This work was funded, in part, by the Great Lakes Fishery Commission and the Annis Water Resources Institute. Use of trade, product, or firm names does not imply endorsement by the U. S. Government. This article is Contribution 1867 of the U. S. Geological Survey Great Lakes Science Center.

1. Labor-Experiment <ol><li> Besorgen Sie sich die Beutefische, um die Raubfische während des Experiments eingespeist werden. Vorzugsweise sind diese Raubfische sollte im Bereich, gefroren erfasst werden, und bei etwa -30 ° C gelagert. Betrachten gewerblichen Fischerei als eine mögliche Quelle für die Raubfische. </li><li> Einführung der Raubfische in den Laborbehältern für den Versuch verwendet werden. Bis zu 15 Raubfische wurden in jede der 870-Liter-Druckbehälter eingeführt worden ist, und bis zu 30 Raubfische wurden in früheren Studien 16,18 in jede 2,380-l-Tanks eingeführt. </li><li> Akklimatisieren die Raubfische zu einer Diät der ausgewählten Beutefische. Einmal eingewöhnt, die Raubfische sollten auf diese Diät für 1-3 Monate vor Beginn des Experiments bleiben. </li><li> Beiseite Proben Raubfisch durch zufällige Auswahl von 10 bis 20 Mischproben aus der Partie der Beutefische gesetzt. Anzahl der Beutefisch in einer Mischprobe kann von 3 bis 100 reichen, abhängig von der Größe des BeuteFisch. Jede Mischprobe sollte doppelt verpackt, eingefroren und bei etwa -30 ° C gelagert werden. </li><li> Einleitung des Versuchs durch Verzicht 30 bis 50% der Fische in jedem der Tanks. <ol><li> , Um die Fische einschläfern, mischen 8 g Finquel mit 45 l Wasser in einem großen Kunststoffbehälter und legen Sie dann die Fische in dem Behälter mit der Finquel Lösung. </li><li> Sobald eingeschläfert, legen alle Fische getötet von einem Tank in einen Beutel, dann Doppeltasche, und lagern bei etwa -30 ° C bis zur Zeit der Verarbeitung. </li><li> Wiegen jede der in jedem der Tanks restlichen Fisch, und notieren Sie die Gewichte; ein Anästhetikum wird wahrscheinlich nötig sein, um den über Wiegen. </li><li> , Um die Fische zu betäuben, mischen Sie 4,6 g Finquel mit 45 l Wasser in einem großen Kunststoffbehälter, und legen Sie dann die Fische in dem Behälter mit der Finquel Lösung. </li><li> Warten Sie ein paar Minuten für die Betäubung wirksam vor dem Wiegen der Fische zu nehmen. </li></ol></li><li> An jedem Tag des Experiments wurde ein Auftauenentsprechende Menge an Beutefisch, und schneiden Sie die Beutefische in Stücke mit einem Gewicht von etwa 1 bis 5 g. Wiegen die Menge der Beutefische in jedem der Tanks platziert werden, dann fallen die Beutefische Stücke in jedem Tank und ermöglichen die Raubfische ca. 1 Stunde zu füttern. Dann entfernen Sie alle Futterreste, lassen Sie das Essen an der Luft trocknen für ca. 20 min, und dann wiegen die Futterreste für jeden der Tanks. Notieren Sie die Menge der Nahrung in den Tank gelegt und die Menge der Futterreste für jeden der Tanks jeden Tag. HINWEIS: Für die repräsentative Experiment wurden Seeforelle so viel Nahrung zugeführt, wie sie während einer Fütterungsperiode jeden Tag 18 verbrauchen würde. Allerdings könnte die Raubfische auch auf festRationen 16,19 platziert werden. </li><li> Beenden das Experiment durch Verzicht gesamte verbleibende Raubfische in jedem der Tanks. , Um die Fische einschläfern, mischen 8 g Finquel mit 45 l Wasser in einem großen Kunststoffbehälter und legen Sie dann die Fische in dem Behälter mit der Finquel Lösung. Rekord ter Gewicht jedes der geopfert Fisch. Um zuverlässige Ergebnisse, muss der Versuch für mindestens 100 Tage, vorzugsweise für mindestens 130 Tage ausgeführt. Zeigen