6J ratones hembras tratadas con VCD. Panel izquierdo: La distancia media marcha (km /día) por cada período de 1 semana durante el período de estudio 4 semanas el panel medio:. tiempo medio de funcionamiento (h / día) por cada período de 1 semana durante el período de estudio de 4 semanas Panel derecho:. Velocidad media marcha (km / h) para cada 1 período de la semana durante el período de estudio de 4 semanas. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51083/51083fig3highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51083/51083fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51083/51083fig4.jpg" /> Figura 4. Rueda jaula Voluntaria y rendimiento de la caminadora en el vehículo-y los ratones tratados con VCD. A: (panel superior) C57BL / 6 carreras de distancia media (km / día) y el tiempo empleado en la rueda (horas / día) por cada 24 horas durante el período de estudio de 4 semanas. (Panel inferior) y #160; distancia B6C3F1 marcha medio (km / día) y el tiempo empleado en la rueda (h / día) por cada 24 horas durante el período de estudio de 4 semanas B: C57BL / 6 parámetros carrera en cinta rodante.. Tiempo máximo (panel superior) y velocidad máxima (Panel Botoom) utilizando protocolos detallados en la sección de métodos.

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A Method to Study the Impact of Chemically-induced Ovarian Failure on Exercise Capacity and Cardiac Adaptation in Mice

Dos paradigmas de ejercicio se pusieron a prueba en un modelo inducido químicamente menopáusica ratón de nuevo desarrollo para examinar el impacto de la menopausia en la capacidad de ejercicio y la adaptación cardiaca al ejercicio.

Un método para estudiar el impacto de la falla ovárica inducida químicamente en la capacidad de ejercicio y la adaptación cardiaca en ratones

The risk of cardiovascular disease (CVD) increases in post-menopausal women, yet, the role of exercise, as a preventative measure for CVD risk in ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

15.2K vistas.  University of Arizona.  Dos paradigmas de ejercicio se pusieron a prueba en un modelo inducido químicamente menopáusica ratón de nuevo desarrollo para examinar el impacto de la menopausia en la capacidad de ejercicio y la adaptación cardiaca al ejercicio. 

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Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo and noninvasively in humans via phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS). However, the approach has not been widely adopted in translational and clinical research, with variations in methodology and limited guidance from the literature. Increased optimization, standardization, and dissemination of methods for in vivo 31PMRS would facilitate the development of targeted therapies to improve OXPHOS capacity and could ultimately favorably impact cardiovascular health. 31PMRS produces a noninvasive, in vivo measure of OXPHOS capacity in human skeletal muscle, as opposed to alternative measures obtained from explanted and potentially altered mitochondria via muscle biopsy. It relies upon only modest additional instrumentation beyond what is already in place on magnetic resonance scanners available for clinical and translational research at most institutions. In this work, we outline a method to measure in vivo skeletal muscle OXPHOS. The technique is demonstrated using a 1.5 Tesla whole-body MR scanner equipped with the suitable hardware and software for 31PMRS, and we explain a simple and robust protocol for in-magnet resistive exercise to rapidly fatigue the quadriceps muscle. Reproducibility and feasibility are demonstrated in volunteers as well as subjects over a wide range of functional capacities.

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

This work demonstrates the feasibility of an in vivo phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS) technique to quantify mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity in human skeletal muscle.

El fósforo-31 espectroscopía de resonancia magnética: una herramienta para medir<em&gt; En Vivo</em&gt; Capacidad de la fosforilación oxidativa mitocondrial en el músculo esquelético humano

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Investigación

Medicina

Impact of Intracardiac Neurons on Cardiac Electrophysiology and Arrhythmogenesis in an Ex Vivo Langendorff System

Since its invention in the late 19th century, the Langendorff ex vivo heart perfusion system continues to be a relevant tool for studying a broad spectrum of physiological, biochemical, morphological, and pharmacological parameters in centrally denervated hearts. Here, we describe a setup for the modulation of the intracardiac autonomic nervous system and the assessment of its influence on basic electrophysiology, arrhythmogenesis, and cyclic adenosine monophosphate (cAMP) dynamics. The intracardiac autonomic nervous system is modulated by the mechanical dissection of atrial fat pads-in which murine ganglia are located mainly&#8212;or by the usage of global as well as targeted pharmacological interventions. An octapolar electrophysiological catheter is introduced into the right atrium and the right ventricle, and epicardial-placed multi-electrode arrays (MEA) for high-resolution mapping are used to determine cardiac electrophysiology and arrhythmogenesis. F&#246;rster resonance energy transfer (FRET) imaging is performed for the real-time monitoring of cAMP levels in different cardiac regions. Neuromorphology is studied by means of antibody-based staining of whole hearts using neuronal markers to guide the identification and modulation of specific targets of the intracardiac autonomic nervous system in the performed studies. The ex vivo Langendorff setup allows for a high number of reproducible experiments in a short time. Nevertheless, the partly open nature of the setup (e.g., during MEA measurements) makes constant temperature control difficult and should be kept to a minimum. This described method makes it possible to analyze and modulate the intracardiac autonomic nervous system in decentralized hearts.

