This work was funded, in part, by the Great Lakes Fishery Commission and the Annis Water Resources Institute. Use of trade, product, or firm names does not imply endorsement by the U. S. Government. This article is Contribution 1867 of the U. S. Geological Survey Great Lakes Science Center.

1 Laboratório de Experiência <ol><li> Obter o peixe presa para ser alimentado para o peixe predador durante a experiência. De preferência, estes peixe presa deve ser observado no campo, congelado e armazenado a cerca de -30 ° C. Considere operações de pesca comercial como uma fonte potencial para os peixes presas. </li><li> Introduzir a peixes predadores para os tanques de laboratório a ser utilizado para a experiência. Até 15 predador peixe foram introduzidos em cada um dos tanques 870-L, e até 30 peixes predadores foram introduzidos em cada um dos tanques de 2380-L, em estudos anteriores 16,18. </li><li> Aclimatar os peixes predadores de uma dieta do peixe presa seleccionado. Uma vez aclimatados, o peixe predador deve permanecer nesta dieta por 1-3 meses antes do início do experimento. </li><li> Separe amostras de peixes presa por seleção aleatória de 10 a 20 amostras compostas a partir do lote de peixe presa. Número de peixe presa em uma amostra de compósito pode variar entre 3 e 100, dependendo do tamanho da presapeixes. Cada amostra deve ser composto de embalagem dupla, congelado e armazenado a cerca de -30 ° C. </li><li> Inicia-se a experiência com o sacrifício de 30 a 50% dos peixes em cada um dos tanques. <ol><li> Para sacrificar o peixe, misture 8 g de Finquel com 45 L de água em um grande recipiente de plástico e, em seguida, coloque o peixe no recipiente com a solução Finquel. </li><li> Depois de sacrificados para colocar todos os peixes de um tanque sacrificados em um saco, bolsa, em seguida, e armazenar a cerca de -30 ° C até à altura de processamento. </li><li> Pesar cada um dos restantes peixes em cada um dos tanques, e registra os pesos; um anestésico provavelmente serão necessárias para realizar a pesagem. </li><li> Para anestesiar o peixe, misture 4,6 g de Finquel com 45 L de água em um recipiente de plástico grande, e em seguida, coloque o peixe no recipiente com a solução Finquel. </li><li> Aguarde alguns minutos para que o anestésico para entrar em vigor antes da pesagem do peixe. </li></ol></li><li> Em cada dia da experiência, descongelar umaquantidade adequada de peixe presa, e cortar o peixe presa em pedaços pesando aproximadamente 1-5 g. Pesa-se a quantidade de peixe presa para ser colocado em cada um dos tanques, em seguida, deixar cair os pedaços de peixe presa em cada um dos tanques e permitir que o peixe predador cerca de 1 hora para se alimentar. Em seguida, retire todos os restos de comida, deixe a comida secar ao ar por cerca de 20 min, e em seguida, pesar a restos de comida para cada um dos tanques. Registar a quantidade de comida colocada no tanque e da quantidade de restos de comida para cada um dos tanques de cada dia. NOTA: Para o experimento representativo, truta do lago foram alimentados com comida tanto quanto eles iriam consumir durante um período de alimentação a cada dia 18. No entanto, o peixe predador pode também ser colocado em rações fixos 16,19. </li><li> Terminar a experiência sacrificando todos os peixes predadores restante em cada um dos tanques. Para sacrificar o peixe, misture 8 g de Finquel com 45 L de água em um grande recipiente de plástico e, em seguida, coloque o peixe no recipiente com a solução Finquel. Grave tele peso de cada um dos peixes sacrificados. Para obter resultados confiáveis, o experimento deve ser executado por pelo menos 100 dias, de preferência, pelo menos, 130 dias. Coloque todos os peixes de um tanque em um saco, então bag duplo, e armazenar a cerca de -30 ° C até o momento do processamento. </li></ol> Homogeneização 2. Peixe <ol><li> Selecione um conjunto de peixes predadores e / ou compósitos de peixe presa para descongelamento. Permitir que os compósitos para descongelar parcialmente. Cada composto pode exigir de 0,5 a 1 hora para homogeneizar. </li><li> Usando os liquidificadores de tamanho adequado, homogeneizar cada um dos compostos. Para cada composto, colocar uma amostra (de 50 a 100 g) do homogeneizado em um frasco limpo, acetona-lavado, e etiquetado. Em seguida, o frasco de tampa e armazenar o frasco a cerca de -30 ° C até o tempo de processamento. </li><li> Lave todos os equipamentos utilizados para homogeneizar o peixe, e depois enxaguar bem com água destilada e metanol, entre as amostras. </li></ol> 3. Extraction <ol><li> Pesar 20,0 gdescongeladas de tecido homogeneizado peixe num copo de 200 ml. </li><li> Adicionar cerca de 40 g de sulfato de sódio e misturar bem com uma espátula. </li><li> Adicionar solução de pico de substituição contendo os congéneres 30, 61, 161, e 166 a uma concentração pico que dá uma concentração final de 20 ng / ml no extracto. </li><li> Deixar a amostra secar à temperatura ambiente, enquanto se mistura a cada 20 min. </li><li> Deixar a amostra para alcançar uma consistência de areia seca, altura em que a amostra está pronta para a extracção. </li><li> Configure o aparelho de extração Soxhlet com um frasco de 500 ml contendo chips de Teflon fervura, Soxhlet, e do condensador. </li><li> Adicione a mistura de peixe seco para um dedal de vidro com um disco de fundo fritted-grossa ou dedal papel. </li><li> Adicionar 150 ml de 50% de hexano e 50% de