This work was funded, in part, by the Great Lakes Fishery Commission and the Annis Water Resources Institute. Use of trade, product, or firm names does not imply endorsement by the U. S. Government. This article is Contribution 1867 of the U. S. Geological Survey Great Lakes Science Center.

1 Provette <ol><li> Ottenere il pesce preda da alimentare per il pesce predatore durante l&#39;esperimento. Preferibilmente questi pesci preda dovrebbero essere acquisite in campo, congelati e conservati a circa -30 ° C. Considerate le operazioni di pesca commerciale come fonte potenziale per il pesce preda. </li><li> Introdurre il pesce predatore nei serbatoi di laboratorio da utilizzare per l&#39;esperimento. Fino al 15 predatore pesci sono stati introdotti in ciascuna delle vasche 870-L, e fino a 30 predatore pesci sono stati introdotti in ciascuna delle cisterne 2.380-L in studi precedenti 16,18. </li><li> Acclimatare il pesce predatore ad una dieta del pesce preda selezionata. Una volta acclimatati, il pesce predatore dovrebbe rimanere su questa dieta per 1-3 mesi prima di iniziare l&#39;esperimento. </li><li> Mettere da parte i campioni di pesce preda selezionando in modo casuale 10 a 20 campioni compositi dal lotto di pesce preda. Numero di pesce preda in un campione composito può variare da 3 a 100, a seconda delle dimensioni della predapesce. Ogni campione composito deve essere il doppio insaccato, congelato e conservato a circa -30 ° C. </li><li> Avviare l&#39;esperimento sacrificando 30 al 50% dei pesci in ciascuna delle vasche. <ol><li> Per eutanasia il pesce, mescolare 8 g di Finquel con 45 L di acqua in un grande contenitore di plastica e poi mettere il pesce nel contenitore con la soluzione Finquel. </li><li> Una volta eutanasia, inserire tutti i pesci sacrificato da un serbatoio in un sacchetto, poi doppio sacchetto, e conservare a circa -30 ° C fino al momento della lavorazione. </li><li> Pesare ciascuna del pesce rimanente in ciascuna delle cisterne, e registrare i pesi; un anestetico sarà probabilmente necessario per condurre la pesatura. </li><li> Per anestetizzare il pesce, mescolare 4,6 g di Finquel con 45 L di acqua in un grande contenitore di plastica, e poi mettere il pesce nel contenitore con la soluzione Finquel. </li><li> Attendere qualche minuto per l&#39;anestetico abbia effetto prima di pesare il pesce. </li></ol></li><li> Ogni giorno dell&#39;esperimento, scongelare unadeguata quantità di pesce preda, e tagliare il pesce preda in pezzi del peso di circa 1 a 5 g. Pesare la quantità di pesce preda ad essere messi in ciascuna delle vasche, poi rilasciare i pezzi di pesce preda in ogni serbatoio e permettere al pesce predatore circa 1 ora da sfamare. Quindi rimuovere tutto il cibo non mangiato, permettere al cibo di aria secca per circa 20 minuti, e poi pesare il cibo non consumato per ciascuna delle vasche. Registrare la quantità di cibo collocato nel serbatoio e la quantità di resti di cibo per ciascuno dei serbatoi ogni giorno. NOTA: Per l&#39;esperimento rappresentativo, trota di lago sono stati alimentati con tanto cibo quanto avrebbero consumare nel corso di un periodo di alimentazione ogni giorno 18. Tuttavia, il pesce predatore potrebbe anche essere collocato su razioni fisse 16,19. </li><li> Terminare l&#39;esperimento sacrificando tutti i restanti pesci predatori in ciascuno dei serbatoi. Per eutanasia il pesce, mescolare 8 g di Finquel con 45 L di acqua in un grande contenitore di plastica e poi mettere il pesce nel contenitore con la soluzione Finquel. Record tegli peso di ciascuno dei pesci sacrificato. Per ottenere risultati affidabili, l&#39;esperimento deve funzionare per almeno 100 giorni, preferibilmente per almeno 