Impact of Intracardiac Neurons on Cardiac Electrophysiology and Arrhythmogenesis in an Ex Vivo Langendorff System

Here, we present a protocol for the modulation of the intracardiac autonomic nervous system and the assessment of its influence on basic electrophysiology, arrhythmogenesis, and cAMP dynamics using an ex vivo Langendorff setup.

Impacto de las neuronas intracardiacas sobre la electrofisiología cardíaca y arritmogénesis en un sistema de Langendorff Ex Vivo

Since its invention in the late 19th century, the Langendorff ex vivo heart perfusion system continues to be a relevant tool for studying a broad spectrum ...

The Generation of Closed Femoral Fractures in Mice: A Model to Study Bone Healing

Bone fractures impose a tremendous socio-economic burden on patients, in addition to significantly affecting their quality of life. Therapeutic strategies that promote efficient bone healing are non-existent and in high demand. Effective and reproducible animal models of fractures healing are needed to understand the complex biological processes associated with bone regeneration. Many animal models of fracture healing have been generated over the years; however, murine fracture models have recently emerged as powerful tools to study bone healing. A variety of open and closed models have been developed, but the closed femoral fracture model stands out as a simple method for generating rapid and reproducible results in a physiologically relevant manner. The goal of this surgical protocol is to generate unilateral closed femoral fractures in mice and facilitate a post-fracture stabilization of the femur by inserting an intramedullary steel rod. Although devices such as a nail or a screw offer greater axial and rotational stability, the use of an intramedullary rod provides a sufficient stabilization for consistent healing outcomes without producing new defects in the bone tissue or damaging nearby soft tissue. Radiographic imaging is used to monitor the progression of callus formation, bony union, and subsequent remodeling of the bony callus. Bone healing outcomes are typically associated with the strength of the healed bone and measured with torsional testing. Still, understanding the early cellular and molecular events associated with fracture repair is critical in the study of bone tissue regeneration. The closed femoral fracture model in mice with intramedullary fixation serves as an attractive platform to study bone fracture healing and evaluate therapeutic strategies to accelerate healing.

The murine closed femoral fracture model is a powerful platform to study fracture healing and novel therapeutic strategies to accelerate bone regeneration. The goal of this surgical protocol is to generate unilateral closed femoral fractures in mice using an intramedullary steel rod to stabilize the femur.

La generación de fracturas femorales cerradas en ratones: un modelo para el estudio del hueso curativo

Bone fractures impose a tremendous socio-economic burden on patients, in addition to significantly affecting their quality of life. Therapeutic strategies ...

Conducting Maximal and Submaximal Endurance Exercise Testing to Measure Physiological and Biological Responses to Acute Exercise in Humans

Regular physical activity has a positive effect on human health, but the mechanisms controlling these effects remain unclear. The physiologic and biologic responses to acute exercise are predominantly influenced by the duration and intensity of the exercise regimen. As exercise is increasingly thought of as a therapeutic treatment and/or diagnostic tool, it is important that standardizable methodologies be utilized to understand the variability and to increase the reproducibility of exercise outputs and measurements of responses to such regimens. To that end, we describe two different cycling exercise regimens that yield different physiologic outputs. In a maximal exercise test, exercise intensity is continually increased with a greater workload resulting in an increasing cardiopulmonary and metabolic response (heart rate, stroke volume, ventilation, oxygen consumption and carbon dioxide production). In contrast, during endurance exercise tests, the demand is increased from that at rest, but is raised to a fixed submaximal exercise intensity resulting in a cardiopulmonary and metabolic response that typically plateaus. Along with the protocols, we provide suggestions on measuring physiologic outputs that include, but are not limited to, heart rate, slow and forced vital capacity, gas exchange metrics, and blood pressure to enable the comparison of exercise outputs between studies. Biospecimens can then be sampled to assess cellular, protein, and/or gene expression responses. Overall, this approach can be easily adapted into both short- and long-term effects of two distinct exercise regimens.

To assess the influence of exercise intensity on physiologic and biologic responses, two different exercise testing protocols were utilized. Methods outlining exercise testing on a cycle ergometer as an incremental maximal oxygen consumption test and endurance, steady state submaximal endurance test are described.

Realización de ejercicio máximo y submáximo resistencia pruebas para medir las respuestas fisiológicas y biológicas al ejercicio agudo en seres humanos

Regular physical activity has a positive effect on human health, but the mechanisms controlling these effects remain unclear. The physiologic and biologic ...