alle Fische aus einem Tank in einen Beutel, dann Doppeltasche, und lagern bei etwa -30 ° C bis zur Zeit der Verarbeitung. </li></ol> 2. Fisch Homogenisierung <ol><li> Wählen Sie eine Reihe von Raubfische und / oder Raubfischverbundwerkstoffe zum Auftauen. Lassen Sie die Verbundwerkstoffe teilweise auftauen. Jede Zusammensetzung kann 0,5 bis 1 Stunde erfordern, zu homogenisieren. </li><li> Mit den entsprechenden großen Mixer homogenisieren jedem der Verbundwerkstoffe. Für jede Verbund Platzieren einer Probe (50 bis 100 g) des Homogenats in ein gereinigtes, mit Aceton gespült, und gekennzeichnet Glas. Dann das Glas verschließen und speichern Sie das Glas bei etwa -30 ° C, bis zur Zeit der Verarbeitung. </li><li> Gebrauchte, um die Fische zu homogenisieren Ausrüstung zu waschen, und dann richtig mit destilliertem Wasser und Methanol, zwischen den Proben zu spülen. </li></ol> 3. Extraktion <ol><li> Wiegen 20,0 gdes aufgetauten homogenisiert Fischgewebe in einem 200-ml-Becherglas. </li><li> Fügen Sie ca. 40 g Natriumsulfat und gut mischen mit Spachtel. </li><li> Hinzufügen Ersatzspitze enthaltenden Lösung Analoga 30, 61, 161, und 166 Spikes bei einer Konzentration, die eine Endkonzentration von 20 ng / ml im Extrakt liefert. </li><li> Die Probe wird bei Raumtemperatur zu trocknen, während das Mischen alle 20 min. </li><li> Lassen Sie die Probe, um eine Konsistenz von trockenem Sand, an welcher Stelle die Probe bereit für Extraktion zu erreichen. </li><li> Einrichten der Soxhlet-Extraktionsvorrichtung mit einem 500-ml-Kolben mit Teflon Sieden Chips Soxhlet und Kondensator. </li><li> Fügen Sie die getrockneten Fisch Mischung auf eine Glas Fingerhut mit einem grobFrittenScheibe unten oder Papier Fingerhut. </li><li> Mit 150 ml 50% Hexan und 50% Dichlormethan in das Becherglas für die Probe verwendet und rührt während Kratzen an den Wänden des Becherglases mit einem Spatel. </li><li> Übertragen des Lösungsmittels auf die Oberseite der Soxhlet mit dem Kolben befestigt und ermöglichen es, um durch den Soxhlet undin den Kolben. </li><li> Wiederholen Sie ein zweites Mal mit 150 ml erneut. </li><li> Legen Sie die Soxhlet mit dem angebrachten Kolben auf das Heizelement und befestigen Sie den Kondensator. </li><li> Einschalten des Heizelements und das Lösungsmittel auf einem sanften Erhitzen, dann extrahieren für mindestens 16 h sicherstellen, dass Kaltwasser zu den Kondensatoren zugeführt. </li><li> Nachdem das Lösungsmittel zu kühlen, um zu sehen, ob einer der Probenflaschen Wasser enthalten. Für jene Kolben, enthaltend Wasser, Natriumsulfat hinzu und schwenken, bis das Wasser durch Natriumsulfat absorbiert. </li><li> Konzentrieren die Probe mit Hilfe eines Stickstoff Probenkonzentrator oder ein Kaderna Dänisch (KD) Glasaufbau mit einem heißen Wasserbad. </li><li> Die Probe wird auf ein Volumen von weniger als 2 ml verdampfen, und dann auf ein Endvolumen von 5 ml zu bringen, indem kleine Wasch Hexan, um die Probe aus der Glaswaren zu einem 5-ml-Meßkolben übertragen verwendet. </li><li> Transfer in ein 10-ml-Fläschchen und beschriften mit Probeninformationen. </li></ol><ol><li> Vorbereitung angesäuert Kieselgel durch Zugabe von 44 g konzentrierter Schwefelsäure in 100 g aktiviertes Kieselgel. </li><li> 10 g angesäuertem Silicagel in eine kleine Chromatographiesäule, die einen kleinen Pfropfen aus Glaswolle an der Unterseite. </li><li> 1 ml der Probenlösung auf die Säule nach Vorreinigung der Säule mit 10 ml Hexan. </li><li> Eluieren der Säule mit 20 ml Hexan und sammeln sich verjüngenden 20-ml Glasrohr. </li><li> Platzieren der Glasröhre an