This study was supported by an operating grant from the Canadian Institutes of Health Research (CIHR) to Q.F. (grant #MOP-119600).

Las parejas reproductoras de C57BL / 6 y CD-1 IG-S ratones fueron adquiridos de Charles River. Los animales utilizados en este estudio fueron manejados de acuerdo con las directrices del Consejo Canadiense de los Animales, y los protocolos de estudio fueron aprobados por el Subcomité Uso de Animales de la Universidad de Western, Londres, Canadá. 1. Cuidado de Animales <ol><li> Después de dar a luz es completa y crías de haber sido inicialmente amamantado por su madre para unos pocos horas, colocarlos en una jaula diferente, con una madre adoptiva CD-1. Madres CD-1 presentan un fenotipo más tranquilo con un fuerte instinto de fomento, y tienen una menor tendencia a recuperar las piezas aprovechables cachorros heridos 15. </li></ol> 2. Cirugía <ol><li> Inducir la anestesia mediante la colocación de la cría en una cámara sellada isoflurano (aproximadamente 500 l de 100% v / v isoflurano permite disipar más de 1.300 cm 3 de cámara). Mantenga el ratón en la cámara hasta el cese de movimiento (aproximadamente 30 segundos). </li><li> Retire moutilizar de la cámara y de inducir la anestesia con isoflurano hipotermia mediante la colocación del ratón sobre hielo húmedo. Para evitar la congelación, coloque hielo dentro de un guante quirúrgico estéril, envuelva el ratón dentro del guante y cubrir el guante con hielo o envolver el ratón en una gasa húmeda estéril y colocarlo sobre hielo. NOTA: Los ratones enfrían más rápido cuando el contacto con el hielo es sobre un área superficial más grande, y como tal hielo derretido puede acortar el tiempo de inducción de hipotermia. </li><li> Confirmar la anestesia por la falta de respuesta del movimiento a los pies y de pinzamiento del rabo. NOTA: cese del movimiento provocado ocurre a una temperatura corporal entre 15 ° C y 8 ​​° C. (Tiempo de enfriamiento a esta temperatura aproximadamente 1 min). La apnea completa y asistolia no se requiere para la ligadura de LAD. </li><li> Mover la cama hielo en el área quirúrgica equipado con un microscopio quirúrgico. Asegúrese de que la cría de ratón se mantiene en hielo durante todo el procedimiento quirúrgico. NOTA: El área quirúrgica, gasas y los instrumentos quirúrgicos deben ser esterilizados. maintaen el campo estéril durante todo el procedimiento, y el desgaste de un solo uso, guantes quirúrgicos estériles. No se requiere pomada oftálmica ya que los ratones nacen con los ojos cerrados 17. </li><li> Coloque la cría de ratón en la posición de decúbito lateral derecho. Desinfectar el pecho limpiando suavemente con solución de povidona yodada seguido de un algodón empapado en etanol. </li><li> Realizar incisión en la piel en el pecho izquierdo a lo largo de la línea axilar media cortando la piel entre el xifoides y la axila izquierda de unos pocos milímetros por debajo de la pata delantera izquierda. También utilizar tijeras para cortar a través de la capa de músculo pectoral subyacente. </li><li> Realizar una toracotomía izquierda en el espacio intercostal 4º separando las costillas y los músculos intercostales con unas pinzas. NOTA: costillas neonatales son muy frágiles y pueden romperse fácilmente. Para evitar esto, suavemente costillas separadas mediante la apertura de pinzas a lo largo del músculo intercostal (en lugar de agarrar costillas). </li><li> Visualizar el anterior izquierda arteria coronaria descendente (LAD) que emerge de la aur izquierdaIcle detrás de la vena pulmonar y descender más allá de la gran vena cardíaca. NOTA: En esta ventana neonatal precoz, el timo a menudo se visualiza y puede cubrir parte de la base cardiaca. La LAD se puede ver emergente al lado de la posición del timo, en función del ángulo de incisión torácica. </li><li> Ligar la LAD pasando una sutura de nylon 11-0 (aguja de 0,007 mm de diámetro) por debajo de la arteria a través de mediados del ventrículo por debajo de la aurícula izquierda (Figura 1C). La isquemia se confirma con el escaldado del miocardio por debajo del sitio de la sutura (Figura 1G). </li><li> Cerrar la incisión torácica usando 8-0 suturas de nylon (aguja de 0,15 mm de diámetro). Use dos suturas para cerrar las costillas. Coloque ambas suturas de nervio antes de ligación para asegurar que la aguja no perforar los pulmones cuando pasa a través de la cavidad del cuerpo. </li><li> Después de cerrar las costillas, retire el ratón del lecho de hielo. Mantenga el ratón dentro del área quirúrgica y colocarlo directamente en la estéril quirúrgico parawel sobre una almohadilla térmica a 37 ° C para comenzar el calentamiento. </li><li> Una vez en la zona caliente estéril, cerrar las capas musculares y de la piel utilizando 8-0 suturas de nylon (aguja de 0,15 mm de diámetro). Utilice una sutura para la capa muscular y el uso de dos suturas para la incisión de la piel. NOTA: Músculo y capas de la piel pueden estar cerradas en una almohadilla térmica para reducir el tiempo de exposición hipotermia. la temperatura del ratón comienza a elevarse una vez colocado sobre el cojín eléctrico, pero sigue siendo lo suficientemente baja para el mantenimiento de la anestesia durante el cierre de los músculos y la piel. </li></ol> 3. recuperación quirúrgica <ol><li> Continuar el calentamiento rápido sobre una almohadilla térmica hasta el regreso de circulación espontánea. No deje un animal sin vigilancia hasta que se haya recuperado el conocimiento suficiente para mantener decúbito esternal. Retire la povidona yodada y la sangre limpiando suavemente sitio de la lesión con la esponja de etanol. </li><li> Después de la recuperación de la anestesia suficiente, eliminarlo de la zona quirúrgica estéril, untarlo con ropa de cama de Fosterjaula de la madre y las crías de retorno para estimular la madre. Esto ayuda a prevenir el rechazo de la madre o la canibalización. NOTA: No devuelva los cachorros a una jaula con otros animales hasta que esté completamente recuperado. Si no se ha utilizado una camada entera, y sus compañeros