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Ce protocole décrit une méthode d’isolement des cellules endothéliales rétiniennes postnatales murines optimisées pour le rendement, la pureté et la viabilité cellulaires. Ces cellules conviennent aux approches de séquençage de nouvelle génération.
Les améliorations récentes du séquençage de nouvelle génération ont fait progresser les connaissances des chercheurs en biologie moléculaire et cellulaire, plusieurs études révélant de nouveaux paradigmes en biologie vasculaire. L’application de ces méthodes à des modèles de développement vasculaire nécessite l’optimisation des techniques d’isolement cellulaire à partir de tissus embryonnaires et postnataux. Le rendement, la viabilité et la pureté des cellules doivent tous être maximaux pour obtenir des résultats précis et reproductibles à partir d’approches de séquençage de nouvelle génération. Le modèle de vascularisation rétinienne de souris néonatale est utilisé par les chercheurs pour étudier les mécanismes du développement vasculaire. Les chercheurs ont utilisé ce modèle pour étudier les mécanismes de l’angiogenèse et la spécification du devenir artériel-veineux pendant la formation et la maturation des vaisseaux sanguins. L’application de techniques de séquençage de nouvelle génération pour étudier le modèle de développement vasculaire rétinien nécessite l’optimisation d’une méthode d’isolement des cellules endothéliales rétiniennes qui maximise le rendement, la viabilité et la pureté cellulaires. Ce protocole décrit une méthode d’isolement, de digestion et de purification des tissus murins de la rétine à l’aide du tri cellulaire activé par fluorescence (FACS). Les résultats indiquent que la population de cellules endothéliales CD31+/CD45- purifiées par FACS est fortement enrichie pour l’expression génique des cellules endothéliales et ne présente aucun changement de viabilité pendant 60 minutes après la FACS. Sont inclus les résultats représentatifs des approches de séquençage de nouvelle génération sur les cellules endothéliales isolées à l’aide de cette méthode, y compris le séquençage de l’ARN en vrac et le séquençage de l’ARN unicellulaire, démontrant que cette méthode d’isolement des cellules endothéliales rétiniennes est compatible avec les applications de séquençage de la prochaine génération. Cette méthode d’isolement des cellules endothéliales rétiniennes permettra des techniques de séquençage avancées pour révéler de nouveaux mécanismes de développement vasculaire.
La capacité à haut débit du séquençage des acides nucléiques via des approches de séquençage de nouvelle génération a grandement fait progresser les connaissances des chercheurs en biologie moléculaire et cellulaire. Ces techniques avancées comprennent le séquençage de l’ARN du transcriptome entier, le séquençage de l’ADN des régions ciblées pour identifier les polymorphismes mononucléotidiques (SNP), le séquençage de l’ADN des facteurs de transcription liés dans le séquençage de l’immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) ou les régions de chromatine ouvertes dans le dosage pour le séquençage de la chromatine accessible par la transposase (ATAC) et le séqu....
Les comités institutionnels de soin et d’utilisation des animaux de l’Université de Yale et de l’Université de Virginie ont approuvé toutes les expériences sur les animaux énumérées dans ce protocole.
1. Obtenir des yeux de souris pour l’isolement rétinien
La digestion du tissu rétinien et l’immunomarquage pour CD31 et CD45 donnent lieu à une population identifiable de cellules endothéliales CD31+/CD45- après vérification des cellules, des cellules individuelles et de la viabilité (figure 2A). L’immunocoloration CD45 est nécessaire pour éliminer les cellules CD31+/CD45+, qui comprennent les plaquettes et certains leucocytes21. Des contrôles doivent être effectués pour chaque expérience afin de montrer la.......
Ce protocole décrit une méthode d’isolement des cellules endothéliales à partir du tissu rétinien murin postnatal qui a été optimisée pour un nombre élevé de cellules, une pureté et une viabilité. La pureté cellulaire est obtenue par isolement FACS de populations de cellules endothéliales à partir de la suspension unicellulaire digérée par immunomarquage CD31+/CD45-. La qualité de l’isolement est quantifiée dans les essais de viabilité par coloration au bleu de trypan et expression génique par qP.......
