Este protocolo es significativo ya que permite el estudio de los cambios hemodinámicos y fisiológicos antes, durante y después de la asfixia perinatal y el paro cardíaco. Debido a que este modelo incluye paro cardíaco, nos permite estudiar los factores relacionados con la reanimación cardiopulmonar neonatal y cómo afectan la fisiología y la hemodinámica. Este modelo proporciona información valiosa sobre los recién nacidos asfixiados.
Las observaciones arrojan luz sobre la fisiopatología del paro cardíaco, incluida la actividad eléctrica sin pulso. Esto extiende su aplicabilidad a otros grupos de pacientes. Este modelo es técnicamente desafiante y los experimentos deben realizarse en instalaciones experimentadas con investigaciones grandes y largas, preferiblemente grandes subpellets.
El protocolo debe ser estudiado en detalle. Me acompañarán para demostrar este procedimiento Ronnaug Solberg, Anne Lee Solevag y Sera Sebastian, una enfermera de quirófano, de nuestras instalaciones de investigación en la Universidad de Oslo. Antes de comenzar la intervención quirúrgica, prepare todo el equipo necesario y llene todos los catéteres con solución salina normal.
Anote la hora en que comienza la cirugía en el formulario de registro del caso o CRF. Esterilizar la piel del lechón anestesiado con cinco miligramos por mililitro de clorhexidina coloreada usando de tres a cinco esponjas quirúrgicas y cubrir con una cortina de apertura adhesiva. Haga una incisión cutánea de 2,5 centímetros de largo en el lado derecho del cuello del lechón y retraiga la piel en ambos lados de la incisión con retractores de párpados.
Luego, con la ayuda de pinzas arteriales, diseccione y exponga la vena yugular interna y coloque dos hilos de sutura de nylon de dos o tres cero debajo de la vena yugular para mantenerla estable. Sosteniendo una de las suturas en una mano y el catéter venoso central en la otra, inserte el catéter y retire la aguja. Enjuague con un mililitro de solución salina normal para confirmar la colocación correcta del catéter.
Ahora ate uno de los hilos de sutura que se usaron para sostener la vena alrededor de la vena y el catéter en el área donde el catéter está dentro de la vena. Cierre la piel con suturas absorbibles de cuatro ceros y conecte Fentanilo IV y una solución electrolítica equilibrada de carbohidratos al catéter venoso central. Usando un bisturí, haga una incisión de piel de 2,5 centímetros de largo en el lado izquierdo del cuello del lechón, un poco más medial que la incisión anterior en el lado derecho.
Luego retraiga la piel en ambos lados de la incisión usando retractores de párpados. Con la ayuda de fórceps arteriales, diseccionar y exponer la arteria carótida común medial al músculo esternocleidomastoideo. Estabilice la arteria carótida común colocando un par de hilos de sutura de nylon tres cero debajo de ella.
Sosteniendo una de las suturas en una mano y el catéter arterial central en la otra, inserte el catéter arterial central y retire la aguja. Luego ate uno de los hilos de sutura que sostienen la arteria alrededor de la arteria y el catéter en el área donde el catéter está dentro de la arteria. Después de confirmar la colocación correcta del catéter enjuagándolo con un mililitro de solución salina normal, asegure las alas del catéter a la piel con suturas absorbibles de cuatro ceros y cierre la piel.
A continuación, conecte el lechón al sistema invasivo de monitoreo de la presión arterial. Cubra el catéter con un apósito transparente y comience la adquisición de datos. Una vez que el catéter arterial central esté en su lugar, anote el tiempo de finalización de la cirugía en el CRF.
Anote el momento de inicio de la asfixia en el CRF junto con las mediciones fisiológicas del lechón. Inmediatamente antes de comenzar la asfixia, recoja muestras de sangre del lechón y detenga la administración de fentanilo IV. Para comenzar la asfixia, gire el dial de oxígeno en el ventilador mecánico al 100% y reduzca la velocidad del ventilador en 10 inflaciones por minuto.