de camada permanecer con la madre de crianza, colocar cachorros recuperados en el medio de la camada. Si se realiza más de una cirugía, completa todas las cirugías necesarias para una litera individual antes de devolver los ratones a su madre adoptiva. </li><li> Observar el comportamiento de la madre adoptiva hacia el cachorro cada 10 - 15 min para 2 - 3 horas para asegurar la aceptación del cachorro. Si la madre muestra la agresión hacia el cachorro herido, retire el cachorro y la eutanasia por sobredosis de isoflurano (&gt; 5%; hasta el cese de la respiración), seguido por decapitación. NOTA: perioperatoria medicamentos analgesia no son necesarios ya que los reflejos de dolor centralizados no están completamente desarrollados en esta temprana edad de 15 años. </li></ol> 4. Medición de miocardio tamaño del infarto 4 -6 horas después de la MI <ol><li> Permitir a los cachorros a recuperarse en el cuidado de una madre adoptiva CD-1 por un período de 4 - 6 horas. Retire el cachorro de la jaula con la madre y practicar la eutanasia por sobredosis de isoflurano seguido por decapitación con grandes tijeras. </li><li> Escindir el corazón bajo microscopio de disección, con cuidado de no rasgar el miocardio. <ol><li> Cortar la piel del proceso xifoides a la parte superior del tórax. pared abdominal abierta debajo de la caja torácica. Agarre la caja torácica inferior y cortar a través de las costillas y la musculatura longitudinalmente a lo largo axilar media izquierda de la línea desde el diafragma hasta la axila. </li><li> Mantenga tijeras en plano transversal y cortar cuidadosamente a través del diafragma de izquierda a derecha. Asegúrese de colocar las tijeras por debajo del nivel del corazón a fin de evitar cualquier daño al ápice. </li><li> Agarre la caja torácica y la parte cortada hacia la derecha de las costillas y la musculatura junto axilar media la línea derecha. Retire todas las conexiones vasculares en el corazón con unas tijeras. Retire el corazón de la cavidad del pecho agarrandola base. </li></ol></li><li> Sección el corazón en tres pedazos usando una cuchilla de afeitar de acero al carbono quirúrgica. Haga el primer corte a lo largo del eje corto del corazón en el punto medio entre la sutura y el ápex cardíaco. Hacer que el segundo corte en el nivel de la sutura (Figura 3A). NOTA: Esto deja una sección ápice de aproximadamente 0,75 mm de espesor, que pesa 0,0018 g; una sección mediados de base de aproximadamente 1 mm de espesor, con un peso 0,0065 g; y la base del corazón. </li><li> Colocar las secciones del corazón en 1% de cloruro de 2,3,5-trifeniltetrazolio (TTC) a temperatura ambiente durante 10 - 15 min. Tenga mucho cuidado con la muestra para evitar el exceso de tinción. </li><li> Para aumentar el contraste, corregir las rebanadas del corazón manchadas con paraformaldehído al 4% durante la noche a 4 ° C. Para calcular el área del infarto%, secciones del corazón fotografía y medir el área del infarto de software de imágenes. El miocardio viable se tiñe de color rojo, mientras que el área de infarto es demarcada como blanco de 18. </li></ol> 5. Medición de laLa función cardíaca mediante ecocardiografía post-MI <ol><li> Permitir a los cachorros a recuperarse en el cuidado de una madre adoptiva CD-1 por un período de 24 - 48 h. Inducir la anestesia mediante la colocación de la cría en una cámara sellada isoflurano (5% de isoflurano). Mantenga el ratón en la cámara hasta el cese de movimiento (aproximadamente 30 segundos). </li><li> Asegure que el cachorro en la posición supina en un muelle climatizada (temperatura de 37 ° C), con su nariz en un cono de entregar 0,5 - 1% isoflurano (para el mantenimiento de la anestesia). Coloque gel de eco pre-calentado en la zona torácica izquierda. </li><li> Obtener una vista de eje largo paraesternal del ventrículo izquierdo (VI). Asegurar que las imágenes se obtienen por debajo del nivel de la sutura en el VI. Tras la adquisición de la posición, gire la sonda de ultrasonido (40 MHz) 90 ° para obtener una vista de eje corto paraesternal, y grabar en modo M imágenes ecocardiográficas. </li><li> Medir la diastólica final y terminar con diámetros internos sistólica del ventrículo izquierdo de las imágenes en modo M de eje corto. Calcular la fracción de eyección y fractioacortamiento nal. </li></ol> 6. Medición de miocardio tamaño del infarto 24 horas después de la MI <ol><li> Permitir a los cachorros a recuperarse en el cuidado de una madre adoptiva CD-1 por un período de 24 horas. Retire el cachorro de la jaula con la madre y practicar la eutanasia por sobredosis de isoflurano seguido por decapitación con grandes tijeras. </li><li> Abrir la cavidad torácica como en el paso 4.2. Antes de ablación del corazón, cuidado, sujete la aorta torácica justo por encima del diafragma con unas pinzas finas. Mantenga tijeras finas en el plano coronal, planas contra la pared torácica, y cortar la aorta torácica de la pared torácica posterior tijeras se mueve en la dirección craneal. </li><li> Cortar la aorta libre de la pared torácica y cualquier otra conexión hasta que llega al corazón. Escindir el corazón sujetando la vena cava superior y cortar todas las demás conexiones vasculares en el cuerpo. </li><li> Enjuague el corazón (aorta con adjuntos) en solución salina. cannulate cuidadosamente la aorta torácica con una aguja de calibre 30 y atar unaorta a la cánula con hilo de sutura de nylon 8-0. </li><li> Perfundir el corazón con 1 ml de solución salina a través de la aorta a través de una aguja de calibre 30 a una velocidad de 1 ml / min. Perfundir el corazón con 150 l de solución de azul de Evans al 2% a una velocidad de 1 ml / min. Retire el corazón de la cánula, la sección en tres pedazos y teñirla con TTC como se describe en la sección 4. </li><li> Para calcular el tamaño del infarto, las secciones del corazón fotografía y medir el área del infarto de software de imágenes. El miocardio viable mancha azul, en la zona de riesgo manchas de color rojo, y el área del infarto está demarcado como blanco. </li></ol>

