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Nous décrivons ici un faible coût, rapide, procédure de fixation contrôlée et uniforme à l'aide de paraformaldéhyde à 4% perfusé par le système vasculaire: à travers le cœur du rat pour obtenir la meilleure conservation possible du cerveau.
Le but de la fixation est de rapidement et uniformément préserver le tissu dans un état de vie, comme. En plaçant le tissu directement dans les œuvres de fixateur bien pour de petits morceaux de tissus, les plus grands spécimens, comme le cerveau intact poser un problème pour la fixation d'immersion parce que le fixateur ne parvient pas à toutes les régions du tissu à la même vitesse 5,7. Souvent, les changements en réponse à l'hypoxie commencer avant le tissu peut être conservé 12. L'avantage de perfusion directement fixateur à travers le système circulatoire est que le produit chimique peut rapidement atteindre tous les coins de l'organisme en utilisant le réseau naturel vasculaire. Afin de pouvoir utiliser le système circulatoire le plus efficacement possible, il faut prendre soin pour correspondre à des pressions physiologiques 3. Il est important de noter que les pressions physiologiques sont dépendantes des espèces utilisées. Techniques pour la fixation de perfusion varient en fonction du tissu à fixer et comment le tissu seront traitées après fixation. Dans cette vidéo,, Nous décrivons un faible coût, rapide, procédure de fixation contrôlée et uniforme à l'aide de paraformaldéhyde à 4% perfusé par le système vasculaire: à travers le cœur du rat pour obtenir la meilleure conservation possible du cerveau pour l'immunohistochimie. Le principal avantage de cette technique (vs systèmes gravitaires d'adduction), c'est que le système circulatoire est utilisé le plus efficacement possible.
1. Préparer fixateur
(Voir Fixatif table et tampons.)
2. Préparation des tampons de perfusion
(Voir Fixatif table et tampons.)
3. Préparer un appareil et d'anesthésie
4. Chirurgie perfusion
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5. Perfusion
6. Dissection 4,11
7. Post-fixation et de stockage
8. Les résultats représentatifs
Un premier indicateur de la réussite de la perfusion est la compensation des extrémités comme le nez, les oreilles, les pattes et les organes internes tels que le thymus et le foie (IHC mondiale).L'inspection brut du cerveau révèle le vide des vaisseaux sanguins du sang (blanc à l'apparence jaune pâle). Ce sera également vrai au sein des sections de tissus destinera pour la coloration et l'immunohistochimie. Le dernier indicateur de résultat de la perfusion est la condition de l'ultrastructure dans le tissu. 1,6,7,8
Préparer fixatif: |
Préparez le bouillon Paraformaldéhyde 8% |
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Préparer tampon phosphate 0,2 M de sodium, pH 7,4 |
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Préparer Fixatif paraformaldéhyde 4% |
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Préparer perfusion et tampons de stockage: |
Préparer Phosphate Buffered Saline, pH 7,4 |
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HEPES tampon Hanks Solution (HBHS) avec un pH de l'azoture de sodium 7,4 |
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Tableau 1. Préparation de fixateur et de tampons.
Figure 1. Appareil de perfusion avec des composants marqués.
Figure 2. Préparation de l'appareil de perfusion I. Commencez par la ligne de fixateur. Rincer le tube de bulles d'air et de remplir avec le tampon en mettant rapidement expulser et de retrait du tampon dans la seringue et par le biais de la ligne. Fermez la vanne sur la pointe d'aiguille hors tension. Placez la ligne de fixateur dans la bouteille de fixateur sans introduire de bulles d'air.
Figure 3. Préparation de l'appareil de perfusion II. 1. Ouvrir le robinet à l'extrémité de l'aiguille. 2. Tournez la vanne de tampon (bleu) pour positionner pour l'écoulement. 3. Rincer le tube de bulles d'air et de remplir avec le tampon en mettant rapidement expulser et de retrait du tampon avec la seringue. 4. Fermer le robinet à l'extrémité de l'aiguille. Placez le tube dans le flacon. Pression d'épreuve pour s'assurer que le système est scellé correctement par pompage jusqu'à l'ampoule manomètre et en observant le manomètre. L'appareil est maintenant prêt pour la technique de perfusion.
Figure 4. Appareil de perfusion en position pour la livraison de tampon.
Figure 5. Perfusion Chirurgie I. a) Faire une incision latérale à travers le tégument et la paroi abdominale. b) Faire une incision dans la membrane et couper à travers la membrane d'exposer le cœur. Faire des coupes parallèles de chaque côté des nervures jusqu'à la clavicule. c) serrer la pointe du sternum avec la pince hémostatique et placer la pince hémostatique sur la tête.
Figure 6. Chirurgie perfusion II. a) Passez l'aiguille de perfusion à travers le ventricule coupe dans l'aorte ascendante. b) Fixer lel'utilisation de seringues de perfusion un ensemble de pinces hémostatiques pour serrer le cœur. Un second ensemble de pince hémostatique une modification peut également être utilisé pour serrer l'aorte autour de la pointe de l'aiguille à éviter les fuites. L'aide de ciseaux iris faire une petite incision à l'extrémité postérieure du ventricule gauche.