130 giorni. Mettere tutti i pesci da un serbatoio in un sacchetto, poi doppio sacchetto, e conservare a circa -30 ° C fino al momento della lavorazione. </li></ol> 2 Pesce Omogeneizzazione <ol><li> Selezionare un insieme di pesci predatori e / o compositi pesce preda per lo scongelamento. Lasciare i compositi scongelare parzialmente. Ogni composito può richiedere da 0,5 a 1 ora per omogeneizzare. </li><li> Utilizzando i frullatori appropriate dimensioni, omogenizzare ciascuno dei compositi. Per ogni composito, posizionare un campione (da 50 a 100 g), del omogenato in un barattolo pulito, acetone-sciacquati, ed etichettati. Poi tappare il vaso e conservare il vaso a circa -30 ° C fino al momento della lavorazione. </li><li> Lavare tutte le attrezzature utilizzate per omogeneizzare il pesce, e poi risciacquare bene con acqua distillata e metanolo, tra i campioni. </li></ol> 3 Estrazione <ol><li> Pesare 20,0 gdi pesce scongelato tessuto omogeneizzato in un bicchiere da 200 ml. </li><li> Aggiungere circa 40 g di solfato di sodio e mescolare bene con la spatola. </li><li> Aggiungere la soluzione picco surrogato contenente congeneri 30, 61, 161, e 166 Spike ad una concentrazione che produce una concentrazione finale di 20 ng / ml nell&#39;estratto. </li><li> Lasciare il campione asciugare a temperatura ambiente mescolando ogni 20 min. </li><li> Lasciare che il campione raggiunga una consistenza di sabbia asciutta, a questo punto il campione è pronto per l&#39;estrazione. </li><li> Sistemare il dispositivo di estrazione Soxhlet con un pallone da 500 ml contenente chip Teflon bollire, Soxhlet, e condensatore. </li><li> Aggiungere il composto di pesce essiccato in un ditale di vetro con fondo a disco grossa sinterizzato o carta ditale. </li><li> Aggiungere 150 ml di esano 50% e il 50% diclorometano nel becher usato per il campione e mescolare mentre raschiando le pareti del becher con una spatola. </li><li> Trasferire il solvente per la parte superiore del Soxhlet con il pallone attaccato e permettono di scorrere le Soxhlet e inal pallone. </li><li> Ripetere l&#39;operazione una seconda volta con 150 ml di nuovo. </li><li> Inserire il Soxhlet con la beuta adattata sull&#39;elemento di riscaldamento e collegare il condensatore. </li><li> Accendere l&#39;elemento riscaldante e portare il solvente a lenta ebollizione, poi estrarre per un minimo di 16 ore assicurandosi che l&#39;acqua fredda viene fornita ai condensatori. </li><li> Dopo aver lasciato il solvente raffreddare, controllare per vedere se uno qualsiasi dei flaconi campione contengono acqua. Per i flaconi contenenti acqua, aggiungere solfato di sodio e agitare fino a quando l&#39;acqua viene assorbita dal solfato di sodio. </li><li> Concentrare il campione utilizzando un campione concentratore azoto o un Kaderna danese (KD) installazione cristalleria con un bagno di acqua calda. </li><li> Lasciare il campione evaporare a un volume di meno di 2 ml, e quindi portare ad un volume finale di 5 ml utilizzando piccoli lavaggi di esano per trasferire il campione dalla vetreria utilizzata in un matraccio tarato da 5 ml. </li><li> Trasferimento a 10 ml flacone e l&#39;etichetta con le informazioni del campione. </li></ol><ol><li> Preparare gel di silice acidificato con l&#39;aggiunta di 44 g di acido solforico concentrato a 100 g di gel di silice attivato. </li><li> Aggiungere 10 g di gel di silice acidificato in una piccola colonna cromatografica contenente un piccolo tampone di lana di vetro nella parte inferiore. </li><li> Aggiungere 1 ml di estratto del campione alla colonna dopo il pre-pulizia della colonna con 10 ml di esano. </li><li> Eluire la colonna con 20 ml di esano e raccogliere in provetta