dem Stickstoffverdampfer (N-Vap) Vorrichtung unter einem Stickstoffstrom und in heißes Wasser eingetaucht. </li><li> Dampfe zu weniger als 1 ml, jedoch nicht bis zur Trockene. </li><li> Von der N-Vap Gerät zu entfernen und zu 1-ml-Messkolben mit kleinen Wasch Hexan. </li><li> Transfer in ein 1,8 ml Autosampler Fläschchen mit Probeninformationen gekennzeichnet. </li><li> Spike 4 ul internen Standard in das Fläschchen. Die Probe ist nun bereit für die Analyse. </li></ol> 5. Anallyse mittels Gaschromatographie - Massenspektrometrie unter Verwendung negative chemische Ionisation <ol><li> Verwenden Sie Standards, um das Gerät zu kalibrieren: Die Standards sind in Mischungen, bestehend aus Gruppen von Artgenossen gut getrennt. Mischungen bestehen aus 1-5 fast aller Kongenere in Arochlors 1016 1221 1232 1242 1248 1254 gefunden, und 1260 Mix 1 ist als Multi-Level-Kalibrierungsmischung verwendet und Systemlinearität wird durch die Vorbereitung zumindest bestätigt fünf Kalibrierungspegel in Konzentrationen zwischen 2 und 100 ng / ml. Mixe 2-5 werden als Single-Point-Kalibrierungen für jeden Aroma verwendet. </li><li> Massenspektrometriesystem im negativen Modus der chemischen Ionisation mit Wasserstoff als Trägergas (1 ml / min) und Methan als Reaktionsgas - die Chromatographie eingestellt. </li><li> Verwenden Sie einen Quarzglas-, Kapillar-Säule (60 m × 0,25 mm Innendurchmesser) mit DB-XLB bei 0,25 um-Schichtdicke für die Trennung beschichtet. Programm Ofen Temperatur von 60 bis 212 ° C bei 25 ° C / min, dann auf 260 ° C mit 1 ° C / min, und dann auf 280 ° C bei 4 ° C / min, mit einer endgültigen Haltezeit 4 min. Injektor und Transferleitung Temperaturen sollten bei 280 ° C eingestellt werden. Injizieren 1 bis 2 ul der Probe unter Verwendung des splitlosen Injektionsmodus. </li><li> Analysieren alle Standards und Proben von der internen Standardmethode mit 13 C-markierten Decachlorbiphenyl. </li><li> Führen Sie eine Überprüfung der anfänglichen Kalibrierung, indem Sie eine zweite Quelle-Standard und Aroclors 1242 und 1260, und vergleichen Sie dann die vorhergesagten Werte für die Aroclor Kongenere mit den beobachteten Mengen von diesem Prüfverfahren. </li><li> Sobald die erste Kalibrierungsprozedur erfolgreich durchgeführt wurde, vollständige Analyse aller Proben. Führen Sie eine Kalibrierung prüfen alle zehn Proben, mit einer der Kalibrierung Gemische aus der anfänglichen Kalibrierung. </li></ol> 6. Berechnung des Netto Trophic Transfereffizienz <ol><li> Berechnen Netto trophische Transfereffizienz, γ, die für jede Kombination of Tank und PCB Kongeneren mit der folgenden Gleichung: <img alt="Gleichung 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51496/51496eq1.jpg" /> , Wobei [PCB f] ist die durchschnittliche PCB Kongener Konzentration des Raubfische im Tank am Ende des Experiments, W f das Durchschnittsgewicht der Raubfische im Tank am Ende des Experiments [PCB i] Die durchschnittliche PCB Kongener Konzentration des Raubfische im Tank zu Beginn des Experiments, W i das Durchschnittsgewicht der Raubfische zu Beginn des Experiments, und die Menge an PCB Kongener eingenommen bezieht sich auf das Gewicht der PCB Kongeneren eingenommen wird, im Durchschnitt von jedem Seeforelle im Tank während des Experiments. </li><li> Berechnen Sie den Nenner in der obigen Gleichung durch Multiplikation der durchschnittlichen Konzentration der PCB-Kongeneren in den Beutefisch Verbundwerkstoffen durch die durchschnittliche Menge (Gewicht) der Beute Fische in den Tank dur gegessen pro Raubfischeing den gesamten Verlauf des Experiments. </li></ol>

