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Method Article
Cette étude décrit une méthode pour étendre la chitine dans une mousse par des techniques chimiques qui ne nécessitent aucun équipement spécialisé.
La chitine est un biopolymère sous-exprité, naturellement abondant, mécaniquement robuste et chimiquement résistant. Ces qualités sont souhaitables dans un adsorbant, mais la chitine n’a pas la surface spécifique nécessaire et sa modification implique des techniques et des équipements spécialisés. On y décrit une nouvelle procédure chimique pour étendre les flocons de chitine, dérivés de déchets de coquilles de crevettes, en mousses de surface plus élevée. Le processus repose sur l’évolution du gazH2 à partir de la réaction de l’eau avec le NaH piégé dans un gel de chitine. La méthode de préparation ne nécessite aucun équipement spécialisé. La diffraction des rayons X de la poudre et la N2-physisorption indiquent que la taille de la cristallite diminue de 6,6 nm à 4,4 nm et que la surface spécifique augmente de 12,6 ± 2,1 m2/g à 73,9 ± 0,2 m2/g. Cependant, la spectroscopie infrarouge et l’analyse thermogravimétrique indiquent que le processus ne modifie pas l’identité chimique de la chitine. La capacité d’adsorption spécifique de Cu de la chitine expansée augmente proportionnellement à la surface spécifique de 13,8 ± 2,9 mg/g à 73,1 ± 2,0 mg/g. Cependant, la capacité d’adsorption du Cu en tant que densité de surface reste relativement constante à une moyenne de 10,1 ± 0,8 atome/nm2, cequi ne suggère à nouveau aucun changement dans l’identité chimique de la chitine. Cette méthode offre les moyens de transformer la chitine en un matériau de surface plus élevée sans sacrifier ses propriétés souhaitables. Bien que la mousse de chitine soit décrite ici comme un adsorbant, elle peut être envisagée comme un support de catalyseur, un isolant thermique et un matériau structurel.
La chitine est un biopolymère mécaniquement robuste et chimiquement inerte, juste deprès la cellulose en abondance naturelle1. C’est le composant majeur de l’exosquelette des arthropodes et des parois cellulaires des champignons et des levures2. La chitine est similaire à la cellulose, mais avec un groupe hydroxyle de chaque monomère remplacé par un groupe acétylamine(Figure 1A,B). Cette différence augmente la force de liaison hydrogène entre les chaînes polymères adjacentes et donne à la chitine sa résilience structurelle caractéristique et son inertie chimique2,3. En raison de ses propriétés et de son abondance, la chitine a suscité un intérêt industriel et académique important. Il a été étudié comme un échafaudage pour la croissance tissulaire4,5,6, comme un composant dans les matériaux composites7,8,9,10,11, et comme un support pour les adsorbants et les catalyseurs11,12,13,14. Sa stabilité chimique, en particulier, rend la chitine attrayante pour les applications d’adsorption qui impliquent des conditions inhospitalières pour les adsorbants courants14. De plus, l’abondance des groupes amines fait de la chitine un adsorbant efficace pour les ions métalliques15. Cependant, la protonation des groupes amines dans des conditions acides réduit la capacité d’adsorption métallique de la chitine16. Une stratégie réussie consiste à introduire des sites d’adsorption plus résistants à la protonation17,18. Au lieu de cela, on décrit ici une méthode simple pour augmenter la surface spécifique et, par conséquent, le nombre de sites d’adsorption dans la chitine.
Graphique 1. Structure chimique. (A) cellulose, (B) chitine, (C) chitosane. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Malgré ses nombreuses utilisations potentielles, la chitine est sous-utilisée. Le traitement de la chitine est difficile en raison de sa faible solubilité dans la plupart des solvants. Une limitation clé de son utilisation dans la catalyse et l’adsorption est sa faible surface spécifique. Alors que les supports typiques en carbone et en oxyde métallique ont des surfaces spécifiques de l’ordre10 2-10 3 m2/g, les flocons de chitine commerciaux ont des surfaces de l’ordre de 10 m2/g19,20,21. Des méthodes pour étendre la chitine en mousses existent, mais elles reposent invariablement sur des températures et des pressions élevées, des acides et des bases forts, ou des équipements spécialisés qui représentent une barrière d’entrée importante5,21,22,23,24,25. De plus, ces méthodes tendent à désacétyler la chitine pour former du chitosane(Figure 1C),un biopolymère plus soluble et réactif5,25,26.
Ici, une méthode est décrite pour étendre la chitine en mousses solides, augmenter sa surface spécifique et sa capacité d’adsorption, et maintenir son intégrité chimique. La méthode repose sur l’évolution rapide du gaz à partir d’un gel de chitine et ne nécessite aucun équipement spécialisé. L’augmentation de la capacité d’adsorption de la chitine expansée est démontrée avec le Cu2+aqueux - un contaminant commun dans les eaux souterraines locales26.
