This work was funded, in part, by the Great Lakes Fishery Commission and the Annis Water Resources Institute. Use of trade, product, or firm names does not imply endorsement by the U. S. Government. This article is Contribution 1867 of the U. S. Geological Survey Great Lakes Science Center.

1 Laboratoire Expérience <ol><li> Obtenir le poisson proie à introduire dans les poissons des prédateurs pendant l&#39;expérience. De préférence, ces poissons proies doivent être capturés dans le domaine, congelés et conservés à -30 ° C environ. Envisager des opérations de pêche commerciale comme une source potentielle de poissons proies. </li><li> Présentez le poisson prédateur dans les réservoirs de laboratoire à utiliser pour l&#39;expérience. Jusqu&#39;à 15 poissons prédateurs ont été introduits dans chacune des cuves de 870 L, et jusqu&#39;à 30 poissons prédateurs ont été introduits dans chacun des réservoirs 2380-L dans des études antérieures 16,18. </li><li> Acclimater les poissons prédateurs à un régime alimentaire du poisson proie choisie. Une fois acclimatés, le poisson prédateur doit rester sur ce régime pendant 1-3 mois avant de commencer l&#39;expérience. </li><li> Mettez de côté les échantillons de poissons proies en choisissant au hasard 10 à 20 échantillons composites du lot de poissons proies. Nombre de poissons proies dans un échantillon composite peut varier de 3 à 100, en fonction de la taille de la proiepoissons. Chaque échantillon composite doit être double emballage, congelés et stockés à -30 ° C environ. </li><li> Initier l&#39;expérience en sacrifiant 30 à 50% des poissons dans chacun des réservoirs. <ol><li> Pour euthanasier les poissons, mélanger 8 g de Finquel avec 45 L d&#39;eau dans un grand récipient en plastique, puis placez le poisson dans le récipient avec la solution Finquel. </li><li> Une fois euthanasiés, placer tous les poissons sacrifiés d&#39;un réservoir dans un sac, puis double sac, et conserver à -30 ° C jusqu&#39;au moment de la transformation. </li><li> Peser chacun des poissons restant dans chacun des réservoirs, et noter les poids; un anesthésique sera probablement nécessaire de procéder à la pesée. </li><li> Pour anesthésier le poisson, mélanger 4,6 g de Finquel avec 45 L d&#39;eau dans un grand récipient en plastique, puis placez le poisson dans le récipient avec la solution Finquel. </li><li> Attendez quelques minutes pour l&#39;anesthésie pour prendre effet avant la pesée. </li></ol></li><li> Chaque jour de l&#39;expérience, décongeler unquantité appropriée de poissons proies, et couper le poisson en morceaux proie pesant environ 1 à 5 g. Peser la quantité de poissons proies pour être placé dans chacune des cuves, puis déposez les morceaux de poisson de proie dans chaque cuve et laisser le poisson prédateur environ 1 heure pour se nourrir. Ensuite, retirer tous les restes de nourriture, de permettre la nourriture à l&#39;air sec pendant environ 20 min, puis peser la nourriture non consommée pour chacun des réservoirs. Enregistrer la quantité de nourriture placée dans le réservoir et la quantité de la nourriture non consommée pour chacun des réservoirs chaque jour. REMARQUE: Pour l&#39;expérience représentative, la truite de lac ont été nourris autant de nourriture qu&#39;ils consomment au cours d&#39;une période d&#39;alimentation chaque jour 18. Cependant, le poisson prédateur pourrait également être placé sur des rations fixes 16,19. </li><li> Mettre fin à l&#39;expérience en sacrifiant tous les poissons prédateurs en restant dans chacun des réservoirs. Pour euthanasier les poissons, mélanger 8 g de Finquel avec 45 L d&#39;eau dans un grand récipient en plastique, puis placez le poisson dans le récipient avec la solution Finquel. Enregistrez til poids de chacun des poissons sacrifié. Pour des résultats fiables, l&#39;expérience doit fonctionner pendant au moins 100 jours, de préférence pendant au moins 130 jours. Placez