<ol>
	<li>Rosamond, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+disease+and+stroke+statistics--2008+update:+a+report+from+the+American+Heart+Association+Statistics+Committee+and+Stroke+Statistics+Subcommittee.">Heart disease and stroke statistics--2008 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee.</a> Circulation. 117 (4), 25-146 (2008).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meta-analysis+Global+Group+in+Chronic+Heart+Failure.+The+survival+of+patients+with+heart+failure+with+preserved+or+reduced+left+ventricular+ejection+fraction:+an+individual+patient+data+meta-analysis.">Meta-analysis Global Group in Chronic Heart Failure. The survival of patients with heart failure with preserved or reduced left ventricular ejection fraction: an individual patient data meta-analysis.</a> Eur Heart J. 33 (14), 1750-1757 (2012).</li><li>Soonpaa, M. H., Field, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+cardiomyocyte+DNA+synthesis+in+normal+and+injured+adult+mouse+hearts.">Assessment of cardiomyocyte DNA synthesis in normal and injured adult mouse hearts.</a> Am J Physiol. 272, 220-226 (1997).</li><li>D'Uva, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ERBB2+triggers+mammalian+heart+regeneration+by+promoting+cardiomyocyte+dedifferentiation+and+proliferation.">ERBB2 triggers mammalian heart regeneration by promoting cardiomyocyte dedifferentiation and proliferation.</a> Nat Cell Biol. 17 (5), 627-638 (2015).</li><li>Oberpriller, J. O., Oberpriller, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+of+the+adult+newt+ventricle+to+injury.">Response of the adult newt ventricle to injury.</a> J Exp Zool. 187 (2), 249-253 (1974).</li><li>Poss, K. D., Wilson, L. G., Keating, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+regeneration+in+zebrafish.">Heart regeneration in zebrafish.</a> Science. 298 (5601), 2188-2190 (2002).</li><li>Jopling, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zebrafish+heart+regeneration+occurs+by+cardiomyocyte+dedifferentiation+and+proliferation.">Zebrafish heart regeneration occurs by cardiomyocyte dedifferentiation and proliferation.</a> Nature. 464 (7288), 606-609 (2010).</li><li>Porrello, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+regenerative+potential+of+the+neonatal+mouse+heart.">Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart.</a> Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).</li><li>Haubner, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complete+cardiac+regeneration+in+a+mouse+model+of+myocardial+infarction.">Complete cardiac regeneration in a mouse model of myocardial infarction.</a> Aging. 4 (12), 966-977 (2012).</li><li>Soonpaa, M. H., Kim, K. K., Pajak, L., Franklin, M., Field, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiomyocyte+DNA+synthesis+and+binucleation+during+murine+development.">Cardiomyocyte DNA synthesis and binucleation during murine development.</a> Am J Physiol. 271, 2183-2189 (1996).</li><li>Li, F., Wang, X., Capasso, J. M., Gerdes, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+transition+of+cardiac+myocytes+from+hyperplasia+to+hypertrophy+during+postnatal+development.">Rapid transition of cardiac myocytes from hyperplasia to hypertrophy during postnatal development.</a> J Mol Cell Cardiol. 28 (8), 1737-1746 (1996).</li><li>Feng, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elevation+of+an+endogenous+inhibitor+of+nitric+oxide+synthesis+in+experimental+congestive+heart+failure.">Elevation of an endogenous inhibitor of nitric oxide synthesis in experimental congestive heart failure.</a> Cardiovasc Res. 37 (3), 667-675 (1998).</li><li>Xiang, F. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiomyocyte-specific+overexpression+of+human+stem+cell+factor+improves+cardiac+function+and+survival+after+myocardial+infarction+in+mice.">Cardiomyocyte-specific overexpression of human stem cell factor improves cardiac function and survival after myocardial infarction in mice.</a> Circulation. 120 (12), 1065-1074 (2009).</li><li>van Kats, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Angiotensin-converting+enzyme+inhibition+and+angiotensin+II+type+1+receptor+blockade+prevent+cardiac+remodeling+in+pigs+after+myocardial+infarction:+role+of+tissue+angiotensin+II.">Angiotensin-converting enzyme inhibition and angiotensin II type 1 receptor blockade prevent cardiac remodeling in pigs after myocardial infarction: role of tissue angiotensin II.</a> Circulation. 102 (13), 1556-1563 (2000).</li><li>Mahmoud, A. I., Porrello, E. R., Kimura, W., Olson, E. N., Sadek, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+models+for+cardiac+regeneration+in+neonatal+mice.">Surgical models for cardiac regeneration in neonatal mice.</a> Nat Protoc. 9 (2), 305-311 (2014).</li><li>Ahn, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+myocardial+infarcts+of+a+predictable+size+and+location+by+branch+pattern+probability-assisted+coronary+ligation+in+C57BL/6+mice.">Induction of myocardial infarcts of a predictable size and location by branch pattern probability-assisted coronary ligation in C57BL/6 mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 286 (3), 1201-1207 (2004).</li><li>Kao, W. W., Xia, Y., Liu, C. Y., Saika, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signaling+pathways+in+morphogenesis+of+cornea+and+eyelid.">Signaling pathways in morphogenesis of cornea and eyelid.</a> Ocul Surf. 6 (1), 9-23 (2008).</li><li>Redfors, B., Shao, Y. Z., Omerovic, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarct+size+and+area+at+risk+assessment+in+mice.">Myocardial infarct size and area at risk assessment in mice.</a> Experimental &amp; Clinical Cardiology. 17 (4), 268-272 (2012).</li><li>Phifer, C. B., Terry, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+hypothermia+for+general+anesthesia+in+preweanling+rodents.">Use of hypothermia for general anesthesia in preweanling rodents.</a> Physiol Behav. 38 (6), 887-890 (1986).</li><li>Jesty, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=c-kit++precursors+support+postinfarction+myogenesis+in+the+neonatal,+but+not+adult,+heart.">c-kit+ precursors support postinfarction myogenesis in the neonatal, but not adult, heart.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (33), 13380-13385 (2012).</li><li>Mahmoud, A. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meis1+regulates+postnatal+cardiomyocyte+cell+cycle+arrest.">Meis1 regulates postnatal cardiomyocyte cell cycle arrest.</a> Nature. 497 (7448), 249-253 (2013).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

