This work was funded, in part, by the Great Lakes Fishery Commission and the Annis Water Resources Institute. Use of trade, product, or firm names does not imply endorsement by the U. S. Government. This article is Contribution 1867 of the U. S. Geological Survey Great Lakes Science Center.

1. Experimento Laboratorio <ol><li> Obtener los peces presa para la alimentación de los peces depredadores durante el experimento. Preferiblemente estos peces presa deben ser capturados en el campo, congelados, y se almacenaron a aproximadamente -30 ° C. Considere la posibilidad de operaciones de pesca comercial como una fuente potencial para los peces presa. </li><li> Dar a conocer a los peces depredadores en los tanques de laboratorio que se utilizarán para el experimento. Hasta 15 peces depredadores se han introducido en cada uno de los tanques 870-L, y hasta 30 peces depredadores se han introducido en cada uno de los tanques de 2380 L en estudios previos 16,18. </li><li> Aclimatar el pez depredador a una dieta de los peces presa seleccionada. Una vez aclimatados, el pez depredador debe permanecer en esta dieta durante 1-3 meses antes de comenzar el experimento. </li><li> Ponga a un lado las muestras de peces presa con selección aleatoria de 10 a 20 muestras compuestas del lote de peces presa. Número de peces presa en una muestra compuesta puede variar desde 3 a 100, dependiendo del tamaño de la presapeces. Cada muestra compuesta debe ser doble bolsa, congelado, y se almacenan a -30 ° C. </li><li> Iniciar el experimento al sacrificar 30 a 50% de los peces en cada uno de los tanques. <ol><li> Para practicar la eutanasia a los peces, mezclar 8 g de Finquel con 45 litros de agua en un recipiente grande de plástico y luego coloque el pescado en el contenedor con la solución Finquel. </li><li> Una vez sacrificados, coloque todos los peces sacrificados de un tanque en una bolsa, la bolsa luego de matrimonio, y se almacenan a -30 ° C hasta el momento de la tramitación. </li><li> Pesar cada uno de los peces restantes en cada uno de los tanques, y registrar los pesos; es probable que se necesita un anestésico para llevar a cabo el pesaje. </li><li> Para anestesiar a los peces, mezclar 4,6 g de Finquel con 45 litros de agua en un recipiente grande de plástico, y luego coloque el pescado en el contenedor con la solución Finquel. </li><li> Espere unos minutos para que la anestesia surta efecto antes de pesar el pescado. </li></ol></li><li> En cada día del experimento, descongelar uncantidad apropiada de peces presa, y cortar el pescado presa en pedazos que pesan aproximadamente 1 a 5 g. Pesar la cantidad de peces presa que se colocará en cada uno de los tanques, a continuación, colocar los trozos de pescado presa en cada tanque y permitir que el pez depredador alrededor de 1 hora para alimentar. A continuación, retire todos los alimentos no consumidos, permitir que los alimentos se sequen al aire durante aproximadamente 20 minutos, y luego pesar el alimento no consumido para cada uno de los tanques. Registrar la cantidad de alimento colocado en el tanque y la cantidad de alimento no consumido para cada uno de los tanques de cada día. NOTA: Para el experimento representativo, se alimentaron de la trucha del lago tanta comida como ellos consumirían durante un período de alimentación cada día 18. Sin embargo, los peces depredadores también podría ser colocado en raciones fijas 16,19. </li><li> Terminar el experimento al sacrificar todos los peces depredador que queda en cada uno de los tanques. Para practicar la eutanasia a los peces, mezclar 8 g de Finquel con 45 litros de agua en un recipiente grande de plástico y luego coloque el pescado en el contenedor con la solución Finquel. Record tque el peso de cada uno de los peces sacrificado. Para obtener resultados fiables, el experimento debe funcionar durante al menos 100 días, preferiblemente durante al menos 130 días. Coloque todos los peces de un tanque en una bolsa, la bolsa luego de matrimonio, y se almacenan a -30 ° C hasta el momento de su procesamiento. </li></ol> Homogeneización 2. Pescado <ol><li> Seleccione un conjunto de peces depredadores y / o compuestos de peces de presa para la descongelación. Permita que los compuestos que se descongele parcialmente. Cada material compuesto puede requerir de 0,5 a 1 h para homogeneizar. </li><li> El uso de los mezcladores de tamaño apropiado, homogeneizar cada uno de los compuestos. Para cada compuesto, colocar una muestra (de 50 a 100 g) del homogeneizado en un frasco de limpiado, se enjuagó-acetona, y etiquetados. Luego tapar el frasco y almacenar el frasco a aproximadamente -30 ° C hasta el momento del procesamiento. </li><li> Lave todo el equipo utilizado para homogeneizar los peces, y luego enjuague bien con agua destilada y metanol, entre las muestras. </li></ol> 3. Extracción <ol><li> Pesar 20,0 gde descongelado tejido de los peces se homogeneizaron en un vaso de 200 ml. </li><li> Añadir aproximadamente 40 g de sulfato de sodio y mezclar bien con una espátula. </li><li> Añadir la solución sustituta que contiene pico congéneres 30, 61, 161, y 166 de Spike a una concentración que produce una concentración final de 20 ng / ml en el extracto. </li><li> Deje que la muestra se seque a temperatura ambiente mientras se mezcla cada 20 minutos. </li><li> Permitir que la muestra alcance una consistencia de arena seca, momento en el que la muestra está lista para la extracción. </li><li> La instalación del equipo de extracción Soxhlet con un frasco de 500 ml que contiene chips de hervir teflón, Soxhlet, y del condensador. </li><li> Añadir la mezcla de pescado seco a un dedal de vidrio con una parte inferior del disco grueso vitrificado o dedal de papel. </li><li> Añadir 150 ml de hexano