tous les poissons d&#39;un réservoir dans un sac, puis double sac, et conserver à -30 ° C jusqu&#39;au moment de la transformation. </li></ol> 2. poisson homogénéisation <ol><li> Sélectionnez un ensemble de poissons prédateurs et / ou composites de poissons proies pour la décongélation. Autoriser les composites à décongeler partiellement. Chaque composite peut exiger de 0,5 à 1 heure pour homogénéiser. </li><li> En utilisant les mélangeurs appropriés taille, homogénéiser chacun des composites. Pour chaque composé, placer un échantillon (de 50 à 100 g) de l&#39;homogénat dans un récipient nettoyé, rincé à l&#39;acétone, et marqué. Puis coiffer le récipient et stocker le pot à environ -30 ° C jusqu&#39;à ce que le temps de traitement. </li><li> Laver tous les équipements utilisés pour homogénéiser le poisson, puis rincer correctement avec de l&#39;eau distillée et de méthanol, entre les échantillons. </li></ol> 3 Extraction <ol><li> Peser 20,0 gde décongelé les tissus de poissons homogénéisé dans un bêcher de 200 ml. </li><li> Ajouter environ 40 g de sulfate de sodium et mélanger avec une spatule. </li><li> Ajouter la solution de pointe de substitution contenant des congénères 30, 61, 161, 166 et pointes à une concentration qui donne une concentration finale de 20 ng / ml dans l&#39;extrait. </li><li> Permettre à l&#39;échantillon à sécher à la température ambiante tout en mélangeant toutes les 20 minutes. </li><li> Laisser l&#39;échantillon pour atteindre une consistance de sable sec, après quoi l&#39;échantillon est prêt pour l&#39;extraction. </li><li> Mettre en place l&#39;appareil d&#39;extraction Soxhlet avec un ballon de 500 ml contenant des copeaux de téflon d&#39;ébullition, Soxhlet, et du condenseur. </li><li> Ajouter le mélange de poisson séché à une cosse de verre avec un disque de fond ou fritte à gros papier dé à coudre. </li><li> Ajouter 150 ml de 50% d&#39;hexane et 50% de dichlorométhane dans le bêcher utilisé pour mélanger l&#39;échantillon et tout en raclant les parois du bêcher avec une spatule. </li><li> Transférer le solvant au début de la Soxhlet avec le ballon attaché et lui permettre de défiler dans le Soxhlet etdans le ballon. </li><li> Répétez une seconde fois avec 150 ml. </li><li> Placer le ballon de Soxhlet avec du joint sur l&#39;élément de chauffage et de fixer le condenseur. </li><li> Mettez l&#39;élément chauffant et amener le solvant à ébullition douce, puis extraire pour un minimum de 16 heures de s&#39;assurer que l&#39;eau froide est fournie dans les condenseurs. </li><li> Après avoir laissé le solvant refroidir, vérifier pour voir si l&#39;un des flacons d&#39;échantillons contiennent de l&#39;eau. Dans le cas des flacons contenant de l&#39;eau, ajouter du sulfate de sodium et mélanger jusqu&#39;à ce que l&#39;eau est absorbée par le sulfate de sodium. </li><li> Concentrer l&#39;échantillon à l&#39;aide d&#39;un échantillon de concentration d&#39;azote ou un Kaderna danois (KD) installation de la verrerie avec un bain d&#39;eau chaude. </li><li> Laisser l&#39;échantillon à évaporer à un volume inférieur à 2 ml, puis porter à un volume final de 5 ml à l&#39;aide de petits lavages d&#39;hexane pour transférer l&#39;échantillon à partir de la verrerie utilisée dans une fiole jaugée de 5 mL. </li><li> Transférer dans un flacon de 10 ml et l&#39;étiquette avec l&#39;information d&#39;échantillon. </li></ol><ol><li> Préparation du gel de silice acidifiée par addition de 44 g d&#39;acide sulfurique concentré à 100 g de gel de silice activé. </li><li> Ajouter 10 g de gel de silice acidifiée dans une colonne de chromatographie contenant un petit petit tampon de laine de verre au fond. </li><li> Ajouter 1 ml d&#39;extrait de l&#39;échantillon à la colonne après pré-nettoyage de la colonne avec 10 ml d&#39;hexane. </li><li> On élue la colonne avec 20 ml d&#39;hexane et de recueillir dans conique tube en verre de 20 ml. </li><li> Placer