diclorometano para o copo utilizado para a amostra e agitar durante a raspagem das paredes do balão com uma espátula. </li><li> Transferir o solvente para o topo da Soxhlet com o balão ligado e permitir que o ciclo através de Soxhlet e empara o balão. </li><li> Repetir uma segunda vez com 150 ml mais uma vez. </li><li> Coloque o Soxhlet com o balão anexado para o elemento de aquecimento e anexar o condensador. </li><li> Ligar o elemento de aquecimento e trazer o solvente a uma fervura suave, em seguida o extracto durante um período mínimo de 16 horas para garantir que a água fria é fornecida para os condensadores. </li><li> Depois de se permitir que o solvente de cool, verifica para ver se qualquer um dos frascos das amostras conter água. Para os frascos com água, adicionar sulfato de sódio e homogeneizar até que a água é absorvida pelo sulfato de sódio. </li><li> Concentra-se a amostra usando um concentrador de amostra de azoto ou uma configuração de artigos de vidro Kaderna dinamarquesa (KD) com um banho de água quente. </li><li> Deixar a amostra evaporar até um volume de menos de 2 ml, e, em seguida, levar a um volume final de 5 ml, utilizando pequenas lavagens de hexano para transferir a amostra do material de vidro utilizado para um balão volumétrico de 5 ml. </li><li> Transfira para um frasco de 10 ml e etiqueta com informações de amostra. </li></ol><ol><li> Prepare gel de sílica acidificado pela adição de 44 g de ácido sulfúrico concentrado e 100 g de gel de sílica activado. </li><li> Adicionar 10 g de gel de sílica acidificado numa pequena coluna de cromatografia contendo um pequeno tampão de lã de vidro no fundo. </li><li> Adicionar 1 ml de extracto da amostra à coluna após a pré-limpeza da coluna com 10 ml de hexano. </li><li> Eluir a coluna com 20 ml de hexano e recolha afilada em tubo de vidro de 20 ml. </li><li> Colocar o tubo de vidro sobre o aparelho de evaporador de azoto (N-Vap) sob uma corrente de azoto e imerso em água quente. </li><li> Evapora-se a menos de 1 ml mas não até à secura. </li><li> Retire do aparelho N-Vap e transferir para um frasco volumétrico de 1 ml com pequenas lavagens de hexano. </li><li> Transferir para um frasco de autoamostragem de 1,8 ml marcado com a informação da amostra. </li><li> Pico de 4 mL de padrão interno para dentro do frasco. A amostra está pronto para análise. </li></ol> 5. Analysis por Cromatografia Gasosa - Espectrometria de Massa Usando Negativa de Ionização Química <ol><li> Use padrões para calibrar o instrumento: As normas estão disponíveis em misturas que consistem em grupos de congêneres bem separados. Misturas 1-5 consistem em quase todos os compostos afins encontrados em Arochlors 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254, 1260 e uma mistura é utilizada como uma mistura de calibração multi-nível, e a linearidade do sistema é confirmada através da preparação de pelo menos cinco níveis de calibragem em concentrações entre 2 e 100 ng / ml. Mixes 2-5 são usados ​​como calibrações de um único ponto para cada congênere. </li><li> Defina-se a cromatografia em - sistema de espectrometria de massa no modo de ionização química negativa com hidrogénio como gás de arraste (1 ml / min) e metano como gás reagente. </li><li> Use uma sílica fundida, a coluna capilar (60 m x 0,25 milímetros de diâmetro interno) revestida com DB-XLB a espessura da película de 0,25 mm para a separação. Programa de temperatura do forno 60-212 ° C a 25 ° C / min, em seguida a 260 ° C a 1 ° C / min, e em seguida a 280 ° C a 4 ° C / min, com um tempo de retenção final de 4 min. Injector e linha de transferência temperaturas deve ser fixado em 280 ° C. Injectar 1 a 2 mL da amostra utilizando o modo de splitless injecção. </li><li> Analisar todos os padrões e as amostras pelo método de padrão interno usando 13 marcado com C decachlorobiphenyl. </li><li> Execute uma verificação da calibração inicial, executando um segundo padrão de fonte e Aroclors 1242 e 1260, e depois comparar os valores previstos para os congéneres Aroclor com os valores observados deste procedimento de verificação. </li><li> Uma vez que o procedimento de calibração inicial foi realizada com sucesso, uma análise completa de todas as amostras. Execute uma calibração verificar a cada dez amostras, utilizando qualquer uma das misturas de calibração a partir da calibração inicial. </li></ol> 6 Cálculo da Net Trófico Transferência Eficiência <ol><li> Calcular a eficiência da transferência líquida trófico, γ, para cada combinação of tanque e PCB congênere com a seguinte equação: <img alt="Equação 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51496/51496eq1.jpg" /> , Onde [PCB f] é a concentração média de PCB congénere do peixe predador no tanque, no final da experiência, W f é o peso médio dos peixes predadores no tanque, no final da experiência, [PCB i] é a concentração média de PCB congénere do peixe predador no reservatório no inicio da experiência, W i é o peso médio dos peixes predadores no início da experiência, e a quantidade de PCB congénere ingerido refere-se ao peso do congéneres de PCB ingerida, em média, por cada truta do lago no tanque durante o curso do experimento. </li><li> Calcular o denominador na equação acima, multiplicando a concentração média dos congéneres de PCB nos compósitos de peixe presa pela quantidade média (peso) do peixe presa comido por peixes predadores no tanque durcontendo todo o curso da experiência. </li></ol>

