Questo protocollo è significativo in quanto consente lo studio dei cambiamenti emodinamici e fisiologici prima, durante e dopo l'asfissia perinatale e l'arresto cardiaco. Poiché questo modello include l'arresto cardiaco, ci consente di studiare i fattori legati alla rianimazione cardiopolmonare neonatale e come influenzano la fisiologia e l'emodinamica. Questo modello fornisce preziose informazioni sui neonati asfittici.
Le osservazioni fanno luce sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco, compresa l'attività elettrica senza polso. Ciò estende la sua applicabilità ad altri gruppi di pazienti. Questo modello è tecnicamente impegnativo e gli esperimenti dovrebbero essere eseguiti in strutture con esperienza con ricerche grandi e lunghe, preferibilmente grandi sottopellet.
Il protocollo deve essere studiato in dettaglio. Insieme a me nel dimostrare questa procedura ci saranno Ronnaug Solberg, Anne Lee Solevag e Sera Sebastian, un'infermiera di sala operatoria, delle nostre strutture di ricerca presso l'Università di Oslo. Prima di iniziare l'intervento chirurgico preparare tutte le attrezzature necessarie e riempire tutti i cateteri con soluzione salina normale.
Annotare l'ora in cui inizia l'intervento chirurgico sul modulo di registrazione del caso o CRF. Sterilizzare la pelle del maialino anestetizzato con cinque milligrammi per millilitro di clorexidina colorata usando da tre a cinque spugne chirurgiche e coprire con un drappo di apertura adesivo. Fare un'incisione cutanea lunga 2,5 centimetri sul lato destro del collo del maialino e ritrarre la pelle su entrambi i lati dell'incisione usando divaricatori palpebrali.
Successivamente, con l'aiuto di una pinza arteriosa, sezionare ed esporre la vena giugulare interna e posizionare due-tre-zero fili di sutura di nylon sotto la vena giugulare per mantenerla stabile. Tenendo una delle suture in una mano e il catetere venoso centrale nell'altra, inserire il catetere e ritirare l'ago. Sciacquare con un millilitro di soluzione salina normale per confermare il corretto posizionamento del catetere.
Ora legare uno dei fili di sutura che è stato utilizzato per tenere la vena intorno alla vena e il catetere nella zona in cui il catetere è all'interno della vena. Chiudere la pelle con suture a quattro zeri riassorbibili e collegare Fentanyl IV e una soluzione elettrolitica di carboidrati bilanciata al catetere venoso centrale. Usando un bisturi, praticare un'incisione cutanea lunga 2,5 centimetri sul lato sinistro del collo del maialino, leggermente più mediale rispetto alla precedente incisione sul lato destro.
Quindi ritrarre la pelle su entrambi i lati dell'incisione usando divaricatori palpebrali. Con l'aiuto di una pinza arteriosa, sezionare ed esporre l'arteria carotide comune mediale al muscolo sternocleidomastoideo. Stabilizzare l'arteria carotide comune posizionando un paio di fili di sutura a tre zero di nylon sotto di esso.
Tenendo una delle suture in una mano e il catetere arterioso centrale nell'altra, inserire il catetere arterioso centrale e ritirare l'ago. Quindi legare uno dei fili di sutura che tengono l'arteria intorno all'arteria e il catetere nell'area in cui il catetere si trova all'interno dell'arteria. Dopo aver confermato il corretto posizionamento del catetere lavandolo con un millilitro di soluzione salina normale, fissare le ali del catetere alla pelle con punti di sutura riassorbibili a quattro zeri e chiudere la pelle.
Quindi, collegare il maialino al sistema invasivo di monitoraggio della pressione arteriosa. Coprire il catetere con una medicazione trasparente e avviare l'acquisizione dei dati. Una volta che il catetere arterioso centrale è in posizione, annotare il tempo di fine dell'intervento chirurgico sul CRF.
Annotare il tempo di inizio dell'asfissia sul CRF insieme alle misurazioni fisiologiche del maialino. Immediatamente prima di iniziare l'asfissia, raccogliere campioni di sangue dal maialino e interrompere la somministrazione di Fentanil IV. Per iniziare l'asfissia, ruotare la manopola dell'ossigeno sul ventilatore meccanico al 100% e ridurre la velocità del ventilatore di 10 gonfiaggi al minuto.