le tube de verre sur le dispositif évaporateur d&#39;azote (N-Vap) sous un courant d&#39;azote et immergé dans l&#39;eau chaude. </li><li> Evaporer à moins de 1 ml, mais pas jusqu&#39;à siccité. </li><li> Retirer de l&#39;appareil N-Vap et transfert à 1 ml fiole jaugée avec de petits lavages d&#39;hexane. </li><li> Transfert à un échantillonneur automatique 1,8 ml flacon étiqueté avec des informations échantillon. </li><li> De Spike 4 pi de standard interne dans le flacon. L&#39;échantillon est maintenant prêt pour l&#39;analyse. </li></ol> 5. Analyse par chromatographie en phase gazeuse - spectrométrie de masse à ionisation chimique utilisant négatif <ol><li> Utiliser les normes pour calibrer l&#39;instrument: Les normes sont disponibles dans des mélanges constitués de groupes de congénères bien séparés. Mélanges 1-5 composent de presque tous les congénères présents dans Arochlors 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254, et 1260 Mix 1 est utilisé comme un étalonnage mélange multi-niveaux, et la linéarité du système est confirmé par la préparation d&#39;au moins cinq niveaux d&#39;étalonnage à des concentrations comprises entre 2 et 100 ng / ml. Mélanges 2-5 sont utilisés comme étalonnages ponctuelles pour chaque congénère. </li><li> Mettre en place la Chromatographie - Système de spectrométrie de masse en mode d&#39;ionisation chimique négative avec l&#39;hydrogène comme gaz vecteur (1 ml / min) et le méthane comme gaz réactif. </li><li> Utilisez un verre de silice, colonne capillaire (60 m × 0,25 mm de diamètre interne) recouvert de DB-XLB à l&#39;épaisseur du film 0,25 um pour la séparation. Programme de température du four 60 à 212 ° C à 25 ° C / min, puis à 260 ° C à 1 ° C / min, puis à 280 ° C à 4 ° C / min, avec un temps de maintien finale de 4 min. températures de l&#39;injecteur et de la ligne de transfert devraient être fixés à 280 ° C. Injecter de 1 à 2 ml de l&#39;échantillon à l&#39;aide du mode d&#39;injection sans division. </li><li> Analyser toutes les normes et les échantillons par la méthode standard interne à l&#39;aide 13 décachlorobiphényle C marqué. </li><li> Effectuez une vérification de l&#39;étalonnage initial en exécutant une deuxième norme de source et Aroclors 1242 et 1260, puis comparer les valeurs prédites pour les congénères Arochlore avec les quantités observées de cette procédure de contrôle. </li><li> Une fois que la procédure d&#39;étalonnage initiale a été réalisée avec succès, l&#39;analyse complète de tous les échantillons. Exécutez un étalonnage vérifier tous les dix échantillons, en utilisant l&#39;un des mélanges d&#39;étalonnage de l&#39;étalonnage initial. </li></ol> 6 Calcul de l&#39;efficacité de transfert net trophique <ol><li> Calculer l&#39;efficacité du transfert trophique net, γ, pour chaque combinaison oréservoir de f et PCB congénères en utilisant l&#39;équation suivante: <img alt="L&#39;équation 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51496/51496eq1.jpg" /> , Où [PCB f] est la concentration moyenne des poissons prédateurs dans le réservoir à la fin de l&#39;expérience PCB congénères, W f est le poids moyen des poissons prédateurs dans le réservoir à la fin de l&#39;expérience, [PCB i] est la concentration en PCB congénère moyen des poissons prédateurs dans le réservoir au début de l&#39;expérience, W i est le poids moyen des poissons prédateurs au début de l&#39;expérience, et la quantité de PCB congénère ingéré se rapporte au poids de l&#39; congénère PCB ingérés, en moyenne, par chaque touladi dans le réservoir au cours de l&#39;expérience. </li><li> Calculer le dénominateur dans l&#39;équation ci-dessus en multipliant la concentration moyenne de congénères de PCB dans les composites de poissons proies par le montant moyen (poids) des poissons proies consommées par les poissons prédateurs dans le dur de réservoirment toute la durée de l&#39;expérience. </li></ol>