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	<li>Madenjian, C. P., Carpenter, S. R., Rand, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Why+are+the+PCB+concentrations+of+salmonine+individuals+from+the+same+lake+so+highly+variable?.">Why are the PCB concentrations of salmonine individuals from the same lake so highly variable?.</a> Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 51 (4), 800-807 (1994).</li><li>Madenjian, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Net+trophic+transfer+efficiency+of+PCBs+to+Lake+Michigan+coho+salmon+from+their+prey.">Net trophic transfer efficiency of PCBs to Lake Michigan coho salmon from their prey.</a> Environmental Science and Technology. 32 (20), 3063-3067 (1998).</li><li>Thomann, R. 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Para as estimativas mais precisas de γ, o experimentador deve ser capaz de controlar com precisão a quantidade de ambos os alimentos colocados em cada um dos tanques e a quantidade de restos de comida em cada um dos tanques durante o curso da experiência. Para realizar isto, o experimentador deve ser capaz de remover todo o alimento não consumido a partir dos tanques e determinar com precisão o seu peso. Além controle preciso do alimento comido efectivamente pelos peixes predadores, estimativa exacta de γ também...

Of all of the factors affecting the rate at which fish accumulate contaminants, the efficiency with which fish retain contaminants from the food that they eat is one of the most important1-3. Risk assessment models have been developed to predict future risks to both people and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination, and the reliability of these predictions critically depends on the accuracy of the estimates of the efficiency at which fish retain contaminants from their food4.
The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is transported through the gut wall is known as gross trophic transfer efficiency5. A portion of the quantity of the contaminant transported through the gut wall of the predator may eventually be lost through depuration and/or metabolic transformation. The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is retained by the predator, including any losses due to elimination and metabolic transformation, is known as net trophic transfer efficiency6.
Gross trophic transfer efficiency of organic contaminants to fish from their prey appears to vary with the contaminant&#8217;s chemical properties, including lipid affiliation as measured by the octanol-water partition coefficient, Kow3,7. According to an empirical relationship developed by Thomann3, gross trophic transfer efficiency is relatively high when log Kow is equal to a value between 5 and 6. Gross trophic transfer efficiency declines exponentially at a rate of 50% per unit of log Kow as log Kow increases from 6 to 10, according to the Thomann3 relationship.
Nevertheless, the gross and net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to fish from their prey do not appear to follow the Thomann3 relationship in most cases. Although the trophic transfer efficiencies of PCB congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from its food followed the relationship proposed by Thomann8, trophic transfer efficiencies of PCB congeners were either just weakly related or not related at all to log Kow for Atlantic salmon (Salmo salar)9, rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)10, coho salmon (Oncorhynchus kisutch)11, and northern pike (Esox lucius)11.
The overall goal of this study was to present a laboratory technique for estimating the net trophic transfer efficiencies of PCB congeners to a piscivorous fish from its prey. Lake trout (Salvelinus namaycush) was chosen as the piscivorous fish for our experiment because lake trout are relatively easy to maintain in laboratory tanks. Bloater (Coregonus hoyi) was selected as the prey fish to be fed to the lake trout because bloater is eaten by lake trout in its natural setting12. In addition, we determined whether the net trophic transfer efficiencies for lake trout estimated from our laboratory experiment followed the Thomann3 relationship. We also determined whether the degree of activity by the lake trout had a significant effect on net trophic transfer efficiency (&#947;) of the PCB congeners. Activity by lake trout in the Laurentian Great Lakes is believed to have recently increased because changes in the food webs have caused lake trout to allocate more energy toward searching for food13. Lake trout were forced to exercise in one set of tanks by subjecting these lake trout to relatively high flow rates, whereas the other lake trout were permitted to remain relatively inactive by subjecting them to relatively low flow rates. Finally, the specific details of our laboratory procedure that need to be carefully followed to ensure the highest degree of accuracy in the &#947; estimates and to make the laboratory results applicable to the field are discussed, as well as future directions for research building on our laboratory technique. Net trophic transfer efficiency can be estimated both in the laboratory and in the field, and advantages and disadvantages are associated with both approaches. Accuracy in the estimate of &#947; depends on the accuracy of the estimate of food consumption. The amount of food eaten by fish in the laboratory can be accurately determined when proper protocols are followed, whereas the amount of food eaten by fish in the field is typically estimated via bioenergetics modeling. Use of bioenergetics modeling to derive the amount of food eaten has the potential to introduce a substantial amount of uncertainty into the estimates of food consumption. Fish bioenergetics models have been shown to estimate food consumption with no detectable bias for the case of lake trout14,15, but considerable bias in bioenergetics model estimates of food consumption has been detected for the case of lake whitefish15,16. On the other hand, estimates of net trophic transfer efficiency estimated in the laboratory may not be applicable to the field due to a difference in feeding rates between the laboratory and the field17. Evidence from both the laboratory and the field suggest that feeding rate can influence &#947;14,17.