al 50% y 50% de diclorometano en el vaso utilizado para la muestra y se agita mientras raspar las paredes del vaso de precipitados con una espátula. </li><li> Transfiera el disolvente a la parte superior de la Soxhlet con el frasco adjunto y permitir que el ciclo a través de la Soxhlet y enal matraz. </li><li> Repetir una segunda vez con 150 ml de nuevo. </li><li> Colocar el matraz de Soxhlet con el adjunto en el elemento de calentamiento y conecte el condensador. </li><li> Encienda el elemento de calefacción y llevar el disolvente a ebullición suave, a continuación, extraer durante un mínimo de 16 horas asegurándose de que el agua fría se suministra a los condensadores. </li><li> Después de dejar que el disolvente se enfríe, revise para ver si alguno de los frascos de muestra contienen agua. Para los matraces que contienen agua, añadir sulfato de sodio y agitar hasta que el agua es absorbida por el sulfato de sodio. </li><li> Concentrar la muestra utilizando un concentrador de muestra de nitrógeno o un Kaderna danesa (KD) de instalación de vidrio con un baño de agua caliente. </li><li> Permitir que la muestra se evapore hasta un volumen de menos de 2 ml, y luego llevar a un volumen final de 5 ml mediante el uso de pequeños lavados de hexano para transferir la muestra del material de vidrio utilizado para un matraz volumétrico de 5 ml. </li><li> Pasar a un vial de 10 ml y la etiqueta con información de la muestra. </li></ol><ol><li> Preparar gel de sílice se acidificó mediante la adición de 44 g de ácido sulfúrico concentrado a 100 g de gel de sílice activado. </li><li> Añadir 10 g de gel de sílice acidificado en una columna de cromatografía pequeño que contiene un pequeño tapón de lana de vidrio en la parte inferior. </li><li> Añadir 1 ml de extracto de la muestra a la columna después de la pre-limpieza de la columna con 10 ml de hexano. </li><li> Se eluye la columna con 20 ml de hexano y recoger en un tubo de vidrio de 20 ml cónico. </li><li> Colocar el tubo de vidrio en el aparato evaporador de nitrógeno (N-Vap) bajo una corriente de nitrógeno y se sumerge en agua caliente. </li><li> Evaporar a menos de 1 ml pero no a sequedad. </li><li> Retirar de la fuente N-Vap y traslado al matraz aforado de 1 ml con pequeños lavados de hexano. </li><li> Pasar a un 1,8 ml vial automuestreador etiquetado con información de la muestra. </li><li> Pico 4 l de estándar interno en el vial. La muestra está lista para su análisis. </li></ol> 5. Analanalysis por cromatografía de gases - espectrometría de masas de ionización química negativa Uso <ol><li> Utilice estándares para calibrar el instrumento: Las normas están disponibles en las mezclas que consisten en grupos de congéneres bien separados. Mezclas 1-5 consisten en casi todos los congéneres que se encuentran en arocloros 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254, y 1260 Mix 1 se utiliza como una mezcla de calibración multi-nivel, y la linealidad del sistema se confirma mediante la preparación de al menos cinco niveles de calibración en concentraciones entre 2 y 100 ng / ml. Mezclas 2-5 se utilizan como calibraciones de un solo punto para cada congénere. </li><li> Configurar el cromatografía - sistema de espectrometría de masas en el modo de ionización química negativa con hidrógeno como gas portador (1 ml / min) y metano como gas reactivo. </li><li> Utilice una de sílice fundida, columna capilar (60 m × 0,25 mm de diámetro interior) recubiertas con DB-XLB al espesor de la película de 0,25 micras para la separación. Programa de temperatura del horno 60 a 212 ° C a 25 ° C / min, luego a 260 ° C a 1 ° C / min, y luego a 280 ° C a 4 ° C / min, con un tiempo de retención final de 4 min. Las temperaturas del inyector y línea de transferencia deben establecerse a 280 ° C. Inyectar 1 a 2 l de la muestra usando el modo de inyección sin división. </li><li> Analizar todos los estándares y las muestras por el método estándar interno utilizando 13 decaclorobifenilo C-etiquetados. </li><li> Lleve a cabo una comprobación de la calibración inicial mediante la ejecución de un segundo estándar de código y Aroclors 1242 y 1260, y luego comparar los valores previstos para los congéneres Aroclor con las cantidades observadas de este procedimiento de revisión. </li><li> Una vez que el procedimiento de calibración inicial se ha realizado con éxito, el análisis completo de todas las muestras. Ejecute una comprobación de una calibración cada diez muestras, utilizando cualquiera de las mezclas de calibración de la calibración inicial. </li></ol> 6. Cálculo del Patrimonio trófico Eficiencia de Transferencia <ol><li> Calcular la eficiencia neta de transferencia trófica, γ, para cada combinación of tanque y congénere PCB utilizando la siguiente ecuación: <img alt="Ecuación 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51496/51496eq1.jpg" /> , Donde [PCB f] es la concentración promedio de los congéneres de PCB de los peces depredadores en el tanque al final del experimento, f W es el peso medio de los peces depredadores en el tanque al final del experimento, [PCB i] es la concentración media de los congéneres de PCB de los peces depredadores en el recipiente al inicio del experimento, W i es el peso medio de los peces depredador al comienzo del experimento, y la cantidad de congénere PCB ingerido se refiere al peso de la congénere PCB ingiere, en promedio, por cada una trucha de lago en el tanque durante el curso del experimento. </li><li> Calcular el denominador en la ecuación anterior, multiplicando la concentración media del congénere PCB en los materiales compuestos de peces presa por la cantidad promedio (peso) de los peces presa comido por pez depredador en el dur tanqueing todo el curso del experimento. </li></ol>

