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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

La purification, la dialyse et l’activation de son étiquette sont utilisées pour augmenter les rendements de l’expression des protéines solubles du domaine catalytique de la métalloprotéinase-3 à matrice active chez les bactéries. Les fractions protéiques sont analysées via des gels SDS-PAGE.

Résumé

Les métalloprotéinases matricielles (MMP) appartiennent à la famille des protéases de metzincine avec des rôles centraux dans la dégradation et le remodelage de la matrice extracellulaire (ECM), ainsi que dans les interactions avec plusieurs facteurs de croissance et cytokines. La surexpression de MMP spécifiques est responsable de plusieurs maladies telles que le cancer, les maladies neurodégénératives et les maladies cardiovasculaires. Les MMP ont récemment été au centre de l’attention en tant que cibles pour développer des thérapies capables de traiter les maladies corrélées à la surexpression de la MMP.

Pour étudier le mécanisme MMP en solution, des méthodes d’expression et de purification des protéines recombinantes plus faciles et plus robustes sont nécessaires pour la production de MMP actifs et solubles. Cependant, le domaine catalytique de la plupart des MMP ne peut pas être exprimé chez Escherichia coli (E. coli) sous forme soluble en raison de l’absence de mécanisme post-traductionnel, alors que les systèmes d’expression des mammifères sont généralement coûteux et ont des rendements plus faibles. Les corps d’inclusion MMP doivent subir le processus fastidieux et laborieux de purification et de repliement approfondis, réduisant considérablement le rendement des MMP en conformation native. Cet article présente un protocole utilisant des cellules Rosetta2(DE3)pLysS (ci-après dénommées R2DP) pour produire le domaine catalytique de la métalloprotéinase matricielle-3 (MMP-3cd), qui contient une étiquette His-terminalE N suivie d’un pro-domaine (Hisx6-pro-MMP-3cd) pour une utilisation dans la purification d’affinité. Les cellules R2DP améliorent l’expression des protéines eucaryotes grâce à un plasmide résistant au chloramphénicol contenant des codons normalement rares dans les systèmes d’expression bactérienne. Par rapport à la lignée cellulaire traditionnelle de choix pour l’expression des protéines recombinantes, BL21 (DE3), la purification à l’aide de cette nouvelle souche a amélioré le rendement en Hisx6-pro-MMP-3cd purifié. Lors de l’activation et du dessalement, le domaine pro est clivé avec le N-terminal His-tag, fournissant un MMP-3cd actif pour une utilisation immédiate dans d’innombrables applications in vitro . Cette méthode ne nécessite pas d’équipement coûteux ou de protéines de fusion complexes et décrit la production rapide de MMP humains recombinants chez les bactéries.

Introduction

La plupart des protéines eucaryotes complexes subissent des modifications post-traductionnelles élaborées après leur expression, nécessitant un repliement des protéines hautement assisté et des cofacteurs pour être fonctionnels1. La production de grandes quantités de protéines humaines solubles dans un hôte bactérien reste un défi important en raison des coûts élevés et du manque de méthodes d’expression et de purification robustes, même pour des expériences de laboratoire à plus petite échelle2,3. Les MMP, des endopeptidases humaines de grand poids moléculaire, sont généralement exprim....

Protocole

1. Expression MMP

  1. Clonage et transformation de pET-3a-Hisx6-pro-MMP-3cd en cellules R2DP
    1. Digérer le plasmide pET-3a (voir le tableau des matériaux) avec les enzymes de restriction NdeI et BamHI dans digest buffer (voir le tableau des matériaux). Dans un volume de réaction total de 40 μL, ajouter 4 μL de tampon de digestion, 33 μL de 100 ng/μL de plasmide et 1,5 μL de chaque enzyme de restriction et laisser la réaction se poursuivre pendant environ 2 h jusqu’à son achèvement à 37 °C.
    2. Effectuez une réaction PCR sur la séquence MMP-3cd pour insérer une étiquette His-terminalE N. Utilisez 25 μ....

Résultats

Lors de l’exécution d’échantillons sur SDS-PAGE, parce que la protéine est exprimée sous la forme de corps d’inclusion insolubles, les fractions lysées et soniquées doivent contenir peu ou pas d’extrait Hisx6-pro-MMP-3cd, car la protéine n’a pas encore été résolubilisée dans l’urée. La figure 3 compare les fractions d’élution de purification His-tag de Hisx6-pro-MMP-3cd à partir de cellules BL21(DE3) et de cellules R2DP. Les fractions d’élution ont été regrou.......

Discussion

La production à grande échelle de MMP solubles, humains et recombinants reste une tâche difficile. Les cellules de mammifères peuvent exprimer des MMP fonctionnels à des coûts élevés et de longs temps d’attente, tandis que E. coli produit rapidement de grandes quantités de corps d’inclusion MMP qui doivent être purifiés et repliés11,16. Les cellules R2DP augmentent considérablement le rendement des corps d’inclusion MMP, permettant un .......