conica da 20 ml. </li><li> Posizionare il tubo di vetro sull&#39;apparato evaporatore azoto (N-Vap) sotto flusso di azoto e immerso in acqua calda. </li><li> Evaporare a meno di 1 ml ma non a secchezza. </li><li> Rimuovere dal N-Vap e trasferimento in 1 ml matraccio con piccoli lavaggi di esano. </li><li> Trasferire in un flacone da 1,8 ml autocampionatore etichettati con informazioni sui campioni. </li><li> Spike 4 ml di standard interno nel flaconcino. Il campione è ora pronto per l&#39;analisi. </li></ol> 5. analeYsis mediante gascromatografia - spettrometria di massa Utilizzando Negativo ionizzazione chimica <ol><li> Utilizzare gli standard per calibrare lo strumento: le norme siano disponibili in miscele costituite da gruppi di congeneri ben separati. Miscele 1-5 composto da quasi tutti i congeneri presenti in Aroclor 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254, e 1260 Mix 1 è usato come un mix di calibrazione multi-livello, e la linearità del sistema è confermata da preparare almeno cinque livelli di taratura a concentrazioni comprese tra 2 e 100 ng / ml. Miscele 2-5 sono usati come punto di taratura singoli per ogni composto. </li><li> Impostare la cromatografia - sistema di spettrometria di massa in modalità di ionizzazione chimica negativa con idrogeno come gas di trasporto (1 ml / min) e il metano come gas reagente. </li><li> Utilizzare un-silice fusa, colonna capillare (60 m × 0,25 millimetri di diametro interno) rivestito con DB-XLB a spessore del film di 0,25 micron per la separazione. Programma temperatura forno 60-212 ° C a 25 ° C / min, poi a 260 ° C a 1 ° C / min, e poi a 280 ° C a 4 ° C / min, con un tempo di mantenimento finale di 4 min. Temperature dell&#39;iniettore e linea di trasferimento devono essere impostati a 280 ° C. Iniettare 1 a 2 ml di campione utilizzando la modalità di iniezione splitless. </li><li> Analizzare tutti gli standard ed i campioni con il metodo dello standard interno con 13 C-marcato decachlorobiphenyl. </li><li> Eseguire un controllo sulla taratura iniziale mediante l&#39;esecuzione di un secondo livello di origine e Aroclors 1242 e il 1260, e poi confrontare i valori previsti per i congeneri Aroclor con gli importi osservati di questa procedura di controllo. </li><li> Una volta che la procedura di calibrazione iniziale è stata compiuta con successo, un&#39;analisi completa di tutti i campioni. Eseguire un controllo di calibrazione ogni dieci campioni, utilizzando una delle miscele di taratura dalla calibrazione iniziale. </li></ol> 6 Calcolo del Net trofico efficienza di trasferimento <ol><li> Calcola efficienza di trasferimento trofico rete, γ, per ogni combinazione oserbatoio F e PCB composto utilizzando la seguente equazione: <img alt="Equazione 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51496/51496eq1.jpg" /> , Dove [PCB f] è la concentrazione media di PCB congenere dei pesci predatori nel serbatoio alla fine dell&#39;esperimento, W f è il peso medio dei pesci predatori nel serbatoio alla fine dell&#39;esperimento, [PCB i] è la concentrazione media di PCB congenere dei pesci predatori nel serbatoio all&#39;inizio dell&#39;esperimento, W i è il peso medio dei pesci predatori all&#39;inizio dell&#39;esperimento, e la quantità di PCB congenere ingerito si riferisce al peso del congenere PCB ingerito, in media, da ogni trota lago nel serbatoio durante il corso dell&#39;esperimento. </li><li> Calcolare il denominatore nell&#39;equazione di cui sopra moltiplicando la concentrazione media del congenere PCB nei compositi pesce preda per l&#39;importo medio (peso) del pesce preda mangiato al pesce predatore nel dur serbatoiozione l&#39;intero corso dell&#39;esperimento. </li></ol>