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	<li>Madenjian, C. P., Carpenter, S. R., Rand, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Why+are+the+PCB+concentrations+of+salmonine+individuals+from+the+same+lake+so+highly+variable?.">Why are the PCB concentrations of salmonine individuals from the same lake so highly variable?.</a> Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 51 (4), 800-807 (1994).</li><li>Madenjian, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Net+trophic+transfer+efficiency+of+PCBs+to+Lake+Michigan+coho+salmon+from+their+prey.">Net trophic transfer efficiency of PCBs to Lake Michigan coho salmon from their prey.</a> Environmental Science and Technology. 32 (20), 3063-3067 (1998).</li><li>Thomann, R. 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Para las estimaciones más exactas de γ, el experimentador debe ser capaz de rastrear con precisión tanto la cantidad de alimento colocado en cada uno de los tanques y la cantidad de alimento no consumido en cada uno de los tanques durante el curso del experimento. Para lograr esto, el experimentador debe ser capaz de eliminar todos los restos de comida de los tanques y determinar con precisión su peso. Además de un seguimiento preciso de la comida en realidad comido por el pez depredador, estimación precisa de γ ...

Of all of the factors affecting the rate at which fish accumulate contaminants, the efficiency with which fish retain contaminants from the food that they eat is one of the most important1-3. Risk assessment models have been developed to predict future risks to both people and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination, and the reliability of these predictions critically depends on the accuracy of the estimates of the efficiency at which fish retain contaminants from their food4.
The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is transported through the gut wall is known as gross trophic transfer efficiency5. A portion of the quantity of the contaminant transported through the gut wall of the predator may eventually be lost through depuration and/or metabolic transformation. The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is retained by the predator, including any losses due to elimination and metabolic transformation, is known as net trophic transfer efficiency6.
Gross trophic transfer efficiency of organic contaminants to fish from their prey appears to vary with the contaminant&#8217;s chemical properties, including lipid affiliation as measured by the octanol-water partition coefficient, Kow3,7. According to an empirical relationship developed by Thomann3, gross trophic transfer efficiency is relatively high when log Kow is equal to a value between 5 and 6. Gross trophic transfer efficiency declines exponentially at a rate of 50% per unit of log Kow as log Kow increases from 6 to 10, according to the Thomann3 relationship.
Nevertheless, the gross and net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to fish from their prey do not appear to follow the Thomann3 relationship in most cases. Although the trophic transfer efficiencies of PCB congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from its food followed the relationship proposed by Thomann8, trophic transfer efficiencies of PCB congeners were either just weakly related or not related at all to log Kow for Atlantic salmon (Salmo salar)9, rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)10, coho salmon (Oncorhynchus kisutch)11, and northern pike (Esox lucius)11.
The overall goal of this study was to present a laboratory technique for estimating the net trophic transfer efficiencies of PCB congeners to a piscivorous fish from its prey. Lake trout (Salvelinus namaycush) was chosen as the piscivorous fish for our experiment because lake trout are relatively easy to maintain in laboratory tanks. Bloater (Coregonus hoyi) was selected as the prey fish to be fed to the lake trout because bloater is eaten by lake trout in its natural setting12. In addition, we determined whether the net trophic transfer efficiencies for lake trout estimated from our laboratory experiment followed the Thomann3 relationship. We also determined whether the degree of activity by the lake trout had a significant effect on net trophic transfer efficiency (&#947;) of the PCB congeners. Activity by lake trout in the Laurentian Great Lakes is believed to have recently increased because changes in the food webs have caused lake trout to allocate more energy toward searching for food13. Lake trout were forced to exercise in one set of tanks by subjecting these lake trout to relatively high flow rates, whereas the other lake trout were permitted to remain relatively inactive by subjecting them to relatively low flow rates. Finally, the specific details of our laboratory procedure that need to be carefully followed to ensure the highest degree of accuracy in the &#947; estimates and to make the laboratory results applicable to the field are discussed, as well as future directions for research building on our laboratory technique. Net trophic transfer efficiency can be estimated both in the laboratory and in the field, and advantages and disadvantages are associated with both approaches. Accuracy in the estimate of &#947; depends on the accuracy of the estimate of food consumption. The amount of food eaten by fish in the laboratory can be accurately determined when proper protocols are followed, whereas the amount of food eaten by fish in the field is typically estimated via bioenergetics modeling. Use of bioenergetics modeling to derive the amount of food eaten has the potential to introduce a substantial amount of uncertainty into the estimates of food consumption. Fish bioenergetics models have been shown to estimate food consumption with no detectable bias for the case of lake trout14,15, but considerable bias in bioenergetics model estimates of food consumption has been detected for the case of lake whitefish15,16. On the other hand, estimates of net trophic transfer efficiency estimated in the laboratory may not be applicable to the field due to a difference in feeding rates between the laboratory and the field17. Evidence from both the laboratory and the field suggest that feeding rate can influence &#947;14,17.