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Les auteurs aimeraient remercier le Dr Evette Radisky et Alexandra Hockla de la Mayo Clinic de Jacksonville, en Floride, pour avoir fourni le plasmide pET-3a-pro-MMP-3cd comme modèle de clonage du gène Hisx6pro-MMP-3cd, ainsi que le Dr Paul Hartley du Nevada Genomics Center de l’Université du Nevada, Reno, pour le séquençage de l’ADN. Les auteurs aimeraient également remercier Cassandra Hergenrader pour avoir aidé à une partie de l’expression des protéines. M.R.-S. tient à remercier la subvention NIH-P20 GM103650-COBRE Integrative Neuroscience et le prix UNR R&D mICRO SEED Grant Award.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
0.22 µm sterile filterSigma AldrichSLGP033RSUsed to remove some contaminants from the protein extract before purification, and prevent the Ni-NTA column from clogging
1 L Erlenmeyer flasksThermo Fisher ScientificS76106Fn/a
1 L glass bottlesThermo Fisher Scientific06-414-1Dn/a
1.5 mL microfuge tubesThermo Fisher Scientific02-682-002n/a
15 mL conical tubesThermo Fisher Scientific339650n/a
18 G, 1-in. beveled needleAmazonB07S7VBHM2Used in combination with the dialysis casette
2 mL desalting columnThermo Fisher Scientific89890Removes APMA following activation
2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid (MES)Thermo Fisher ScientificAAA1610422n/a
250 mL conical bottle cushionsThermo Fisher Scientific05-538-53AStabilize conical bottles during large-volume centrifugation
250 mL conical bottlesThermo Fisher Scientific05-538-53n/a
400 mL stirred cellSigma AldrichUFSC40001Re-concentrates a much larger volume than the centrifugal filter unit. Rosetta2(DE3)pLysS cells produce high volumes of protein that may exceed the 15 mL limit of the centrifugal filter unit
4-aminophenylmercuric acetate (APMA)Sigma AldrichA9563-5GActivates MMP-3 by cleaving the propeptide
5 mL syringeThermo Fisher ScientificNC0829167Used in combination with the dialysis casette
50 mL conical tubesThermo Fisher Scientific339650Used for storage in many purification steps
50 mL re-concentration tubeSigma AldrichUFC901024DUsed for re-concentrating protein samples after dialysis or removing contaminants
AgarThermo Fisher ScientificBP1423-500Buffer ingredient that solidifies autoclaved LB media upon cooling
AmpicillinThermo Fisher ScientificBP1760-25Antibiotic used with pET3a vector; used at 100 µg/mL in LB media
BamHINEBR3136SRestriction enzyme to be used with the pET3a vector
Calcium chloride (CaCl2)Thermo Fisher Scientific600-30-23The calcium ion stabilizes MMP structure
Cell spreadersThermo Fisher Scientific50-189-7544Can be used to spread cells across a petri dish after transformation
ChloramphenicolThermo Fisher Scientific22-055-125GMAntibiotic used with pET3a vector; used at 34 µg/mL in LB media
Dialysis Buffer 1n/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 150 mM NaCl, 10 mM CaCl2, 1 µM ZnCl2, 4 M Urea.
Dialysis Buffer 2n/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 150 mM NaCl, 10 mM CaCl2, 1 µM ZnCl2, 2 M Urea.
Dialysis Buffer 3n/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 150 mM NaCl, 10 mM CaCl2 , 1 µM ZnCl2.
Dialysis clipsThermo Fisher Scientific68011Used in combination with snakeskin dialysis tubing
Dialysis tubingThermo Fisher Scientific88243Alternative dialysis method that holds much larger sample volumes, but with higher risk of sample loss
Digest bufferNEBB7204SBuffer used in digesting the pET3a vector
Disposable cuvettesThermo Fisher Scientific21-200-257Used to measure the bacterial culture OD during growth and expression
Dithiothreitol (DTT)Thermo Fisher ScientificD107125GAssists with protein denaturation by reducing any disulfide bonds
DNA assembly mixNEBE2621SUsed to ligate the Hisx6-pro-MMP-3cd PCR product and digested pET3a vector
DNase INEBM0303SEndonuclease for degrading unfavorable DNA contaminants that could later affect protein purification
EthanolThermo Fisher ScientificA995-4n/a
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)Thermo Fisher ScientificJ15694-AEUsed in denaturation. Prevents oxidation and subsequent formation of disulfide bonds
Gel recovery kitPromegaA9281Isolates and purifies DNA from agarose gels
GlycerolThermo Fisher ScientificG33-500Used for making glycerol stocks, which are frozen at -80 °C