Durante la commutazione del tubo dell'ossigeno sul ventilatore con il gas asfissia, assicurarsi che la saturazione di ossigeno del suinetto sia ridotta per accertare la corretta induzione dell'asfissia. Dopo aver continuato l'asfissia per 10 minuti, ridurre la velocità del ventilatore di altri 10 gonfiaggi al minuto. Da questo punto in poi, dopo 10 minuti e successivamente ogni cinque minuti fino all'arresto cardiaco.
Tieni traccia dello stato a base acida e annota le misurazioni fisiologiche del maialino lungo il CRF. Continuare l'asfissia fino all'arresto cardiaco. Ridurre la velocità del ventilatore di 10 gonfiaggi al minuto ogni 10 minuti e bloccare il tubo endotracheale o ETT con una pinza arteriosa dopo 30 minuti di asfissia.
Quando la pressione arteriosa media scende sotto i 20 millimetri di mercurio, inizia l'auscultazione continua del cuore. Auscultare il cuore e informare la squadra quando il battito cardiaco diventa inudibile. Quindi rimuovere il morsetto ETT se applicabile e impostare la frazione appropriata di ossigeno inspirato e le impostazioni del ventilatore secondo il protocollo.
Allo stesso tempo, riportare il tubo del gas asfissia sul ventilatore all'uscita dell'ossigeno. Infine, prelevare campioni di sangue corrispondenti al punto temporale dell'arresto cardiaco durante la preparazione per la rianimazione cardiopolmonare. Se seguendo il Comitato internazionale di collegamento sulla rianimazione raccomandato tre a uno CPR, ventilare meccanicamente il suinetto per 30 secondi dopo l'arresto cardiaco.
Quindi iniziare le compressioni toraciche e mirare a un rapporto compressione toracica / ventilazione di tre a uno. Utilizzare la tecnica dei due pollici e delle mani circolari per comprimere il torace a una profondità di un terzo del diametro toracico e posteriore e consentire il rinculo completo del torace. Mirare a generare una pressione arteriosa sistolica superiore a 20 millimetri di mercurio.
Dopo 30 secondi di compressioni toraciche somministrare adrenalina IV e ripeterla dopo ogni tre minuti di RCP per un massimo di quattro dosi. Lavare il catetere con un millilitro di soluzione salina normale dopo ogni somministrazione di adrenalina. Determinare il ritorno della circolazione spontanea o ROSC osservando i tracciati arteriosi e l'ECG e confermare lo stesso mediante auscultazione cardiaca.
Continuare gli sforzi di rianimazione fino a ROSC o per un massimo di 15 minuti. Se la rianimazione ha successo, annotare il tempo di ROSC, la durata della RCP in secondi e il numero di dosi di adrenalina somministrate nel CRF. Se la RCP non ha successo entro 15 minuti, interrompere gli sforzi di rianimazione e registrare l'ora della morte.
Infine, dopo ROSC, prelevare campioni di sangue e registrazioni CRF il prima possibile e continuare le registrazioni come descritto nel manoscritto per altre 9,5 ore. La pressione sanguigna del maialino è diminuita gradualmente dall'inizio dell'asfissia ed è diventata zero quando si è verificato l'arresto cardiaco. La pressione sanguigna è aumentata una volta raggiunto il ROSC prima di impiegare del tempo per normalizzarsi di nuovo.
I cambiamenti nella fisiologia del suinetto durante l'asfissia erano chiaramente indicati dai cambiamenti della frequenza cardiaca, dalla pressione arteriosa media, dal pH, dalla pressione parziale dell'anidride carbonica, dall'eccesso di base e dal lattato. Come previsto, la pressione arteriosa media, il pH e l'eccesso di base sono diminuiti durante l'asfissia, mentre la pressione parziale di anidride carbonica e lattato che indica l'acidosi respiratoria e metabolica mista è aumentata. Tuttavia, i valori si sono normalizzati verso la fine dell'esperimento.
Il mantenimento di una buona ventilazione durante la rianimazione cardiopolmonare e il corretto campionamento dei dati sono parti particolarmente critiche di questo protocollo. Questo modello neonatale ha fornito prove per lo sviluppo di linee guida attraverso la ricerca sull'uso di protocolli di ossigeno e rianimazione supplementari. Inoltre, sono stati studiati fisiopatologia, biomarcatori e nuovi metodi per il monitoraggio emodinamico.