Unité | Flocon soigné | Mousse cuite au four | Mousse lyophilisée | |
Cristallinité | % | 88 | 74 | 58 |
Taille du cristal | Nm | 6.5 | 4.4 | 4.4 |
Surface | m2/g | 12,6 ± 2,1 | 43,1 ± 0,2 | 73,9 ± 0,2 |
Absorption cu | mg/g | 13,8 ± 2,9 | 48,6 ± 1,9 | 73,1 ± 2,0 |
Absorption cu | atome/nm2 | 10,5 ± 2,8 | 10,7 ± 0,4 | 9,4 ± 0,3 |
Tableau 1. Résumé des propriétés des matériaux. Les mousses de chitine ont une cristallinité et une taille de cristal plus faibles que les flocons de chitine propres. Cependant, la surface spécifique et l’absorption de Cu des mousses de chitine sont proportionnellement plus élevées que celles des flocons de chitine soignés.
1. Préparation de la chitine expansée
Graphique 2. Préparation de mousse de chitine expansée. (A) La chitine initiale dans la solution LiCl/DMAc. (B) L’ajout de la boue NaH/DMAc. (C) La mousse de chitine après addition d’eau. (D) La mousse de chitine extraite de la fiole de réaction. (E) La mousse de chitine pendant le lavage à l’eau. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
2. Développement des isothermes d’adsorption
La chitine expansée présente la même morphologie quelle que soit la méthode de séchage. La figure 3 montre des images de flocons de chitine purs (Figure 3A1), de chitine expansée séchée au four (Figure 3B1) et de chitine expansée lyophilisée (Figure 3C3). Alors que les flocons soignés ont l’apparence de sable grossier, la mousse de chitine expansée a l’apparence d’un grain de maï...
La méthode proposée pour la fabrication de mousse de chitine permet la production de telles mousses sans avoir besoin d’équipement ou de techniques spécialisés. La production de la mousse de chitine repose sur la suspension d’hydrure de sodium dans un sol-gel de chitine. Le contact avec l’eau de l’atmosphère induit la gélification de la matrice de chitine et l’évolution de l’hydrogène gazeux par décomposition de l’hydrure de sodium. Par conséquent, les étapes critiques de la préparation sont (1...
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
La recherche a été parrainée par le Laboratoire de recherche de l’Armée du Commandement du développement des capacités de combat (numéro d’entente de coopération W911NF-15-2-0020). Toutes les opinions, constatations et conclusions, ou recommandations exprimées dans ce document sont celles des auteurs et ne reflètent pas nécessairement les points de vue du Laboratoire de recherche de l’Armée.
Nous remercions le Center for Advanced Materials Processing (CAMP) de l’Université technologique du Montana pour l’utilisation de certains des équipements spécialisés requis dans cette étude. Nous remercions également Gary Wyss, Nancy Oyer, Rick LaDouceur, John Kirtley et Katherine Zodrow pour leur assistance technique et leurs discussions utiles.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ammonium bicarbonate | Sigma-Aldrich | 9830 | NH4HCO3, ≥99.5 % |
Chitin | Sigma-Aldrich | C7170 | Pandalus borealis, practical grade |
Colorimeter | Hanna Instruments | HI83399-01 | Photometer for wastewater analysis |
Copper High Range Checker | Hanna Instruments | HI702 | Bicinchoninate colorimetric titration |
Copper nitrate hydrate | Sigma-Aldrich | 223395 | Cu(NO3)2 · 2.5 H2O, 98 % |
Dimethylacetamide (DMAc) | Sigma-Aldrich | 271012 | Anhydrous, 99.8 % |
IR Spectrophotometer | Thermo Nicolet | Nexus 670 | Fitted with an ATR cell |
Lithium chloride | Sigma-Aldrich | 310468 | LiCl, ≥99 % |
N2 Physisorption Apparatus | Micromeritics | Tristar II | |
Nitric acid | BDH | BDH7208-1 | HNO3, 0.1 N |
Scanning electron microscope | Zeiss LEO | 1430 VP | 15 kV, secondary electron detector, 29-31 mm working distance |
Sodium hydride | Sigma-Aldrich | 223441 | NaH, packed in mineral oil, 90 % |
Thermogravimetric analyzer | TA Instruments | Q500 | 100 ml/min N2, 10 °C/min to 800 °C |
Water Purification System | Millipore | Milli-Q | Type A water (18 MΩ) |
X-Ray Diffractometer | Rigaku | Ultima IV | Cu K-α radiation, 8.04 keV |
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