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Um die genauesten Schätzung der γ muß der Experimentator in der Lage, genau zu verfolgen, sowohl die Menge der Nahrung in jedem der Tanks und der Menge des Futterreste in jedem der Behälter während des Verlaufs des Experiments platziert werden. Um dies zu erreichen, muss der Experimentator in der Lage, alle Futterreste aus den Tanks zu entfernen und das Gewicht genau zu bestimmen sein. Zusätzlich zur genauen Verfolgung der Nahrung tatsächlich durch die Raubfische verzehrt, kann eine genaue Abschätzung der γ auc...

Of all of the factors affecting the rate at which fish accumulate contaminants, the efficiency with which fish retain contaminants from the food that they eat is one of the most important1-3. Risk assessment models have been developed to predict future risks to both people and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination, and the reliability of these predictions critically depends on the accuracy of the estimates of the efficiency at which fish retain contaminants from their food4.
The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is transported through the gut wall is known as gross trophic transfer efficiency5. A portion of the quantity of the contaminant transported through the gut wall of the predator may eventually be lost through depuration and/or metabolic transformation. The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is retained by the predator, including any losses due to elimination and metabolic transformation, is known as net trophic transfer efficiency6.
Gross trophic transfer efficiency of organic contaminants to fish from their prey appears to vary with the contaminant&#8217;s chemical properties, including lipid affiliation as measured by the octanol-water partition coefficient, Kow3,7. According to an empirical relationship developed by Thomann3, gross trophic transfer efficiency is relatively high when log Kow is equal to a value between 5 and 6. Gross trophic transfer efficiency declines exponentially at a rate of 50% per unit of log Kow as log Kow increases from 6 to 10, according to the Thomann3 relationship.
Nevertheless, the gross and net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to fish from their prey do not appear to follow the Thomann3 relationship in most cases. Although the trophic transfer efficiencies of PCB congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from its food followed the relationship proposed by Thomann8, trophic transfer efficiencies of PCB congeners were either just weakly related or not related at all to log Kow for Atlantic salmon (Salmo salar)9, rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)10, coho salmon (Oncorhynchus kisutch)11, and northern pike (Esox lucius)11.
The overall goal of this study was to present a laboratory technique for estimating the net trophic transfer efficiencies of PCB congeners to a piscivorous fish from its prey. Lake trout (Salvelinus namaycush) was chosen as the piscivorous fish for our experiment because lake trout are relatively easy to maintain in laboratory tanks. Bloater (Coregonus hoyi) was selected as the prey fish to be fed to the lake trout because bloater is eaten by lake trout in its natural setting12. In addition, we determined whether the net trophic transfer efficiencies for lake trout estimated from our laboratory experiment followed the Thomann3 relationship. We also determined whether the degree of activity by the lake trout had a significant effect on net trophic transfer efficiency (&#947;) of the PCB congeners. Activity by lake trout in the Laurentian Great Lakes is believed to have recently increased because changes in the food webs have caused lake trout to allocate more energy toward searching for food13. Lake trout were forced to exercise in one set of tanks by subjecting these lake trout to relatively high flow rates, whereas the other lake trout were permitted to remain relatively inactive by subjecting them to relatively low flow rates. Finally, the specific details of our laboratory procedure that need to be carefully followed to ensure the highest degree of accuracy in the &#947; estimates and to make the laboratory results applicable to the field are discussed, as well as future directions for research building on our laboratory technique. Net trophic transfer efficiency can be estimated both in the laboratory and in the field, and advantages and disadvantages are associated with both approaches. Accuracy in the estimate of &#947; depends on the accuracy of the estimate of food consumption. The amount of food eaten by fish in the laboratory can be accurately determined when proper protocols are followed, whereas the amount of food eaten by fish in the field is typically estimated via bioenergetics modeling. Use of bioenergetics modeling to derive the amount of food eaten has the potential to introduce a substantial amount of uncertainty into the estimates of food consumption. Fish bioenergetics models have been shown to estimate food consumption with no detectable bias for the case of lake trout14,15, but considerable bias in bioenergetics model estimates of food consumption has been detected for the case of lake whitefish15,16. On the other hand, estimates of net trophic transfer efficiency estimated in the laboratory may not be applicable to the field due to a difference in feeding rates between the laboratory and the field17. Evidence from both the laboratory and the field suggest that feeding rate can influence &#947;14,17.