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively affect skeletal muscle. This can result in a loss of muscle mass (atrophy) and/or loss of muscle quality (reduced force per unit of muscle mass), both of which are prevalent in chronic disease, muscle-specific disease, immobilization, and aging (sarcopenia). Skeletal muscle function in animals can be evaluated by a range of different tests. All tests have limitations related to the physiological testing environment, and the selection of a specific test often depends on the nature of the experiments. Here, we describe an in vivo, non-invasive technique involving a helpful and easy assessment of force frequency-curve (FFC) in mice that can be performed on the same animal over time. This permits monitoring of disease progression and/or efficacy&#160;of a potential therapeutic treatment.

Measurement of rodent skeletal muscle contractile function is a useful tool that can be used to track disease progression as well as efficacy of therapeutic intervention. We describe here the non-invasive, in vivo assessment of the dorsiflexor muscles that can be repeated over time in the same mouse.

Evaluación no invasiva de la función muscular de los dorsiflexores en ratones

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively ...

A Piglet Perinatal Asphyxia Model to Study Cardiac Injury and Hemodynamics after Cardiac Arrest, Resuscitation, and the Return of Spontaneous Circulation

Neonatal piglets have been extensively used as translational models for perinatal asphyxia. In 2007, we adapted a well-established piglet asphyxia model by introducing cardiac arrest. This enabled us to study the impact of severe asphyxia on key outcomes, including the time taken for the return of spontaneous circulation (ROSC), as well as the effect of chest compressions according to alternative protocols for cardiopulmonary resuscitation. Due to the anatomical and physiological similarities between piglets and human neonates, piglets serve as good models in studies of cardiopulmonary resuscitation and hemodynamic monitoring. In fact, this cardiac arrest model has provided evidence for guideline development through research on resuscitation protocols, pathophysiology, biomarkers, and novel methods for hemodynamic monitoring. Notably, the incidental finding that a substantial fraction of piglets have pulseless electrical activity (PEA) during cardiac arrest may increase the applicability of the model (i.e., it may be used to study pathophysiology extending beyond the perinatal period). However, the model generation is technically challenging and requires various skill sets, dedicated personnel, and a fine balance of the measures, including the surgical protocols and the use of sedatives/analgesics, to ensure a reasonable rate of survival. In this paper, the protocol is described in detail, as well as experiences with adaptations to the protocol over the years.

This piglet model involves surgical instrumentation, asphyxiation until the cardiac arrest, resuscitation, and post-resuscitation observation. The model allows for multiple sampling per animal, and by using continuous invasive arterial blood pressure, ECG, and non-invasive cardiac output monitoring, it provides knowledge about hemodynamics and cardiac pathophysiology in perinatal asphyxia and neonatal cardiopulmonary resuscitation.

Un modelo de asfixia perinatal de lechón para estudiar la lesión cardíaca y la hemodinámica después de un paro cardíaco, reanimación y el retorno de la circulación espontánea

Neonatal piglets have been extensively used as translational models for perinatal asphyxia. In 2007, we adapted a well-established piglet asphyxia model ...

Chronic Ovine Model of Right Ventricular Failure and Functional Tricuspid Regurgitation

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to suboptimal clinical results. We set out to establish a chronic ovine model of FTR and right heart failure to investigate the mechanisms of FTR. Twenty adult male sheep (6-12 months old, 62 &#177; 7 kg) underwent a left thoracotomy and baseline echocardiography. A pulmonary artery band (PAB) was placed and cinched around the main pulmonary artery (PA) to at least double the systolic pulmonary artery pressure (SPAP), inducing right ventricular (RV) pressure overload and signs of RV dilatation. PAB acutely increased the SPAP from 21 &#177; 2 mmHg to 62 &#177; 2 mmHg. The animals were followed for 8 weeks, symptoms of heart failure were treated with diuretics, and surveillance echocardiography was used to assess for pleural and abdominal fluid collection. Three animals died during the follow-up period due to stroke, hemorrhage, and acute heart failure. After 2 months, a median sternotomy and epicardial echocardiography were performed. Of the surviving 17 animals, 3 developed mild tricuspid regurgitation, 3 developed moderate tricuspid regurgitation, and 11 developed severe tricuspid regurgitation. Eight weeks of pulmonary artery banding resulted in a stable chronic ovine model of right ventricular dysfunction and significant FTR. This large animal platform can be used to further investigate the structural and molecular basis of RV failure and functional tricuspid regurgitation.

Right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation are associated with left-sided heart disease and pulmonary hypertension, which contribute significantly to morbidity and mortality in patients. Establishing a chronic ovine model to study right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation will help in understanding their mechanisms, progression, and possible treatments.