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Per le stime più accurate di γ, lo sperimentatore deve essere in grado di monitorare con precisione sia la quantità di cibo posto in ciascuno dei serbatoi e la quantità di resti di cibo in ciascuno dei serbatoi durante il corso dell&#39;esperimento. Per fare questo, lo sperimentatore deve essere in grado di rimuovere tutto il cibo non consumato dai serbatoi e determinare con precisione il suo peso. Oltre al monitoraggio accurato del cibo effettivamente consumato dai pesci predatori, stima accurata di γ può dipende...

Of all of the factors affecting the rate at which fish accumulate contaminants, the efficiency with which fish retain contaminants from the food that they eat is one of the most important1-3. Risk assessment models have been developed to predict future risks to both people and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination, and the reliability of these predictions critically depends on the accuracy of the estimates of the efficiency at which fish retain contaminants from their food4.
The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is transported through the gut wall is known as gross trophic transfer efficiency5. A portion of the quantity of the contaminant transported through the gut wall of the predator may eventually be lost through depuration and/or metabolic transformation. The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is retained by the predator, including any losses due to elimination and metabolic transformation, is known as net trophic transfer efficiency6.
Gross trophic transfer efficiency of organic contaminants to fish from their prey appears to vary with the contaminant&#8217;s chemical properties, including lipid affiliation as measured by the octanol-water partition coefficient, Kow3,7. According to an empirical relationship developed by Thomann3, gross trophic transfer efficiency is relatively high when log Kow is equal to a value between 5 and 6. Gross trophic transfer efficiency declines exponentially at a rate of 50% per unit of log Kow as log Kow increases from 6 to 10, according to the Thomann3 relationship.
Nevertheless, the gross and net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to fish from their prey do not appear to follow the Thomann3 relationship in most cases. Although the trophic transfer efficiencies of PCB congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from its food followed the relationship proposed by Thomann8, trophic transfer efficiencies of PCB congeners were either just weakly related or not related at all to log Kow for Atlantic salmon (Salmo salar)9, rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)10, coho salmon (Oncorhynchus kisutch)11, and northern pike (Esox lucius)11.
The overall goal of this study was to present a laboratory technique for estimating the net trophic transfer efficiencies of PCB congeners to a piscivorous fish from its prey. Lake trout (Salvelinus namaycush) was chosen as the piscivorous fish for our experiment because lake trout are relatively easy to maintain in laboratory tanks. Bloater (Coregonus hoyi) was selected as the prey fish to be fed to the lake trout because bloater is eaten by lake trout in its natural setting12. In addition, we determined whether the net trophic transfer efficiencies for lake trout estimated from our laboratory experiment followed the Thomann3 relationship. We also determined whether the degree of activity by the lake trout had a significant effect on net trophic transfer efficiency (&#947;) of the PCB congeners. Activity by lake trout in the Laurentian Great Lakes is believed to have recently increased because changes in the food webs have caused lake trout to allocate more energy toward searching for food13. Lake trout were forced to exercise in one set of tanks by subjecting these lake trout to relatively high flow rates, whereas the other lake trout were permitted to remain relatively inactive by subjecting them to relatively low flow rates. Finally, the specific details of our laboratory procedure that need to be carefully followed to ensure the highest degree of accuracy in the &#947; estimates and to make the laboratory results applicable to the field are discussed, as well as future directions for research building on our laboratory technique. Net trophic transfer efficiency can be estimated both in the laboratory and in the field, and advantages and disadvantages are associated with both approaches. Accuracy in the estimate of &#947; depends on the accuracy of the estimate of food consumption. The amount of food eaten by fish in the laboratory can be accurately determined when proper protocols are followed, whereas the amount of food eaten by fish in the field is typically estimated via bioenergetics modeling. Use of bioenergetics modeling to derive the amount of food eaten has the potential to introduce a substantial amount of uncertainty into the estimates of food consumption. Fish bioenergetics models have been shown to estimate food consumption with no detectable bias for the case of lake trout14,15, but considerable bias in bioenergetics model estimates of food consumption has been detected for the case of lake whitefish15,16. On the other hand, estimates of net trophic transfer efficiency estimated in the laboratory may not be applicable to the field due to a difference in feeding rates between the laboratory and the field17. Evidence from both the laboratory and the field suggest that feeding rate can influence &#947;14,17.
