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Techniques et d'améliorations du traitement cryofracture des échantillons biologiques et des nanomatériaux, pour examen par microscopie électronique à transmission de base sont décrites. Cette technique est une méthode préférée pour révéler caractéristiques ultrastructurales et les spécialisations des membranes biologiques et pour obtenir des données dimensionnelles et spatiales niveau ultrastructural en sciences des matériaux et produits de la nanotechnologie.
Cryo-fracture / gel de mordançage décrit un processus par lequel des spécimens, généralement biologique ou nanomatériaux dans la nature, sont gelés, fracturée, et reproduit pour générer un rapport carbone / platine "jeter" destiné à l'examen par microscopie électronique à transmission. Les échantillons sont soumis à des vitesses de congélation ultra-rapides, souvent en présence d'agents cryoprotecteurs pour limiter la formation de cristaux de glace, à la suite de la fracture de l'échantillon à la température de l'azote liquide refroidi sous vide poussé. La surface résultante est répliqué fracturé et stabilisé par l'évaporation de carbone et le platine à partir d'un angle qui confère une surface tridimensionnelle détaillée de la distribution. Cette technique s'est avérée particulièrement éclairante pour l'étude des membranes cellulaires et de leurs spécialisations et a considérablement contribué à la compréhension de la forme cellulaire de la fonction des cellules liées. Dans ce rapport, nous passons en revue les exigences de l'instrument et le protocole technique pour effectuergel-fracture, la nomenclature et les caractéristiques des plans de fracture associée, variations de la procédure conventionnelle, et les critères d'interprétation des images de fracture par congélation. Cette technique a été largement utilisée pour l'enquête ultrastructurale dans de nombreux domaines de la biologie cellulaire et est très prometteur comme une technique d'imagerie moléculaire pour émergents, nanotechnologies, matériaux et études scientifiques.
Le concept et l'application pratique de la transformation cryofracture des échantillons biologiques a été introduit par Steere 1 plus de la moitié il ya un siècle. L'appareil approprié début composants disparates en une unité autonome de travail 1. L'appareil initial a été modifié et affiné dans des instruments disponibles dans le commerce afin de répondre au besoin critique pour la manipulation à distance, le maintien de vide poussé, et l'évaporation du carbone et des métaux pour produire une réplique appropriée pour l'examen par microscopie électronique à transmission (figure 1 et figure 2).
L'instrument typique se compose d'une chambre à vide élevé avec la table d'échantillon et ayant des bras microtome peut réguler des débits d'azote liquide (figure 1). La chambre abrite aussi deux canons à électrons, pour stabiliser une évaporation de carbone positionné à un angle de 90 ° de la platine porte-objet et l'autre pour les platinum / carbone ombrage à un angle ajustable, 15 ° - 45 ° (Figure 2). L'alimentation de l'appareil est appliqué à faire fonctionner la pompe à vide et des panneaux électroniques réguler réglage de la température et de l'électron contrôle des armes à feu.
Conçu à l'origine comme un moyen de parvenir à une meilleure imagerie de virus, de gel-fracture gagné encore plus de popularité en tant que technique pour l'examen et l'analyse des membranes cellulaires et leurs spécialisations 2, 3. En effet, cette procédure a fait partie intégrante d'élucider les relations structure / fonction des cellules et des tissus et la plupart de ces études se tiennent comme des contributions classiques de biologie cellulaire et moléculaire 4-9. Le principal objectif et la justification du développement de la technique de congélation-fracture était de limiter les artefacts observables au microscope électronique la résolution découlant de la fixation chimique et traitement utilisé dans la microscopie conventionnelle d'électrons biologique. Ici le but est de limiter chimiquefixation et à congeler l'échantillon avec une vitesse suffisante et souvent en présence d'un cryoprotecteur afin de limiter la formation de cristaux de glace et d'autres objets de congélation. Plus récemment, cette technique a trouvé un regain d'intérêt des biologistes moléculaires et chercheurs en science des matériaux pour l'examen des nanoparticules et des nanomatériaux.