La ligadura de LAD quirúrgico demostrado en el presente documento es un método fiable para producir MI en ratones neonatales. Este modelo proporciona a los investigadores un modelo reproducible con el que para estudiar la regeneración del corazón de los mamíferos. La visualización de la vasculatura coronaria es un componente clave de este método, asegurando la colocación de sutura correcta y garantizando así la reproducibilidad. Mientras que los ratones adultos no poseen capacidades poiquilotermos, la temperatu...

El infarto de miocardio (IM) es la principal causa de muerte en el mundo, y sigue siendo responsable de aproximadamente un tercio de los casos de insuficiencia cardiaca 1. Mientras que la llegada de la intervención percutánea y optimización continua del uso de trombolíticos ha aumentado la reperfusión después de un IM, la muerte de los cardiomiocitos y la pérdida de miocardio contráctil, sin embargo, ocurre. También queda un gran número de pacientes &quot;sin opción&quot; que no son candidatos para o que no vea los beneficios de estas intervenciones. Estos pacientes continúan experimentando isquemia incapacitantes que conducen a la formación de la cicatriz y el remodelado ventricular perjudicial como un mecanismo de curación del infarto. Este proceso resulta en última instancia, la insuficiencia cardíaca, para los que el pronóstico sigue siendo pobre a pesar del tratamiento farmacológico óptimo con inhibidores de la enzima convertidora de angiotensina (IECA) y los bloqueadores beta. Por desgracia, la tasa de mortalidad a un año en pacientes con función ventricular izquierda severamente dañada todavía permanece comoalto como 26% 2. El trasplante de corazón es la última opción de tratamiento para los pacientes con insuficiencia cardíaca. Sin embargo, el grupo limitado de donantes para el trasplante de corazón no hacer de esto una opción viable para la mayoría de los pacientes. Por lo tanto, el descubrimiento de nuevos agentes terapéuticos para restaurar el miocardio dañado sigue siendo primordial para resolver el problema de la enfermedad cardíaca. Por lo tanto, se requieren modelos animales fiables de lesión cardíaca como un componente crítico de este proceso. El dogma tradicional ha dictado que los cardiomiocitos adultos son post-mitótico, terminales células diferenciadas, incapaces de dividir o cierre definitivo de diferenciación para reemplazar el miocardio dañado 3. Como tal, un corazón de los mamíferos adultos nunca pudo recuperarse completamente de una lesión, y cardiomiocitos perdidos sería reemplazado por tejido fibroso. Por lo tanto, la investigación se ha centrado principalmente en agentes terapéuticos para reducir al mínimo la expansión del infarto y reducir la formación de cicatrices. Sin embargo, más recientemente, se ha producido un cambio de paradigmaen el pensamiento que rodea la cicatrización cardíaca y muchos esfuerzos de investigación se han redirigido a centrarse en el potencial para la regeneración cardiaca 4. Hasta hace poco, el estudio in vivo de regeneración cardiaca se restringió a los modelos no de vertebrados, tales como los que en anfibios y peces teleósteos urodelos 5-7. Sin embargo, el descubrimiento de la capacidad de regeneración cardiaca en el ratón neonatal ha llevado al desarrollo de dos modelos quirúrgicos de la regeneración cardiaca de mamífero: la resección de la oclusión de la arteria coronaria cardiaca ápice y para inducir el infarto de miocardio 8,9. En 2011, se utilizó un modelo de la resección del ápice del ratón para demostrar que la regeneración cardiaca completa es posible en el día postnatal 1 (P1). Sin embargo, esta capacidad disminuye rápidamente después del período neonatal inicial. El corazón de los mamíferos pierde su potencial regenerativo poco después del nacimiento en P7 como el número de células progenitoras declive, y cardiomiocitos llegar a ser binucleadas, perdersu competencia proliferativa, y permanentemente salen del 10,11 ciclo celular. La comprensión de las diferencias fundamentales entre el recién nacido y corazón de los mamíferos adultos puede conducir a nuevos conocimientos sobre la regeneración cardiaca. Si bien la resección del ápice de hecho ofrece una visión de re-crecimiento de tejido contráctil, el modelo no simula una lesión cardiaca humano típico, y por lo tanto no se presta también para el desarrollo de la terapéutica. El modelo de oclusión de la arteria coronaria, sin embargo, simula de forma más directa los aspectos fisiopatológicos de la patología MI, y por lo tanto pueden proporcionar información más útil sobre los mecanismos que pueden ser aplicables al avance terapéutico para uso humano. Ligadura coronaria quirúrgica se ha utilizado como una técnica experimental útil en muchos modelos animales 12-14. En el modelo de ligadura de la arteria coronaria de