Mientras cambia la manguera de oxígeno del ventilador al gas de asfixia, asegúrese de que la saturación de oxígeno del lechón se reduzca para determinar la inducción exitosa de asfixia. Después de continuar la asfixia durante 10 minutos, reduzca la tasa del ventilador en otras 10 inflaciones por minuto. A partir de este momento, después de 10 minutos y posteriormente cada cinco minutos hasta un paro cardíaco.
Realice un seguimiento del estado a base de ácido y observe las mediciones fisiológicas del lechón en el CRF. Continuar la asfixia hasta paro cardíaco. Reduzca la frecuencia del ventilador en 10 inflaciones por minuto cada 10 minutos y sujete el tubo endotraqueal o ETT con fórceps arteriales después de 30 minutos de asfixia.
Cuando la presión arterial media desciende por debajo de 20 milímetros de mercurio, comience la auscultación continua del corazón. Auscultar el corazón e informar al equipo cuando el latido del corazón se vuelve inaudible. Luego retire la abrazadera ETT si corresponde y configure la fracción apropiada de oxígeno inspirado y la configuración del ventilador según el protocolo.
Al mismo tiempo, vuelva a colocar la manguera de gas asfixiante del ventilador a la salida de oxígeno. Finalmente, extraiga muestras de sangre correspondientes al punto de tiempo del paro cardíaco mientras se prepara para la reanimación cardiopulmonar. Si sigue el Comité Internacional de Enlace sobre reanimación recomendado tres a uno RCP, ventile mecánicamente el lechón durante 30 segundos después del paro cardíaco.
Luego comience las compresiones torácicas y apunte a una relación de compresión torácica a ventilación de tres a uno. Use la técnica de dos pulgares y manos circulares para comprimir el pecho a una profundidad de un tercio del diámetro torácico y posterior y permitir el retroceso total del pecho. Trate de generar una presión arterial sistólica superior a 20 milímetros de mercurio.
Después de 30 segundos de compresiones torácicas administre adrenalina IV y repítala después de cada tres minutos de RCP para un máximo de cuatro dosis. Enjuague el catéter con un mililitro de solución salina normal después de cada administración de adrenalina. Determinar el retorno de la circulación espontánea o ROSC observando los trazados de la presión arterial y el ECG y confirmar el mismo mediante auscultación cardíaca.
Continúe los esfuerzos de reanimación hasta ROSC o por un máximo de 15 minutos. Si la reanimación es exitosa, tenga en cuenta el tiempo de ROSC, la duración de la RCP en segundos y el número de dosis de adrenalina administradas en el CRF. Si la RCP no tiene éxito dentro de los 15 minutos, detenga los esfuerzos de reanimación y registre la hora de la muerte.
Finalmente, después de ROSC, tome muestras de sangre y registros de CRF tan pronto como sea posible y continúe los registros como se describe en el manuscrito durante otras 9.5 horas. La presión arterial del lechón disminuyó gradualmente desde el comienzo de la asfixia y se convirtió en cero cuando ocurrió un paro cardíaco. La PA aumentó una vez que se logró ROSC antes de tomar algún tiempo para normalizarse nuevamente.
Los cambios en la fisiología del lechón durante la asfixia fueron claramente indicados por los cambios en la frecuencia cardíaca, la presión arterial media, el pH, la presión parcial de dióxido de carbono, el exceso de base y el lactato. Como era de esperar, la presión arterial media, el pH y el exceso de base disminuyeron durante la asfixia, mientras que la presión parcial de dióxido de carbono y lactato que significa la acidosis respiratoria y metabólica mixta aumentó. Sin embargo, los valores se normalizaron hacia el final del experimento.
Mantener una buena ventilación durante la reanimación cardiopulmonar y el muestreo correcto de datos son partes particularmente críticas de este protocolo. Este modelo neonatal ha proporcionado evidencia para el desarrollo de guías a través de la investigación sobre el uso de oxígeno suplementario y protocolos de reanimación. Además, se han investigado la fisiopatología, los biomarcadores y los nuevos métodos para el monitoreo hemodinámico.