Images cryofracture et gel-gravure présentent un caractère tridimensionnel et sont parfois confondus avec des photographies au microscope électronique à balayage. Cependant, les préparations de fracture par congélation sont examinés par microscopie électronique à transmission et leur contribution majeure aux études morphologiques en haute définition est la représentation unique d'éléments de structure / fonction des membranes cellulaires. Cryo-fracture traitement est initié par congélation des cellules et des tissus avec une vitesse suffisante pour limiter la cristallisation de la glace et / ou avec l'utilisation d'agents cryoprotecteurs tels que le glycérol. Les échantillons sont ensuite fracturées sous vide et un représentantlica est généré par l'évaporation de carbone et le platine sur la surface fracturée. L'échantillon initial est digéré de la réplique qui est récupéré sur une grille standard de l'échantillon EM. Une autre erreur d'interprétation commune des images de fracture par congélation, c'est qu'ils représentent la surface des cellules. Toutefois, le principe de base de cryofracture est que les membranes biologiques sont répartis à travers la bicouche lipidique par le processus de rupture (figure 3). Ce processus dans les membranes biologiques donne deux faces de rupture, une qui indique l'organisation de la moitié de la membrane adjacente au cytoplasme, le PF-face, et qui montre la moitié de la valve bimoléculaire de la membrane qui est adjacente à la extracellulaire milieu, l'EF-face. La surface des cellules de véritables ne sont pas représentés dans les images de fracture par congélation, mais apparaissent uniquement lorsque l'étape supplémentaire ultérieure de gel de gravure en suivant la procédure de rupture est utilisé. Afin de graver efficacement des échantillons prélevés antérieurement fracturés pour révéler detai de surfacel, les échantillons doivent être congelés à un rythme rapide et sans unetchablecryoprotectant. La gravure de l'eau à partir de la surface de l'échantillon fracturé qui révèlent des caractéristiques sous-jacentes est réalisée en positionnant le bras microtome de refroidissement au-dessus de la platine porte-objet de créer un différentiel de température entre la phase de maintien de l'échantillon et le bras microtome de refroidissement qui amène l'eau à se sublimer à partir de la surface. Lorsque l'eau est sublimée à partir de la surface de l'échantillon fracturé lors de la manoeuvre de gravure par congélation, puis les aspects de surfaces réelles de cellules, la matrice extracellulaire, des structures cytosquelettiques, et des assemblages moléculaires peuvent être révélées à haute résolution. Ainsi gel fracture et le gel gravure ne sont pas des termes interchangeables mais reflète un processus par étapes dont la dernière peut-être pas nécessaire ou souhaitable en fonction des besoins de l'étude.
Après la cryofracture / gel de mordançage procédures, les surfaces fracturées sont soumis à l 'évaporation dirigéstive couches de carbone et de platine, afin de fournir un appui et d'imagerie à contraste de la réplique. Le / carbone imagerie évaporation du platine peut être unidirectionnelle ou rotatif et est accompli par résistance ou des canons à électrons. Observation unidirectionnelle à partir d'un angle connu, généralement de 30 ° - 45 °, est utile dans l'exercice de certains calculs morphométriques. Les échantillons qui ont été soumis à profondeur de gravure sont généralement rotatif ombre et les images résultantes de ces spécimens sont photographiquement inversés pour l'évaluation.
L'historique ainsi qu'un objectif actuel du / technique de gel-gravure cryofracture est de limiter la fixation et le traitement chimique spécimen objets qui sont associés à des procédures plus classiques de transmission de microscopie électronique. Cependant, cette technique présente un avantage substantiel dans sa capacité à conférer détail en trois dimensions, et donc de faciliter l'acquisition de données morphométriques dans biologique, la science des matériaux, et nspécimens anotechnology. Procédures cryofracture et gel-gravure sont complexes et à multiples facettes et certains aspects de son application sont personnalisés. Cette présentation offre une vue de l'enquête sur les principales caractéristiques du processus et le lecteur est renvoyé à des protocoles complets publiés 10, 11 afin de traiter les détails et personnaliser le processus pour les besoins de recherche spécifiques.
1 Préparation des spécimens biologiques pour Cryo-fracture / Gel-gravure
2. de congélation et de stockage des échantillons En avance cryofracturation
3 Fonctionnement de la cryofracture instrument et de traitement des échantillons
4. ultrastructurale examen de cryofracture / Répliques de gravure
Le principe clé de cryofracture l'interprétation des images est que des plans de fracture traversent la bicouche lipidique des membranes donnant deux faces de rupture, appelé par convention, le PF-face (plasma fracture-face) et EF-face (extracellulaire fracture-face) (Figure 3). Le PF-face est la moitié de la membrane bicouche lipidique adjacente au cytoplasme de la cellule et l'EF-face est la moitié de la membrane bicouche lipidique adjacent au milieu extracellulaire. La technique de cong?...
Dans les années suivantes de son introduction et la disponibilité commerciale, la lyophilisation fracture / procédures de gravure ont été largement utilisés pour les enquêtes de structure de la membrane biologique. En effet, les meilleurs points de vue de certains des spécialisations structurales de membranes ont été obtenus dans des préparations cryofracture / gravure. Ces études ont contribué non seulement à la compréhension de l'organisation structurale des membranes, mais aussi fourni des indicati...
The author has nothing to disclose.
This presentation was supported by a Clinical Innovator Award to JLC from the Flight Attendant Medical Research Institute and by the United States Environmental Protection Agency. Although the research described in this article has been funded wholly or in part by the United States Environmental Protection Agency through Cooperative Agreement CR83346301 with the Center for Environmental Medicine, Asthma, and Lung Biology at The University of North Carolina at Chapel Hill, it has not been subjected to the Agency’s required peer and policy review, and therefore does not necessarily reflect the views of the Agency and no official endorsement should be inferred. Mention of trade names or commercial products does not constitute endorsement or recommendation for use.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Balzers Freeze-fracture/freeze-etch plant | Balzers | BAF400T | |
Standard buffers | various suppliers | ||
standard aldehyde fixatives | various suppliers | ||
sodium dichromate | various suppliers | ||
sulfuric acid | various suppliers | ||
Disposable supplies for Platinum/Carbon Evaporation | Technotrade International | ||
Liquid nitrogen | various suppliers | ||
Freon | various suppliers | ||
Disposable supplies for electron microscopy | Electron Microscopy Sciences | ||
Transmission electron microscope | Carl Zeiss Inc. |
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