adultos, los animales se anestesiaron y se intubados para permitir la apertura de la cavidad torácica, manteniendo respiratien. El corazón sigue latiendo regularmente, permitiendo la visualización de la vasculatura coronaria y permitiendo la colocación de la sutura precisa. Por otra parte, el corazón sigue siendo de color rosa como la perfusión continua, y después de la ligadura del miocardio isquémico se ve pálido, lo que indica éxito ligadura de la arteria coronaria. El protocolo descrito para ratones recién nacidos, sin embargo, es menos fiable como la arteria coronaria no se visualiza y el cirujano debe estimar dónde colocar la sutura 15. Aunque la anatomía general de la vasculatura coronaria es el mismo, la variabilidad animal individual en la dirección y la ramificación de la LAD existe 16. Por lo tanto, cuando &quot;ir a ciegas&quot;, la arteria podría perderse fácilmente. entonces se requieren otras técnicas, como la ecocardiografía para confirmar la inducción exitosa de MI, y para asegurar que todas las cirugías como resultado un tamaño del infarto similar. Aquí se describe una mejora en un método recientemente publicado 15, donde la posición de la LAD Se puede establecercado y por lo tanto LAD se pueden ligar para inducir reproducible MI. Esta técnica no requiere intubación endotraqueal o ventilación mecánica, como la toracotomía en un estado hipotérmico en el ratón neonatal no resulta en el colapso pulmonar. Sin embargo, en el método anteriormente descrito, la hipotermia severa debe ser inducida hasta el punto de tanto apnea completa y el cese del ritmo cardíaco 15. La principal limitación de este enfoque es que la arteria coronaria ya no es perfundido y el corazón se ve pálido, incluso antes de la ligadura de LAD. En el enfoque descrito en el presente documento, la visualización de las arterias coronarias es posible en un punto de letargo antes de la hipotermia profunda y la cesación del ritmo cardíaco y la recuperación completa del ratón neonatal después de la cirugía. Este método ofrece una ventaja importante de 100% de reproducibilidad.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="790">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">8-0 Nylon Suture</td>
			<td style="width:244px;">Microsurgery Instruments</td>
			<td style="width:119px;">8-0 Nylon</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:38px;width:261px;">11-0 Nylon Suture</td>
			<td style="width:244px;">Shanghai Pudong Medical Products Co Ltd</td>
			<td style="width:119px;">H1101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Fine Scissors</td>
			<td style="width:244px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:119px;">14058-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Small forceps</td>
			<td style="width:244px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:119px;">11063-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Micro Needle Holder</td>
			<td style="width:244px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:119px;">12060-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Zeiss Opmi 6s/S3 Microscope</td>
			<td style="width:244px;">Zeiss</td>
			<td style="width:119px;">300002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:244px;">Baxter</td>
			<td style="width:119px;">CA2L9100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Isoflurane Chamber</td>
			<td style="width:244px;">Made in Feng laboratory</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Bead Sterilizer</td>
			<td style="width:244px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:119px;">18000-45</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:261px;">2,3,5-Triphenyltetraolium chloride (TTC)</td>
			<td style="width:244px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">T8877</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:23px;width:261px;">Stereomicroscope SteREO Discovery. V8</td>
			<td style="width:244px;">Zeiss</td>
			<td style="width:119px;">435400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">AxioVision 8.0</td>
			<td style="width:244px;">Zeiss</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Axiocam Icc5</td>
			<td style="width:244px;">Zeiss</td>
			<td style="width:119px;">426554</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Heat pad</td>
			<td style="width:244px;">Sunbeam&#160;</td>
			<td style="width:119px;">731A0-CN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Sterile Gloves</td>
			<td style="width:244px;">VWR</td>
			<td style="width:119px;">414004-430</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Gauze Sponges</td>
			<td style="width:244px;">Ducare</td>
			<td style="width:119px;">90212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:261px;">Ice</td>
			<td style="width:244px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