Gravity flow columnBioRad7321010Used for Ni-NTA purification of recombinantly His-tagged proteins
Guanidine hydrochloride (GdnHCl)Thermo Fisher ScientificAAA135430BSecond chaotropic agent used for disrupting protein secondary structure.
High-transformation efficiency cellsNEBC2987High-transformation efficiency cells with greater chance of success for cloning the N-terminal His-tag into the pET3a-pro-MMP-3cd construct
HT Elution Buffern/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 50 mM NaCl, 6 M urea, 250 mM imidazole. Adjust pH to 7.4
HT Equilibration Buffern/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 50 mM NaCl, 6 M urea. Adjust pH to 7.4
HT Regeneration Buffern/an/a20 mM MES, 0.1 M NaCl. Adjust pH to 5.0
HT Wash Buffern/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 50 mM NaCl, 6 M urea, 25 mM imidazole. Adjust pH to 7.4
Hydrochloric acid (HCl)Thermo Fisher ScientificA144C-212Used to pH buffers
ImidazoleThermo Fisher ScientificAAA1022122Mimics the histidine side group. Used to separate non-specifically binding proteins from the his-tagged target protein
Inclusion Body Buffern/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 1 mM EDTA, 100 mM NaCl, 5 mM DTT, 2% v/v Triton X 100, 0.5 M Urea. Adjust pH to 8.0
Isopropyl-ß-D-thiogalactopyranoside (IPTG)Thermo Fisher ScientificFERR0392A reagent that induces target gene expression in pET3a. Make 0.5 mL 1 M aliquots, filter sterilize and store in -20 °C
LB Amp CamR median/an/aTo be poured into a sterible 1 L bottle or 1 L flask. For 1 L, add 25 g LB Broth. Sterilize by autoclaving. Once cooled to below 50 °C, add ampicillin to 100 µg/mL and chloramphenicol to 34 µg/mL
LB Amp CamR platesn/an/aTo be poured into sterile petri dishes. Pour until the petri dish lid is completely covered. 1 L of media yields 40-60 plates. For 1 L: 25 g LB Broth, 16 g Agar. Sterilize by autoclaving. Once cooled to below 50 °C, add ampicillin to 100 µg/mL and chloramphenicol to 34 µg/mL
LB BrothThermo Fisher ScientificBP1426-2Pre-mixed with tryptone, yeast extract, and sodium chloride
Lysis Buffern/an/a50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 1 mM EDTA, 100 mM NaCl, 0.133 g/mL lysozyme, 0.49% v/v Triton X-100. Adjust pH to 8.0
LysozymeMP Biomedicals195303Used in protein extraction. Enzyme that lyses bacterial cell walls
Miniprep kitPromegaA1330If successful, extracts the pET3a-pro-MMP-3cd construct from transformants
NdeINEBR0111SRestriction enzyme to be used with the pET3a vector
Ni-NTA resinThermo Fisher ScientificPI88221Used to bind recombinant his-tagged proteins. This strong interaction can be displaced with higher concentrations of imidazole
PCR mixNEBM0492SA PCR reagent for inserting an N-terminal his-tag into the pET3a-pro-MMP-3cd vector
pET plasmidAddgenen/aThe pET3a vector offers ampicillin resistance, inducible expression of a target gene, and sequencing with T7 primers
Petri dishesVWR25384-342Used for plating transformants on LB agar media
R2DP cellsNovagen714033BL21 derivatives with enhanced expression of eukaryotic proteins. Contain tRNAs of codons found to be rare in e. coli
SOC growth mediaNEBB9020SNon-selective growth media for rapid growth during transformation
Sodium chloride (NaCl)Thermo Fisher ScientificBP358-1Used in buffers and helps with protein stability
Sodium deoxycholateThermo Fisher ScientificPI89905Detergent used in protein extraction. Lyses cell walls
Solubilization Buffern/an/a20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 50 mM NaCl, 10 mM DTT, 6 M Urea. Adjust pH to 8.0
Tris baseThermo Fisher ScientificBP152-1Common buffer used in the physiological pH range. Temperature-sensitive
Triton X-100Thermo Fisher ScientificM1122980101Detergent used for cell lysis
UreaThermo Fisher ScientificAAJ75826A7First chaotropic agent for disrupting protein secondary structure
Zinc chloride (ZnCl2)Thermo Fisher ScientificAAA162810EStabilizes MMP structure. The zinc ion is found in the catalytic site of MMP-3

Références

  1. Portolano, N., et al. Recombinant protein expression for structural biology in HEK 293F suspension cells: A novel and accessible approach. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (92), e51897 (2014).
  2. Subedi, G. P., Johnson, R. W., Moniz, H. A., Moremen, K. W., Barb, A.

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