The methodology used in the present study for estimating &#947; in the laboratory is applicable to situations where the predator fish is fed prey fish, and the amount of prey fish eaten by the predator can be accurately tracked. To accomplish this, the experimenter must weigh all of the food before placement in the tank; and the experimenter must be able to remove all of the uneaten food from the tank, and then weigh the uneaten food. In addition, an adequate suite of mixers and blenders should be available to obtain a sufficient degree of homogenization of the samples of both predator and prey fish. Finally, the gas chromatography &#8211; mass spectrometry instrumentation used to determine the PCB congener concentrations must be capable of detecting and quantifying individual PCB congeners at relatively low concentrations.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="632">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Name&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">870-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-430-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">2,380-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-630-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="68">
			<td height="68" style="height:68px;width:259px;">Tricaine methanesulfonate (Finquel)</td>
			<td style="width:87px;">Argent Chemical Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">C-FINQ-UE-100G</td>
			<td style="width:167px;">Eugenol could also be used as an anesthetic.</td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Ashland chef knife</td>
			<td style="width:87px;">Chicago Cutlery</td>
			<td style="width:119px;">SKU 1106336</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Cutting board</td>
			<td style="width:87px;">Williams-Sonoma</td>
			<td style="width:119px;">3863586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Hobart verical mixer (40 quart)</td>
			<td style="width:87px;">Hobart Corporation</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">1.9-L food processor</td>
			<td style="width:87px;">Robot Coupe, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">RSI 2Y1&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Polyethylene bags (various sizes)</td>
			<td style="width:87px;">Arcan Inc.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">I-Chem jars</td>
			<td style="width:87px;">I-Chem</td>
			<td style="width:119px;">220-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Top-load electronic balance</td>
			<td style="width:87px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:119px;">Mettler PM 6000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Sodium sulfate, anhydrous - granular</td>
			<td style="width:87px;">EMD</td>
			<td style="width:119px;">SX0760E-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Glass extraction thimbles (45 mm x 130 mm)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">LG-7070-114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Teflon boiling chips</td>
			<td style="width:87px;">Chemware</td>
			<td style="width:119px;">919120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Rapid Vap nitrogen sample concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Labconco</td>
			<td style="width:119px;">7910000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">N-Vap nitrogen concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Organomation</td>
			<td style="width:119px;">112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Soxhlet extraction glassware (500 mL)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">&#160;LG-6900-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Hexane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 211-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Dichloromethane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 300-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Silica gel</td>
			<td style="width:87px;">BDH</td>
			<td style="width:119px;">Cat. BDH9004-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Labl Line 5000 mult-unit extraction heater</td>
			<td style="width:87px;">Lab Line Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Agilent 5973 GC/MS with chemical ionization</td>
			<td style="width:87px;">Agilent</td>
			<td style="width:119px;">5973N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:259px;">Internal standard solution&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Cambridge Isotope Laboratories</td>
			<td style="width:119px;">EC-1410-1.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">PCB congener calibration standards</td>
			<td style="width:87px;">Accustandard</td>
			<td style="width:119px;">C-CSQ-SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">DB-XLB column (60m x 0.25mm, 0.25 micron)</td>
			<td style="width:87px;">Agilent/ J&#38;W</td>
			<td style="width:119px;">122-1262</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