myocardial infarction in neonatal mice, a model of cardiac regeneration

El infarto de miocardio inducido por ligadura de la arteria coronaria se ha utilizado en muchos modelos animales como una herramienta para estudiar los mecanismos de la reparación cardíaca y la regeneración, y para definir nuevas dianas para la terapéutica. Durante décadas, los modelos de la regeneración cardíaca completa existían en anfibios y peces, sino un homólogo de mamíferos no estaba disponible. El reciente descubrimiento de una ventana postnatal durante el cual los ratones poseen capacidades regenerativas ha llevado a la creación de un modelo de mamífero de la regeneración cardíaca. Un modelo quirúrgico de la regeneración cardiaca de mamífero en el ratón neonatal se presenta en este documento. En pocas palabras, postnatal día 1 (P1) los ratones se anestesian por isoflurano y se coloca sobre una almohadilla de hielo para inducir la hipotermia. Después se abre el pecho, y la descendente anterior de la arteria coronaria (LAD) se visualiza, una sutura se coloca alrededor de la LAD para causar isquemia de miocardio en el ventrículo izquierdo. El procedimiento quirúrgico tarda 10-15 minutos. La visualización de la arteria coronaria secrucial para colocación de la sutura precisa y reproducibilidad. El infarto de miocardio y disfunción cardíaca se confirman por el cloruro de trifenil-tetrazolio tinción y la ecocardiografía (TTC), respectivamente. regeneración completa 21 días después de un infarto de miocardio es verificada por la histología. Este protocolo se puede utilizar como una herramienta para dilucidar los mecanismos de regeneración cardiaca de mamífero después de un infarto de miocardio.

El procedimiento de infarto de miocardio en P1 puede ser completado en el 10 - 15 min y tiene una tasa de mortalidad del 7,8% (5 de 64 cachorros). Después de la cirugía, los ratones se recuperan de la anestesia de hipotermia en el próximo de 5 - 20 minutos (tiempo de recuperación depende de la temperatura corporal alcanzado durante la anestesia y la velocidad del cirujano). Cuando se utiliza crías P7 (para la comparación con un miocardio no regenerativa), se requiere un período de...

Watch this Scientific Journal Video about Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration at JoVE.com

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

This protocol describes a highly reproducible model of cardiac regeneration by surgical induction of myocardial infarction in the left ventricle of postnatal day 1 mice. The method involves induction of hypothermic anesthesia and ligation of the left anterior descending coronary artery.

El infarto de miocardio en ratones recién nacidos, un modelo de regeneración cardiaca

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

myocardial-infarction-in-neonatal-mice-a-model-of-cardiac-regeneration

Research

JoVE Journal

Medicine

18.3K vistas.  Western University. This protocol describes a highly reproducible model of cardiac regeneration by surgical induction of myocardial infarction in the left ventricle of postnatal day 1 mice. The method involves induction of hypothermic anesthesia and ligation of the left anterior descending coronary artery.

Video: Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

Infarto agudo de miocardio en ratas

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Investigación

Medicina

MRI and PET in Mouse Models of Myocardial Infarction

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ideal model for testing novel therapeutic strategies.
In vivo magnetic resonance imaging (MRI) gives excellent views of the heart noninvasively with clear anatomical detail, which can be used for accurate functional assessment. Contrast agents can provide basic measures of tissue viability but these are nonspecific. Positron emission tomography (PET) is a complementary technique that is highly specific for molecular imaging, but lacks the anatomical detail of MRI. Used together, these techniques offer a sensitive, specific and quantitative tool for the assessment of the heart in disease and recovery following treatment.
In this paper we explain how these methods are carried out in mouse models of acute myocardial infarction. The procedures described here were designed for the assessment of putative protective drug treatments. We used MRI to measure systolic function and infarct size with late gadolinium enhancement, and PET with fluorodeoxyglucose (FDG) to assess metabolic function in the infarcted region. The paper focuses on practical aspects such as slice planning, accurate gating, drug delivery, segmentation of images, and multimodal coregistration. The methods presented here achieve good repeatability and accuracy maintaining a high throughput.