Figure 7. Perfusion avec pompe tampon de l'ampoule manomètre pour créer une pression dans la ligne. Ouvrez la vanne (1) et le joindre à l'embout de l'aiguille. Il est essentiel de s'assurer qu'aucune bulle d'air sont introduits. Pomper l'ampoule à une pression manométrique de 80 mm de Hg et à maintenir cette pression pendant toute la période d'infusion tampon.
Figure 8. Perfusion avec fixateur fois tampon est presque terminé (200 ml) basculer la vanne de tampon (1) pour permettre le fixateur d'écoulement. La pression peut être augmenté progressivement jusqu'à unmaximale de 130 mm Hg.
I. Dissection Figure 9. A) d'enlever la tête en utilisant une paire de ciseaux. b) faire une incision dans la peau le long de la ligne médiane du cou au nez et à exposer le crâne. c) couper le muscle du cou restant de sorte que la base du crâne est exposé. Maintenez la tête de telle sorte que la grande ouverture dans la surface du crâne (foramen magnum) est accessible. Insérez soigneusement l'extrémité pointue d'une paire de ciseaux iris dans le foramen magnum et faire une coupe. Répéter la même manoeuvre pour le côté controlatéral. Utilisez les rongeurs pour déblayer le crâne autour du cervelet.
Figure 10. Dissection II. a) faire glisser soigneusement les ciseaux le long de la surface intérieure du crâne. Soulevez la pointe que vous coupez pour éviter d'endommager le cerveau. Répétez la même chose pour lescôté opposé. Utilisez rongeurs peau du crâne loin du cerveau. b) illustration avec le crâne et le cerveau enlevé exposés. c) utiliser une spatule pour couper les bulbes olfactifs et connexions nerveuses à l'endroit le plus antérieur du cerveau. Guider avec précaution le long de la pointe de spatule dessous du cerveau pour couper les connexions pour la facilité de supprimer. Enlever le cerveau et le placer dans un flacon de fixateur.
Notes complémentaires pour une chirurgie réussie:
Les auteurs n'ont rien à révéler.
Ce travail a été financé par le Centre pour les technologies de la communication neuronale (CNCT), un Centre de ressources P41 financée par l'Institut national d'imagerie biomédicale et de bio-ingénierie (NIBIB, P41 EB002030) et soutenu par le National Institutes of Health (NIH).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Équipement | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
Anesthésique: | |||
La kétamine / xylazine mélange (anesthésique peut varier selon le laboratoire / institution) | Ketaset | NDC 0856-2013-01 | Flacon de 10 ml |
Chirurgie: | |||
Pointe de l'aiguille, 27 x GA 1.25 " | Services du matériel | 25251 | |
Les grands ronds / ronds ciseaux courbes (environ 14,5 cm) | Outils belle science | 14519-14 | |
Droit Ciseaux Iris | Outils belle science | 14058-11 | |
Norme pincettes | Outils belle science | 11027-12 | |
Paire d'amende (Graefe) pince à épiler | Outils belle science | 11050-10 | |
1 pince hémostatique grandes courbes ou droites - (~ 19 cm) | surgicaltools.com | 17.21.51 | |
2 pinces hémostatiques standards - droite dentelées (14 cm) | Outils belle science | 13013-14 | |
1 pince hémostatique modifié (avec de calibre 15 trous déposée par l'intermédiaire de la pointe) | Outils belle science | 13013-14 | |
15-aiguille de calibre contondant ou d'olive-pointe (aiguille de perfusion) | Fisnar | 5601137 | |
Perfusion: | |||
Système HyPerfusion ou l'équivalent | |||
Saline tamponnée au phosphate, pH 7,4 | |||
Paraformaldéhyde 4% dans un tampon phosphate 0,1 M, pH 7,4 | |||
En verre peu profond ou un plateau en plastique, environ 10 "x 10" | |||
La glace concassée | |||
Bain-marie (37 ° C) | |||
Minuteur | |||
Seringue de 50 ml | Medline Industries | NPMJD50LZ | |
Dissection: | |||
Pennsylvanieir des standards pointus / mousses ciseaux droits (~ 12 cm) | Outils belle science | 14054-13 | |
Moyen rongeurs courbes ou droites (14-16 cm) ou des pinces os du crâne de déménagement | Outils belle science | 16020-14 | |
Droit Ciseaux Iris (~ 9 cm) | Outils belle science | 14058-11 | |
Micro-spatule (2 doubles "extrémités plates, l'une arrondie, un conique à 1/8") | Outils belle science | 10091-12 | |
Post-fixation et de stockage: | |||
Flacon de 50 ml en verre | |||
40 ml de HEPES-Buffered Hanks Solution (HBHS) avec de l'azoture de sodium (90 mg / l) |
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