laboratory estimation of net trophic transfer efficiencies of pcb congeners to lake trout (salvelinus namaycush) from its prey

Una técnica para la estimación de la eficiencia de laboratorio red trófica de transferencia (γ) de bifenilos policlorados (PCB) congéneres para los peces piscívoros de sus presas se describe en este documento. Durante un experimento de laboratorio de 135 días, nos alimentamos bloater (Coregonus hoyi) que habían sido capturados en el Lago Michigan para la trucha de lago (Salvelinus namaycush) mantenido en ocho tanques de laboratorio. Bloater es una presa natural para la trucha de lago. En cuatro de los tanques, se utilizó una velocidad de flujo relativamente alta para asegurar una actividad relativamente alta por la trucha de lago, mientras que se utilizó un caudal bajo en los otros cuatro tanques, lo que permite una baja actividad trucha de lago. Sobre una base del tanque por tanque, se registró la cantidad de alimento ingerido por la trucha de lago en cada día del experimento. Cada trucha de lago se pesó al comienzo y al final del experimento. Cuatro a nueve trucha de lago de cada uno de los ocho tanques fueron sacrificados al inicio del experimento, y todo trucha 10 lago que queda en cada uno de los tanques fueron euthanzado al final del experimento. Se determinó la concentración de 75 congéneres de PCB en la trucha de lago en el inicio del experimento, en la trucha de lago, al final del experimento, y en bloaters alimentamos a la trucha de lago durante el experimento. En base a estas mediciones, γ se calculó para cada uno de 75 congéneres de PCB en cada uno de los ocho tanques. Significan γ se calculó para cada uno de los 75 congéneres de PCB para la trucha de lago activa e inactiva. Debido a que el experimento se repitió en ocho tanques, el error estándar de decir γ podría estimarse. Los resultados de este tipo de experimentos son útiles en los modelos de evaluación de riesgo para predecir el riesgo futuro de los seres humanos y la vida silvestre que comen peces contaminados en diversos escenarios de la contaminación ambiental.

Trucha de lago mostró una cantidad sustancial de crecimiento durante el experimento, como la trucha iniciales lago significan pesos oscilaron desde 694 hasta 907 g, mientras que las truchas finales lago significan pesos variaron de 853 a 1.566 g (Tabla 1). El importe medio de los alimentos consumidos por una trucha de lago durante el curso del experimento de 135 días osciló entre 641 a 2.649 g. La media de las concentraciones de congéneres de PCB en la trucha de lago aumentó durante el experimento,...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

Se presenta una técnica para la estimación de laboratorio de eficiencia de transferencia trófica neto de bifenilos policlorados (PCB) congéneres para los peces piscívoros de sus presas. Para maximizar la aplicabilidad de los resultados de laboratorio al campo, los peces piscívoros se debe alimentar peces presa que normalmente se come en el campo.

Estimación Laboratorio de red trófica eficiencias de transferencia de los congéneres de PCB a la trucha de lago (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) Desde Su Presa

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

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Research

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Environment

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

10.9K vistas.  U. S. Geological Survey.  Se presenta una técnica para la estimación de laboratorio de eficiencia de transferencia trófica neto de bifenilos policlorados (PCB) congéneres para los peces piscívoros de sus presas. Para maximizar la aplicabilidad de los resultados de laboratorio al campo, los peces piscívoros se debe alimentar peces presa que normalmente se come en el campo. 