We describe how to perform MRI and PET imaging of the mouse heart. The protocol is tailored to assess treatment efficacy in models of myocardial infarction and heart failure.

Resonancia magnética y PET en modelos de ratón de infarto de miocardio

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ...

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

Infarto de miocardio y la evaluación de resultados funcionales en los cerdos

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Minimal Invasive Surgical Procedure of Inducing Myocardial Infarction in Mice

Myocardial infarction still remains the main cause of death in western countries, despite considerable progress in the stent development area in the last decades. For clarification of the underlying mechanisms and the development of new therapeutic strategies, the availability of valid animal models are mandatory. Since we need new insights into pathomechanisms of cardiovascular diseases under in vivo conditions to combat myocardial infarction, the validity of the animal model is a crucial aspect. However, protection of animals are highly relevant in this context. Therefore, we establish a minimally invasive and simple model of myocardial infarction in mice, which assures a high reproducibility and survival rate of animals. Thus, this models fulfils the requirements of the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction) for animal experiments and assure the scientific information needed for further developing of therapeutical strategies for cardiovascular diseases.

A highly reproducible model for myocardial infarction in mice with minimal invasive manipulations is described. The model can be easily performed, resulting in a high reproducibility and survival rate. Thus, the described model will reduce the number of required animals as requested by the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction).

Mínimo procedimiento quirúrgico invasivo de inducir infarto de miocardio en ratones

Myocardial infarction still remains the main cause of death in western countries, despite considerable progress in the stent development area in the last ...

Permanent Ligation of the Left Anterior Descending Coronary Artery in Mice: A Model of Post-myocardial Infarction Remodelling and Heart Failure

Heart failure is a syndrome in which the heart fails to pump blood at a rate commensurate with cellular oxygen requirements at rest or during stress. It is characterized by fluid retention, shortness of breath, and fatigue, in particular on exertion. Heart failure is a growing public health problem, the leading cause of hospitalization, and a major cause of mortality. Ischemic heart disease is the main cause of heart failure.
Ventricular remodelling refers to changes in structure, size, and shape of the left ventricle. This architectural remodelling of the left ventricle is induced by injury (e.g., myocardial infarction), by pressure overload (e.g., systemic arterial hypertension or aortic stenosis), or by volume overload. Since ventricular remodelling affects wall stress, it has a profound impact on cardiac function and on the development of heart failure. A model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice is used to investigate ventricular remodelling and cardiac function post-myocardial infarction. This model is fundamentally different in terms of objectives and pathophysiological relevance compared to the model of transient ligation of the left anterior descending coronary artery. In this latter model of ischemia/reperfusion injury, the initial extent of the infarct may be modulated by factors that affect myocardial salvage following reperfusion. In contrast, the infarct area at 24 hr after permanent ligation of the left anterior descending coronary artery is fixed. Cardiac function in this model will be affected by 1) the process of infarct expansion, infarct healing, and scar formation; and 2) the concomitant development of left ventricular dilatation, cardiac hypertrophy, and ventricular remodelling.
Besides the model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery, the technique of invasive hemodynamic measurements in mice is presented in detail.

Heart failure is the leading cause of hospitalization and a major cause of mortality. A model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice is applied to investigate ventricular remodelling and cardiac dysfunction post-myocardial infarction. The technique of invasive hemodynamic measurements in mice is presented.

La ligadura permanente de la arteria coronaria descendente anterior en ratones: un modelo de remodelación post infarto de miocardio e insuficiencia cardiaca

Heart failure is a syndrome in which the heart fails to pump blood at a rate commensurate with cellular oxygen requirements at rest or during stress. It ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are therefore required to confine cardiac damage, promote survival and reduce the disease burden of heart failure. Large animal experiments are an essential part in the translational process from experimental to clinical therapies. To optimize clinical translation, robust and representative outcome measures are mandatory. The present manuscript aims to address this need by describing the assessment of three clinically relevant outcome modalities in a pig acute myocardial infarction (AMI) model: infarct size in relation to area at risk (IS/AAR) staining, 3-dimensional transesophageal echocardiography (TEE) and admittance-based pressure-volume (PV) loops. Infarct size is the main determinant driving the transition from AMI to heart failure and can be quantified by IS/AAR staining. Echocardiography is a reliable and robust tool in the assessment of global and regional cardiac function in clinical cardiology. Here, a method for three-dimensional transesophageal echocardiography (3D-TEE) in pigs is provided. Extensive insight into cardiac performance can be obtained by admittance-based pressure-volume (PV) loops, including intrinsic parameters of myocardial function that are pre- and afterload independent. Combined with a clinically feasible experimental study protocol, these outcome measures provide researchers with essential information to determine whether novel therapeutic strategies could yield promising targets for future testing in clinical studies.