Modelo ovino crónico de insuficiencia ventricular derecha y regurgitación tricúspide funcional

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to ...

Modified Heterotopic Abdominal Heart Transplantation and a Novel Aortic Regurgitation Model in Rats

Over the past 50 years, many researchers have reported heterotopic abdominal heart transplantation in mice and rats, with some variations in the surgical technique. Modifying the transplantation procedure to strengthen the myocardial protection could prolong the ischemia time while preserving the donor&#39;s cardiac function. This technique&#39;s key points are as follows: transecting the donor&#39;s abdominal aorta before harvesting to unload the donor&#39;s heart; perfusing the donor&#39;s coronary arteries with a cold cardioplegic solution; and topical cooling of the donor&#39;s heart during the anastomosis procedure. Consequently, since this procedure prolongs the acceptable ischemia time, beginners can easily perform it and achieve a high success rate.
Moreover, a new aortic regurgitation (AR) model was established in this work using a technique different from the existing one,&#160;which is created by inserting a catheter from the right carotid artery and puncturing the native aortic valve under continuous echocardiographic guidance. A heterotopic abdominal heart transplantation was performed using the novel AR model. In the protocol, after the donor&#39;s heart is harvested, a stiff guidewire is inserted into the donor&#39;s brachiocephalic artery and advanced toward the aortic root. The aortic valve is punctured by pushing the guidewire further even after the resistance is felt, thus inducing AR. It is easier to damage the aortic valve using this method than with the procedure described in the conventional AR model. Additionally, this novel AR model does not contribute to the recipient&#39;s circulation; therefore, this method is expected to produce a more severe AR model than the conventional procedure.

This study demonstrates a reproducible heterotopic abdominal heart transplantation technique in rats that beginners can learn and perform. Additionally, a novel aortic regurgitation model in rats is generated by performing heterotopic abdominal heart transplantation and damaging the donor's aortic valve using a guidewire after harvesting.

Trasplante de corazón abdominal heterotópico modificado y un nuevo modelo de regurgitación aórtica en ratas

Over the past 50 years, many researchers have reported heterotopic abdominal heart transplantation in mice and rats, with some variations in the surgical ...

Trasplante de corazón in vivo para estudiar la transición endotelial a mesenquimal

A Neonatal Heterotopic Rat Heart Transplantation Model for the Study of Endothelial-to-Mesenchymal Transition

Endocardial fibroelastosis (EFE), defined by subendocardial tissue accumulation, has major impacts on the development of the left ventricle (LV) and precludes patients with congenital critical aortic stenosis and hypoplastic left heart syndrome (HLHS) from curative anatomical biventricular surgical repair. Surgical resection is currently the only available therapeutic option, but EFE often recurs, sometimes with an even more infiltrative growth pattern into the adjacent myocardium.
To better understand the underlying mechanisms of EFE and to explore therapeutic strategies, an animal model suitable for preclinical testing was developed. The animal model takes into consideration that EFE is a disease of the immature heart and is associated with flow disturbances, as supported by clinical observations. Thus, the heterotopic heart transplantation of neonatal rat donor hearts is the basis for this model.
A neonatal rat heart is transplanted into an adolescent rat&#39;s abdomen and connected to the recipient&#39;s infrarenal aorta and inferior vena cava. While perfusion of the coronary arteries preserves the viability of the donor heart, flow stagnation within the LV induces EFE growth in the very immature heart. The underlying mechanism of EFE formation is the transition of endocardial endothelial cells to mesenchymal cells (EndMT), which is a well-described mechanism of early embryonic development of the valves and septa but also the leading cause of fibrosis in heart failure. EFE formation can be macroscopically observed within days after transplantation. Transabdominal echocardiography is used to monitor the graft viability, contractility, and the patency of the anastomoses. Following euthanasia, the EFE tissue is harvested, and it shows the same histopathological characteristics as human EFE tissue from HLHS patients.
This in vivo model allows for studying the mechanisms of EFE development in the heart and testing treatment options to prevent this pathological tissue formation and provides the opportunity for a more generalized examination of EndMT-induced fibrosis.

Autor destacado: Un modelo de trasplante de corazón de rata heterotópico neonatal para el estudio de la transición endotelial a mesenquimal  

This work presents an animal model of endothelial-to-mesenchymal transition-induced fibrosis, as seen in congenital cardiac defects such as critical aortic stenosis or hypoplastic left heart syndrome, which allows for detailed histological tissue evaluation, the identification of regulatory signaling pathways, and the testing of treatment options.

Un modelo de trasplante de corazón de rata heterotópico neonatal para el estudio de la transición endotelial a mesenquimal

Endocardial fibroelastosis (EFE), defined by subendocardial tissue accumulation, has major impacts on the development of the left ventricle (LV) and ...