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	<li>Madenjian, C. P., Carpenter, S. R., Rand, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Why+are+the+PCB+concentrations+of+salmonine+individuals+from+the+same+lake+so+highly+variable?.">Why are the PCB concentrations of salmonine individuals from the same lake so highly variable?.</a> Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 51 (4), 800-807 (1994).</li><li>Madenjian, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Net+trophic+transfer+efficiency+of+PCBs+to+Lake+Michigan+coho+salmon+from+their+prey.">Net trophic transfer efficiency of PCBs to Lake Michigan coho salmon from their prey.</a> Environmental Science and Technology. 32 (20), 3063-3067 (1998).</li><li>Thomann, R. 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Pour des estimations plus précises de γ, l&#39;expérimentateur doit être capable de suivre avec précision à la fois la quantité d&#39;aliments placés dans chacun des réservoirs et la quantité de la nourriture non consommée dans chacun des réservoirs, au cours de l&#39;expérience. Pour ce faire, l&#39;expérimentateur doit être en mesure d&#39;éliminer tous les restes de nourriture provenant des réservoirs et de déterminer avec précision son poids. En plus de suivi précis de la nourriture réellement c...

Of all of the factors affecting the rate at which fish accumulate contaminants, the efficiency with which fish retain contaminants from the food that they eat is one of the most important1-3. Risk assessment models have been developed to predict future risks to both people and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination, and the reliability of these predictions critically depends on the accuracy of the estimates of the efficiency at which fish retain contaminants from their food4.
The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is transported through the gut wall is known as gross trophic transfer efficiency5. A portion of the quantity of the contaminant transported through the gut wall of the predator may eventually be lost through depuration and/or metabolic transformation. The efficiency with which the contaminant in the food ingested by the predator is retained by the predator, including any losses due to elimination and metabolic transformation, is known as net trophic transfer efficiency6.
Gross trophic transfer efficiency of organic contaminants to fish from their prey appears to vary with the contaminant&#8217;s chemical properties, including lipid affiliation as measured by the octanol-water partition coefficient, Kow3,7. According to an empirical relationship developed by Thomann3, gross trophic transfer efficiency is relatively high when log Kow is equal to a value between 5 and 6. Gross trophic transfer efficiency declines exponentially at a rate of 50% per unit of log Kow as log Kow increases from 6 to 10, according to the Thomann3 relationship.
Nevertheless, the gross and net trophic transfer efficiencies of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to fish from their prey do not appear to follow the Thomann3 relationship in most cases. Although the trophic transfer efficiencies of PCB congeners to lake whitefish (Coregonus clupeaformis) from its food followed the relationship proposed by Thomann8, trophic transfer efficiencies of PCB congeners were either just weakly related or not related at all to log Kow for Atlantic salmon (Salmo salar)9, rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)10, coho salmon (Oncorhynchus kisutch)11, and northern pike (Esox lucius)11.
The overall goal of this study was to present a laboratory technique for estimating the net trophic transfer efficiencies of PCB congeners to a piscivorous fish from its prey. Lake trout (Salvelinus namaycush) was chosen as the piscivorous fish for our experiment because lake trout are relatively easy to maintain in laboratory tanks. Bloater (Coregonus hoyi) was selected as the prey fish to be fed to the lake trout because bloater is eaten by lake trout in its natural setting12. In addition, we determined whether the net trophic transfer efficiencies for lake trout estimated from our laboratory experiment followed the Thomann3 relationship. We also determined whether the degree of activity by the lake trout had a significant effect on net trophic transfer efficiency (&#947;) of the PCB congeners. Activity by lake trout in the Laurentian Great Lakes is believed to have recently increased because changes in the food webs have caused lake trout to allocate more energy toward searching for food13. Lake trout were forced to exercise in one set of tanks by subjecting these lake trout to relatively high flow rates, whereas the other lake trout were permitted to remain relatively inactive by subjecting them to relatively low flow rates. Finally, the specific details of our laboratory procedure that need to be carefully followed to ensure the highest degree of accuracy in the &#947; estimates and to make the laboratory results applicable to the field are discussed, as well as future directions for research building on our laboratory technique. Net trophic transfer efficiency can be estimated both in the laboratory and in the field, and advantages and disadvantages are associated with both approaches. Accuracy in the estimate of &#947; depends on the accuracy of the estimate of food consumption. The amount of food eaten by fish in the laboratory can be accurately determined when proper protocols are followed, whereas the amount of food eaten by fish in the field is typically estimated via bioenergetics modeling. Use of bioenergetics modeling to derive the amount of food eaten has the potential to introduce a substantial amount of uncertainty into the estimates of food consumption. Fish bioenergetics models have been shown to estimate food consumption with no detectable bias for the case of lake trout14,15, but considerable bias in bioenergetics model estimates of food consumption has been detected for the case of lake whitefish15,16. On the other hand, estimates of net trophic transfer efficiency estimated in the laboratory may not be applicable to the field due to a difference in feeding rates between the laboratory and the field17. Evidence from both the laboratory and the field suggest that feeding rate can influence &#947;14,17.