The methodology used in the present study for estimating &#947; in the laboratory is applicable to situations where the predator fish is fed prey fish, and the amount of prey fish eaten by the predator can be accurately tracked. To accomplish this, the experimenter must weigh all of the food before placement in the tank; and the experimenter must be able to remove all of the uneaten food from the tank, and then weigh the uneaten food. In addition, an adequate suite of mixers and blenders should be available to obtain a sufficient degree of homogenization of the samples of both predator and prey fish. Finally, the gas chromatography &#8211; mass spectrometry instrumentation used to determine the PCB congener concentrations must be capable of detecting and quantifying individual PCB congeners at relatively low concentrations.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="632">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Name&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">870-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-430-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">2,380-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-630-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="68">
			<td height="68" style="height:68px;width:259px;">Tricaine methanesulfonate (Finquel)</td>
			<td style="width:87px;">Argent Chemical Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">C-FINQ-UE-100G</td>
			<td style="width:167px;">Eugenol could also be used as an anesthetic.</td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Ashland chef knife</td>
			<td style="width:87px;">Chicago Cutlery</td>
			<td style="width:119px;">SKU 1106336</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Cutting board</td>
			<td style="width:87px;">Williams-Sonoma</td>
			<td style="width:119px;">3863586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Hobart verical mixer (40 quart)</td>
			<td style="width:87px;">Hobart Corporation</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">1.9-L food processor</td>
			<td style="width:87px;">Robot Coupe, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">RSI 2Y1&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Polyethylene bags (various sizes)</td>
			<td style="width:87px;">Arcan Inc.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">I-Chem jars</td>
			<td style="width:87px;">I-Chem</td>
			<td style="width:119px;">220-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Top-load electronic balance</td>
			<td style="width:87px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:119px;">Mettler PM 6000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Sodium sulfate, anhydrous - granular</td>
			<td style="width:87px;">EMD</td>
			<td style="width:119px;">SX0760E-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Glass extraction thimbles (45 mm x 130 mm)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">LG-7070-114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Teflon boiling chips</td>
			<td style="width:87px;">Chemware</td>
			<td style="width:119px;">919120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Rapid Vap nitrogen sample concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Labconco</td>
			<td style="width:119px;">7910000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">N-Vap nitrogen concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Organomation</td>
			<td style="width:119px;">112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Soxhlet extraction glassware (500 mL)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">&#160;LG-6900-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Hexane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 211-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Dichloromethane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 300-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Silica gel</td>
			<td style="width:87px;">BDH</td>
			<td style="width:119px;">Cat. BDH9004-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Labl Line 5000 mult-unit extraction heater</td>
			<td style="width:87px;">Lab Line Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Agilent 5973 GC/MS with chemical ionization</td>
			<td style="width:87px;">Agilent</td>
			<td style="width:119px;">5973N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:259px;">Internal standard solution&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Cambridge Isotope Laboratories</td>
			<td style="width:119px;">EC-1410-1.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">PCB congener calibration standards</td>
			<td style="width:87px;">Accustandard</td>
			<td style="width:119px;">C-CSQ-SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">DB-XLB column (60m x 0.25mm, 0.25 micron)</td>
			<td style="width:87px;">Agilent/ J&#38;W</td>
			<td style="width:119px;">122-1262</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