The methodology used in the present study for estimating &#947; in the laboratory is applicable to situations where the predator fish is fed prey fish, and the amount of prey fish eaten by the predator can be accurately tracked. To accomplish this, the experimenter must weigh all of the food before placement in the tank; and the experimenter must be able to remove all of the uneaten food from the tank, and then weigh the uneaten food. In addition, an adequate suite of mixers and blenders should be available to obtain a sufficient degree of homogenization of the samples of both predator and prey fish. Finally, the gas chromatography &#8211; mass spectrometry instrumentation used to determine the PCB congener concentrations must be capable of detecting and quantifying individual PCB congeners at relatively low concentrations.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="632">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Name&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">870-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-430-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">2,380-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-630-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="68">
			<td height="68" style="height:68px;width:259px;">Tricaine methanesulfonate (Finquel)</td>
			<td style="width:87px;">Argent Chemical Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">C-FINQ-UE-100G</td>
			<td style="width:167px;">Eugenol could also be used as an anesthetic.</td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Ashland chef knife</td>
			<td style="width:87px;">Chicago Cutlery</td>
			<td style="width:119px;">SKU 1106336</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Cutting board</td>
			<td style="width:87px;">Williams-Sonoma</td>
			<td style="width:119px;">3863586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Hobart verical mixer (40 quart)</td>
			<td style="width:87px;">Hobart Corporation</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">1.9-L food processor</td>
			<td style="width:87px;">Robot Coupe, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">RSI 2Y1&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Polyethylene bags (various sizes)</td>
			<td style="width:87px;">Arcan Inc.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">I-Chem jars</td>
			<td style="width:87px;">I-Chem</td>
			<td style="width:119px;">220-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Top-load electronic balance</td>
			<td style="width:87px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:119px;">Mettler PM 6000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Sodium sulfate, anhydrous - granular</td>
			<td style="width:87px;">EMD</td>
			<td style="width:119px;">SX0760E-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Glass extraction thimbles (45 mm x 130 mm)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">LG-7070-114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Teflon boiling chips</td>
			<td style="width:87px;">Chemware</td>
			<td style="width:119px;">919120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Rapid Vap nitrogen sample concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Labconco</td>
			<td style="width:119px;">7910000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">N-Vap nitrogen concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Organomation</td>
			<td style="width:119px;">112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Soxhlet extraction glassware (500 mL)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">&#160;LG-6900-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Hexane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 211-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Dichloromethane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 300-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Silica gel</td>
			<td style="width:87px;">BDH</td>
			<td style="width:119px;">Cat. BDH9004-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Labl Line 5000 mult-unit extraction heater</td>
			<td style="width:87px;">Lab Line Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Agilent 5973 GC/MS with chemical ionization</td>
			<td style="width:87px;">Agilent</td>
			<td style="width:119px;">5973N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:259px;">Internal standard solution&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Cambridge Isotope Laboratories</td>
			<td style="width:119px;">EC-1410-1.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">PCB congener calibration standards</td>
			<td style="width:87px;">Accustandard</td>
			<td style="width:119px;">C-CSQ-SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">DB-XLB column (60m x 0.25mm, 0.25 micron)</td>
			<td style="width:87px;">Agilent/ J&#38;W</td>
			<td style="width:119px;">122-1262</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