The methodology used in the present study for estimating &#947; in the laboratory is applicable to situations where the predator fish is fed prey fish, and the amount of prey fish eaten by the predator can be accurately tracked. To accomplish this, the experimenter must weigh all of the food before placement in the tank; and the experimenter must be able to remove all of the uneaten food from the tank, and then weigh the uneaten food. In addition, an adequate suite of mixers and blenders should be available to obtain a sufficient degree of homogenization of the samples of both predator and prey fish. Finally, the gas chromatography &#8211; mass spectrometry instrumentation used to determine the PCB congener concentrations must be capable of detecting and quantifying individual PCB congeners at relatively low concentrations.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="632">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Name&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">870-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-430-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">2,380-L fiberglass tanks</td>
			<td style="width:87px;">Frigid Units</td>
			<td style="width:119px;">RT-630-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="68">
			<td height="68" style="height:68px;width:259px;">Tricaine methanesulfonate (Finquel)</td>
			<td style="width:87px;">Argent Chemical Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">C-FINQ-UE-100G</td>
			<td style="width:167px;">Eugenol could also be used as an anesthetic.</td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Ashland chef knife</td>
			<td style="width:87px;">Chicago Cutlery</td>
			<td style="width:119px;">SKU 1106336</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Cutting board</td>
			<td style="width:87px;">Williams-Sonoma</td>
			<td style="width:119px;">3863586</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">Hobart verical mixer (40 quart)</td>
			<td style="width:87px;">Hobart Corporation</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:259px;">1.9-L food processor</td>
			<td style="width:87px;">Robot Coupe, Inc.</td>
			<td style="width:119px;">RSI 2Y1&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Polyethylene bags (various sizes)</td>
			<td style="width:87px;">Arcan Inc.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">I-Chem jars</td>
			<td style="width:87px;">I-Chem</td>
			<td style="width:119px;">220-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:259px;">Top-load electronic balance</td>
			<td style="width:87px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:119px;">Mettler PM 6000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Sodium sulfate, anhydrous - granular</td>
			<td style="width:87px;">EMD</td>
			<td style="width:119px;">SX0760E-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Glass extraction thimbles (45 mm x 130 mm)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">LG-7070-114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Teflon boiling chips</td>
			<td style="width:87px;">Chemware</td>
			<td style="width:119px;">919120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Rapid Vap nitrogen sample concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Labconco</td>
			<td style="width:119px;">7910000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">N-Vap nitrogen concentrator</td>
			<td style="width:87px;">Organomation</td>
			<td style="width:119px;">112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Soxhlet extraction glassware (500 mL)</td>
			<td style="width:87px;">Wilmad-Lab Glass</td>
			<td style="width:119px;">&#160;LG-6900-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Hexane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 211-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Dichloromethane</td>
			<td style="width:87px;">Burdick &#38; Jackson&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Cat. 300-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">Silica gel</td>
			<td style="width:87px;">BDH</td>
			<td style="width:119px;">Cat. BDH9004-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Labl Line 5000 mult-unit extraction heater</td>
			<td style="width:87px;">Lab Line Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="35">
			<td height="35" style="height:35px;width:259px;">Agilent 5973 GC/MS with chemical ionization</td>
			<td style="width:87px;">Agilent</td>
			<td style="width:119px;">5973N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:259px;">Internal standard solution&#160;</td>
			<td style="width:87px;">Cambridge Isotope Laboratories</td>
			<td style="width:119px;">EC-1410-1.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">PCB congener calibration standards</td>
			<td style="width:87px;">Accustandard</td>
			<td style="width:119px;">C-CSQ-SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:259px;">DB-XLB column (60m x 0.25mm, 0.25 micron)</td>
			<td style="width:87px;">Agilent/ J&#38;W</td>
			<td style="width:119px;">122-1262</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