The methodology used in the present study for estimating &#947; in the laboratory is applicable to situations where the predator fish is fed prey fish, and the amount of prey fish eaten by the predator can be accurately tracked. To accomplish this, the experimenter must weigh all of the food before placement in the tank; and the experimenter must be able to remove all of the uneaten food from the tank, and then weigh the uneaten food. In addition, an adequate suite of mixers and blenders should be available to obtain a sufficient degree of homogenization of the samples of both predator and prey fish. Finally, the gas chromatography &#8211; mass spectrometry instrumentation used to determine the PCB congener concentrations must be capable of detecting and quantifying individual PCB congeners at relatively low concentrations.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="632">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Name&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">870-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-430-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">2,380-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-630-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="68">
			<td height="68" style="height:68px;width:259px;">Tricaine methanesulfonate (Finquel)</td>
			<td style="width:87px;">Argent Chemical Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">C-FINQ-UE-100G</td>
			<td style="width:167px;">Eugenol could also be used as an anesthetic.</td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Ashland chef knife</td>
			<td style="width:87px;">Chicago Cutlery</td>
			<td style="width:119px;">SKU 1106336</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Cutting board</td>
			<td style="width:87px;">Williams-Sonoma</td>
			<td style="width:119px;">3863586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Hobart verical mixer (40 quart)</td>
			<td style="width:87px;">Hobart Corporation</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">1.9-L food processor</td>
			<td style="width:87px;">Robot Coupe, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">RSI 2Y1&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Polyethylene bags (various sizes)</td>
			<td style="width:87px;">Arcan Inc.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">I-Chem jars</td>
			<td style="width:87px;">I-Chem</td>
			<td style="width:119px;">220-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Top-load electronic balance</td>
			<td style="width:87px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:119px;">Mettler PM 6000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Sodium sulfate, anhydrous - granular</td>
			<td style="width:87px;">EMD</td>
			<td style="width:119px;">SX0760E-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Glass extraction thimbles (45 mm x 130 mm)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">LG-7070-114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Teflon boiling chips</td>
			<td style="width:87px;">Chemware</td>
			<td style="width:119px;">919120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Rapid Vap nitrogen sample concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Labconco</td>
			<td style="width:119px;">7910000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">N-Vap nitrogen concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Organomation</td>
			<td style="width:119px;">112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Soxhlet extraction glassware (500 mL)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">&#160;LG-6900-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Hexane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 211-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Dichloromethane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 300-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Silica gel</td>
			<td style="width:87px;">BDH</td>
			<td style="width:119px;">Cat. BDH9004-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Labl Line 5000 mult-unit extraction heater</td>
			<td style="width:87px;">Lab Line Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Agilent 5973 GC/MS with chemical ionization</td>
			<td style="width:87px;">Agilent</td>
			<td style="width:119px;">5973N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:259px;">Internal standard solution&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Cambridge Isotope Laboratories</td>
			<td style="width:119px;">EC-1410-1.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">PCB congener calibration standards</td>
			<td style="width:87px;">Accustandard</td>
			<td style="width:119px;">C-CSQ-SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">DB-XLB column (60m x 0.25mm, 0.25 micron)</td>
			<td style="width:87px;">Agilent/ J&#38;W</td>
			<td style="width:119px;">122-1262</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