Reliable and accurate outcome assessment is the key for translation of preclinical therapies into clinical treatment. The current paper describes how to assess three clinically relevant primary outcome parameters of cardiac performance and damage in a pig acute myocardial infarction model.

La evaluación de resultado primaria en un modelo porcino de infarto agudo de miocardio

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Real-time Pressure-volume Analysis of Acute Myocardial Infarction in Mice

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any potential therapeutic approach directed against acute left ventricular (LV) dysfunction. Current imaging modalities (e.g., echocardiography and magnetic resonance imaging) have several limitations since data on LV pressure cannot directly be measured. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion could serve as a novel method for a real-time evaluation of LV function.
At the beginning of the procedure, mice were anesthetized followed by endotracheal intubation. For LV catheterization, the right carotid artery was exposed via middle-neck incision. The catheter was introduced and placed into the LV cavity. Left thoracotomy was conducted and the left main coronary artery (LCA) was ligated. To induce reperfusion, the suture was released after 45 min. Pressure-volume data was recorded at all times.
Ligation of the LCA caused a decrease in LV systolic function as evidenced by a 30% reduction in stroke volume, LV ejection fraction (EF), and cardiac output. Maximum dP/dt as a parameter for LV contractility was also significantly reduced and diastolic function was severely impaired (minimum dP/dt -40%). Reperfusion over a period of 20 min did not lead to a complete recovery of LV function.
Real-time pressure-volume analysis served as a valid procedure for monitoring cardiac function during acute myocardial infarction in mice. Maintaining stable anesthesia and a standardized surgical approach was crucial to ensure valid results. As the early phase of acute myocardial infarction is critical for morbidity and mortality, the delineated method could be beneficial for preclinical evaluation of new strategies for cardioprotection.

Acute myocardial infarction in mice induces acute but incompletely characterized changes in left ventricular (LV) function. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion serves as a novel method for a real-time evaluation of LV function.

Análisis en tiempo real de presión-volumen del infarto agudo de miocardio en ratones

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we demonstrate a murine cryoinjury infarct model that generates precise infarct sizes with high reproducibility and replicability. In brief, after intubation and sternotomy of the animal, the heart is lifted from the thorax. The probe of a handheld liquid nitrogen delivery system is applied onto the myocardial wall to induce cryoinjury. Impaired ventricular function and electrical conduction can be monitored with echocardiography or optical mapping. Transmural myocardial remodeling of the infarcted area is characterized by collagen deposition and loss of cardiomyocytes. Compared to other models (e.g., LAD-ligation), this model utilizes a handheld liquid nitrogen delivery system to generate more uniform infarct sizes.

This article demonstrates a model to study cardiac remodeling after myocardial cryoinjury in mice.

Un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major causes of mortality and morbidity around the world. Cell-based therapies for cardiac repair and improvement of left ventricular function after MI have attracted considerable attention. Accordingly, the safety and efficacy of these cell transplantations should be tested in a preclinical large animal model of HF prior to clinical use. Pigs are widely used for cardiovascular disease research due to their similarity to humans in terms of heart size and coronary anatomy. Therefore, we sought to present an effective protocol for the establishment of a porcine chronic HF model using closed-chest coronary balloon occlusion of the left circumflex artery (LCX), followed by rapid ventricular pacing induced with pacemaker implantation. Eight weeks later, the stem cells were administered by intramyocardial injection in the peri-infarct area. Then the infarct size, cell survival, and left ventricular function (including echocardiography, hemodynamic parameters, and electrophysiology) were evaluated. This study helps establish a stable preclinical large animal HF model for stem cell treatment.

We sought to establish a swine model of heart failure induced by left circumflex artery blockage and rapid pacing to test the effect and safety of intramyocardial administration of stem cells for cell-based therapies.

Establecer un modelo porcino de infarto de infarto post-miocardio insuficiencia cardíaca para el tratamiento de células madre

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of transplanted cells within the injured myocardium, limiting their therapeutic efficacy. Recently, the use of scaffolding biomaterials has gained attention for improving and maximizing stem cell therapy. The objective of this protocol is to introduce a simple and straightforward technique to transplant bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) using injectable hydroxyphenyl propionic acid (GH) hydrogels; the hydrogels are favorable as a cell delivery platform for cardiac tissue engineering applications due to their ability to be cross-linked in situ and high biocompatibility. We present a simple method to fabricate MSC-loading GH hydrogels (MSC/hydrogels) and evaluate their survival and proliferation in three-dimensional (3D) in vitro culture. In addition, we demonstrate a technique for intramyocardial transplantation of MSC/hydrogels in mice, describing a surgical procedure to induce myocardial infarction (MI) via left anterior descending (LAD) coronary artery ligation and subsequent MSC/hydrogels transplantation.

Stem cell-based therapy has emerged as an efficient strategy to repair injured cardiac tissues after myocardial infarction. We provide an optimal in vivo application for stem cell transplantation using gelatin hydrogels that are able to be enzymatically cross-linked.

Trasplante intramiocardio de hidrogeles inyectables msc-loading después de infarto de miocardio en un modelo murino

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of ...