laboratory estimation of net trophic transfer efficiencies of pcb congeners to lake trout (salvelinus namaycush) from its prey

Une technique pour laboratoire estimation de rendement net trophique de transfert (γ) de polychlorobiphényles (PCB) chez les poissons piscivores à partir de leur proie est décrite ici. Au cours d&#39;une expérience de laboratoire de 135 jours, nous avons nourri de fumage (Coregonus hoyi) qui avaient été pêchés dans le lac Michigan au lac de fontaine (Salvelinus namaycush) conservés dans huit réservoirs de laboratoire. Fumage est une proie naturelle pour le touladi. Dans quatre des réservoirs, un débit relativement élevé a été utilisé pour assurer une activité relativement élevée par la truite de lac, alors qu&#39;un faible débit a été utilisé dans les quatre autres réservoirs, ce qui permet une faible activité du touladi. Sur une base réservoir par réservoir, la quantité de nourriture ingérée par le touladi sur chaque jour de l&#39;expérience a été enregistrée. Chaque truite de lac a été pesé au début et à la fin de l&#39;expérience. Quatre à neuf touladi de chacun des huit réservoirs ont été sacrifiés au début de l&#39;expérience, et les 10 touladi restant dans chacun des réservoirs étaient euthanlisés à la fin de l&#39;expérience. Nous avons déterminé les concentrations de 75 congénères de BPC dans le touladi au début de l&#39;expérience, dans le touladi à la fin de l&#39;expérience, et bouffis nourris à la truite de lac pendant l&#39;expérience. Sur la base de ces mesures, γ a été calculé pour chacun des 75 congénères de PCB dans chacun des huit réservoirs. Mean γ a été calculé pour chacun des 75 congénères de PCB pour la truite de lac à la fois active et inactive. Parce que l&#39;expérience a été répétée dans huit réservoirs, l&#39;erreur-type sur moyenne γ peuvent être estimés. Les résultats de ce type d&#39;expérience sont utiles dans les modèles d&#39;évaluation des risques pour prédire le risque futur pour les humains et la faune de manger du poisson contaminé, selon divers scénarios de contamination de l&#39;environnement.

Le touladi a montré une quantité substantielle de la croissance au cours de l&#39;expérience, comme les touladis initiales signifient poids variaient de 694 à 907 g, tandis que les touladis finales le poids moyen variait de 853 à 1566 g (tableau 1). La quantité moyenne de nourriture consommée par une truite de lac au cours de l&#39;expérience de 135 jours variait de 641 à 2649 g. Concentrations PCB congénères moyenne chez la truite du lac a augmenté au cours de l&#39;expérience, car les con...

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Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

Une technique pour laboratoire estimation de l&#39;efficacité du transfert trophique net de polychlorobiphényles (PCB) chez les poissons piscivores à partir de leur proie est présenté. Afin de maximiser l&#39;applicabilité des résultats de laboratoire sur le terrain, les poissons piscivores doit être nourri poissons proies qui sont généralement consommés dans le domaine.

Laboratoire Estimation des gains en efficience de transfert net trophiques des congénères de PCB dans le lac Trout (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) De sa proie

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

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Research

JoVE Journal

Environment

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

10.9K vues.  U. S. Geological Survey.  Une technique pour laboratoire estimation de l'efficacité du transfert trophique net de polychlorobiphényles (PCB) chez les poissons piscivores à partir de leur proie est présenté. Afin de maximiser l'applicabilité des résultats de laboratoire sur le terrain, les poissons piscivores doit être nourri poissons proies qui sont généralement consommés dans le domaine. 