laboratory estimation of net trophic transfer efficiencies of pcb congeners to lake trout (salvelinus namaycush) from its prey

Uma técnica para estimativa de laboratório da rede trófica eficiência de transferência (γ) de bifenil policlorados (PCB) congêneres de peixes piscívoros de suas presas é aqui descrito. Durante um experimento de laboratório de 135 dias, nos alimentamos arenque defumado (Coregonus hoyi), que tinha sido capturado no lago Michigan para a truta do lago (Salvelinus namaycush) mantidos em oito tanques de laboratório. Bloater é uma presa natural para a truta do lago. Em quatro dos tanques, uma taxa de fluxo relativamente elevada foi usado para assegurar a actividade relativamente elevada da truta do lago, ao passo que uma baixa taxa de fluxo foi utilizado nas outras quatro tanques, permitindo a baixa actividade truta do lago. Em uma base de tanque-a-tanque, a quantidade de alimentos ingeridos pela truta do lago, em cada dia do experimento foi gravado. Cada truta do lago foi pesado no início e no fim da experiência. De quatro a nove truta do lago de cada um dos oito tanques foram sacrificados no início da experiência, e todas as 10 a truta do lago restante em cada um dos tanques foram euthanzado no final da experiência. Foram determinadas as concentrações de 75 congéneres de PCB na truta do lago, no início da experiência, na truta do lago, no final da experiência, e em bloaters alimentada à truta do lago, durante a experiência. Com base nestas medições, γ foi calculada para cada um dos 75 congéneres de PCB em cada um dos oito tanques. A média de γ foi calculada para cada um dos 75 congéneres de PCB, tanto para ativos e inativos truta do lago. Como o experimento foi repetido em oito tanques, o erro padrão sobre significar γ pode ser estimada. Os resultados deste tipo de experiência são úteis em modelos de avaliação de risco para prever risco futuro para os seres humanos e os animais selvagens que comem peixes contaminados em vários cenários de contaminação ambiental.

Truta do lago mostrou uma quantidade substancial de crescimento durante o experimento, como a truta do lago iniciais significa pesos variaram 694-907 g, enquanto as trutas finais lago significa peso variou de 853 a 1.566 g (Tabela 1). A quantidade média de comida consumida por uma truta do lago, durante o decurso da experiência de 135 dias variou de 641 a 2.649 g. As concentrações de PCB de congéneres significa na truta do lago aumentado durante o ensaio, em termos de concentração média de cong?...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

Uma técnica para estimativa de laboratório da rede trófica eficiência de transferência de bifenil policlorados (PCB) congêneres de peixes piscívoros de suas presas é apresentado. Para maximizar a aplicabilidade dos resultados do laboratório para o campo, o piscívoro deve ser alimentado presa peixe que são tipicamente consumidos no campo.

Estimativa Laboratório de Líquido tróficas eficiências de transferência de PCB para Lake Trout (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) De sua rapina

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

10.9K visualizações.  U. S. Geological Survey.  Uma técnica para estimativa de laboratório da rede trófica eficiência de transferência de bifenil policlorados (PCB) congêneres de peixes piscívoros de suas presas é apresentado. Para maximizar a aplicabilidade dos resultados do laboratório para o campo, o piscívoro deve ser alimentado presa peixe que são tipicamente consumidos no campo. 