laboratory estimation of net trophic transfer efficiencies of pcb congeners to lake trout (salvelinus namaycush) from its prey

Una tecnica per la stima laboratorio di efficienza di rete trofica trasferimento (γ) dei bifenili policlorurati (PCB) congeneri di pesce piscivori dalla loro preda è qui descritta. Nel corso di un esperimento di laboratorio 135 giorni, ci siamo nutriti aringa (Coregonus hoyi), che era stato catturato nel lago Michigan a Trout Lake (Salvelinus namaycush) tenuti in otto serbatoi di laboratorio. Bloater è una preda naturale per la trota lago. In quattro dei serbatoi, una portata relativamente elevato è stato utilizzato per garantire relativamente elevata attività della trota di lago, mentre una bassa portata è stata utilizzata nelle altre quattro vasche, consentendo bassa attività trota di lago. Su una base serbatoio-by-tank, la quantità di cibo mangiato da trota lago ogni giorno dell&#39;esperimento è stato registrato. Ogni trota di lago è stato pesato all&#39;inizio e alla fine dell&#39;esperimento. Quattro a nove trota lago da ciascuna delle otto serbatoi sono stati sacrificati all&#39;inizio dell&#39;esperimento, e tutti trota lago restante 10 in ciascuno dei serbatoi erano euthanzata alla fine dell&#39;esperimento. Abbiamo determinato le concentrazioni di 75 congeneri di PCB nel trota lago all&#39;inizio dell&#39;esperimento, la trota lago alla fine dell&#39;esperimento, e in bloaters nutriti alla trota lago durante l&#39;esperimento. Sulla base di queste misurazioni, γ è stata calcolata per ciascuno dei 75 congeneri dei PCB in ciascuna delle otto serbatoi. Significa γ è stata calcolata per ciascuno dei 75 congeneri di PCB per trota di lago sia attiva che inattiva. Poiché l&#39;esperimento è stato replicato in otto serbatoi, l&#39;errore standard sulla media γ potrebbe essere stimato. I risultati di questo tipo di esperimento sono utili nei modelli di valutazione del rischio per predire il futuro rischio per l&#39;uomo e la fauna selvatica che mangiano pesce contaminato sotto vari scenari di contaminazione ambientale.

Trout Lake ha mostrato una notevole quantità di crescita durante l&#39;esperimento, come la trota lago iniziali significano pesi variava 694-907 g, mentre le trote lacustri finali il peso medio variava da 853 a 1566 g (Tabella 1). La quantità media di cibo consumato da una trota lago durante il corso dell&#39;esperimento 135 giorni variava da 641 a 2.649 g. Concentrazioni di PCB congeneri media nella trota lago aumentato durante l&#39;esperimento, le concentrazioni di congeneri PCB media variava 0,01-...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

Una tecnica per la stima laboratorio di rendimento netto trasferimento trofico dei bifenili policlorurati (PCB) congeneri di pesce piscivori dalla loro preda è presentato. Per massimizzare l&#39;applicabilità dei risultati di laboratorio al campo, il pesce piscivori dovrebbe essere alimentato pesce preda che sono tipicamente consumati in campo.

Laboratorio Stima di Net trofiche trasferimento incrementi di efficienza di congeneri di PCB a Lake Trout (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) Dalla sua preda

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

laboratory-estimation-net-trophic-transfer-efficiencies-pcb-congeners

Research

JoVE Journal

Environment

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

10.9K Views.  U. S. Geological Survey.  Una tecnica per la stima laboratorio di rendimento netto trasferimento trofico dei bifenili policlorurati (PCB) congeneri di pesce piscivori dalla loro preda è presentato. Per massimizzare l'applicabilità dei risultati di laboratorio al campo, il pesce piscivori dovrebbe essere alimentato pesce preda che sono tipicamente consumati in campo. 