laboratory estimation of net trophic transfer efficiencies of pcb congeners to lake trout (salvelinus namaycush) from its prey

Eine Technik zur Schätzung der Netto-Labor trophische Transfereffizienz (γ) von polychlorierten Biphenylen (PCB) Kongenere piscivorous Fisch von Beute wird hier beschrieben. Während eines 135-Tage-Laborexperiment, wir gefüttert Bückling (Coregonus hoyi), die in den Lake Michigan zu Seeforelle (Salvelinus namaycush) gefangen worden war in acht Labortanks gehalten. Bückling ist eine natürliche Beute für Seeforellen. In vier der Tanks wurde eine relativ hohe Strömungsgeschwindigkeit verwendet werden, um relativ hohe Aktivität von der Seeforelle zu gewährleisten, wohingegen ein niedriger Flussrate wurde in den anderen vier Tanks verwendet, so dass für niedrige Seeforelle Aktivität. An einem Tank-Nebentank Grundlage wurde die Menge der Nahrung durch die Forelle an jedem Tag des Experiments aufgezeichnet gegessen. Jede Forelle wurde zu Beginn und am Ende des Versuchs gewogen. Vier bis neun Forelle aus jeder der acht Tanks wurden zu Beginn des Experiments getötet und alle in jedem der Tanks verbleibenden 10 Seforelle waren euthanized am Ende des Experiments. Wir bestimmten Konzentrationen der PCB 75 in der Forelle zu Beginn des Experiments in der Forelle am Ende des Experiments und bloaters See Forellen während des Versuchs zugeführt. Basierend auf diesen Messungen wurde γ für jede PCB 75 in jeder der acht Tanks berechnet. Mittlere γ wurde für jeden der 75 PCB für aktive und inaktive Seeforelle berechnet. Da das Experiment wurde in acht Tanks repliziert, der Standardfehler zu bedeuten γ geschätzt werden konnte. Ergebnisse aus dieser Art von Experiment sind bei der Risikobewertungsmodelle für zukünftige Gefahr für Mensch und Tier Verzehr von kontaminierten Fischen unter verschiedenen Szenarien von einer Kontamination der Umwelt vorherzusagen.

Seeforelle zeigte eine erhebliche Menge an Wachstum während des Experiments, als die ersten Seeforelle bedeuten Gewichte reichten von 694 bis 907 g, während die letzten Seeforelle bedeuten Gewichte reichten von 853 bis 1.566 g (Tabelle 1). Die durchschnittliche Menge der Nahrung durch eine Seeforelle im Laufe der 135-Tage-Experiment verbraucht reichten von 641 bis 2.649 g. Bedeuten, PCB-Konzentrationen in der Kongeners Seeforelle erhöht während des Experiments, als mittlere PCB-Konzentrationen Konge...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

Eine Technik für Labor-Schätzung des Netto trophische Transfereffizienz von polychlorierten Biphenylen (PCB) Kongenere fischfressenden Fisch aus ihrer Beute wird vorgestellt. Anwendbarkeit der Laborergebnisse auf dem Gebiet maximieren, sollte die fischfressenden Fische Beutefische, die in der Regel im Feld gegessen werden zugeführt werden.

Labor Schätzung der Netto Trophic Transfereffizienz von PCB auf Seeforelle (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) Von seiner Beute

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

laboratory-estimation-net-trophic-transfer-efficiencies-pcb-congeners

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Environment

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

10.9K Aufrufe.  U. S. Geological Survey.  Eine Technik für Labor-Schätzung des Netto trophische Transfereffizienz von polychlorierten Biphenylen (PCB) Kongenere fischfressenden Fisch aus ihrer Beute wird vorgestellt. Anwendbarkeit der Laborergebnisse auf dem Gebiet maximieren, sollte die fischfressenden Fische Beutefische, die in der Regel im Feld gegessen werden zugeführt werden. 