Les auteurs n’ont pas de divulgations pertinentes.
Merci au Yale Flow Cytometry Facility, au Flow Cytometry Core Facility de l’Université de Virginie, au Yale Center for Genomic Analysis et au Genome Analysis and Technology Core de l’Université de Virginie pour leurs efforts, leur expertise et leurs conseils dans la contribution aux expériences présentées. Cette étude a été financée par des subventions des NIH à N.W.C. (T32 HL007224, T32 HL007284), S.C. (T32 HL007284), K.W. (R01 HL142650) et K.K.H. (R01 HL146056, R01 DK118728, UH3 EB025765).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
2 mL Eppendorf safe-lock tubes | USA Scientific | 4036-3352 | |
5 ml Falcon Test Tubes with Cell Strainer Snap Cap | Corning | 352235 | |
60 mm Non TC-treated Culture Dish | Corning | 430589 | |
APC Rat Anti-Mouse CD31 | BD Biosciences | 551262 | |
APC Rat IgG2a κ Isotype Control | BD Biosciences | 553932 | |
BD FACSChorus Software | BD Biosciences | FACSCHORUS | |
BD FACSMelody Cell Sorter | BD Biosciences | FACSMELODY | |
Collagenase Type II | Sigma-Aldrich | 234115 | |
Costar 48-well Clear TC-treated Multiple Well Plates, Individually Wrapped, Sterile | Corning | 3548 | |
D-Glucose | Gibco | A2494001 | |
Disposable Graduated Transfer Pipettes | Fisher Scientific | 12-711-9AM | |
Dissecting Pan Wax | Carolina | 629100 | |
Dissection scissors | Fine Science Tools | 14085-08 | |
Dissection Stereo Microscope M165 FC | Leica | M165FC | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | Gibco | 11965-052 | |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS) | Gibco | 14190144 | |
Eppendorf Flex-Tubes Microcentrifuge Tubes 1.5 mL | Sigma-Aldrich | 22364120 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio | 100-106 | |
Fine dissection forceps | Fine Science Tools | 11250-00 | |
Hank's Buffered Salt Solution (HBSS) | Gibco | 14175095 | |
HEPES (1M) | Gibco | 15630130 | |
iScript cDNA Synthesis Kit | Bio-Rad | 1708890 | |
Isoflurane, USP | Covetrus | 11695067772 | |
Isotemp General Purpose Deluxe Water Bath | Fisher Scientific | FSGPD20 | |
Primer: ActB_Forward: 5’- agagggaaatcgtgcgtgac -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: ActB_Reverse: 5’- caatagtgatgacctggccgt -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: CD31_Forward: 5’- gagcccaatcacgtttcagttt -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: CD31_Reverse: 5’- tccttcctgcttcttgctagct -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: CD45_Forward: 5’- gggttgttctgtgccttgtt -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: CD45_Reverse: 5’- ctggacggacacagttagca -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: VE-Cadherin_Forward: 5’- tcctctgcatcctcactatcaca -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Primer: VE-Cadherin_Reverse: 5’- gtaagtgaccaactgctcgtgaat -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Propidium iodide | Sigma-Aldrich | P4864 | |
RNeasy Plus Mini Kit | Qiagen | 74134 | |
Sorvall Legend Micro 21R Centrifuge, Refrigerated | ThermoFisher | 75002477 | |
SYBR-Green iTaq Universal SYBR Green Supermix | Bio-Rad | 172-5120 | |
Trypan Blue Solution | ThermoFisher | 15250061 | |
V450 Rat Anti-Mouse CD45 | BD Biosciences | 560501 | |
V450 Rat IgG2b, κ Isotype Control | BD Biosciences | 560457 |
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