Les auteurs tiennent à remercier Eugenio Vivas, Kurt Heungens, Eric Martens, Charles Cowles, Darby sucre, Eric Stabb, et Todd Ciche pour leurs contributions à l&#39;élaboration de ce protocole et les outils utilisés. KEM et JMC ont été pris en charge par National Institutes of Health (NIH) Prix National Research Service T32 (AI55397 &quot;Microbes en matière de santé et de la maladie&quot;). JMC a été soutenue par un National Science Foundation (NSF) Bourse de recherche doctorale. Ce travail a été soutenu par des subventions de la National Science Foundation (IOS-0920631-0950873 et IOS).

<ol>
	<li>Holterman, M., van der Wurff, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phylum-wide+analysis+of+SSU+rDNA+reveals+deep+phylogenetic+relationships+among+nematodes+and+accelerated+evolution+toward+crown+clades.">Phylum-wide analysis of SSU rDNA reveals deep phylogenetic relationships among nematodes and accelerated evolution toward crown clades.</a> Mol. Biol. Evol. 23, 1792-1800 (2006).</li><li>Lambshead, P. J. D., Boucher, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Marine+nematode+deep-sea+biodiversity+-+hyperdiverse+or+hype.">Marine nematode deep-sea biodiversity - hyperdiverse or hype.</a> J. Biogeogr. 30, 475-485 (2003).</li><li>Poinar, G. O. J., Thomas, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Significance+of+Achromobacter+nematophilus+Poinar+and+Thomas+(Achromobacteraceae:+Eubacteriales)+in+the+development+of+the+nematode,+DD-136+(Neoaplectana+sp.+Steinernematidae).">Significance of Achromobacter nematophilus Poinar and Thomas (Achromobacteraceae: Eubacteriales) in the development of the nematode, DD-136 (Neoaplectana sp. Steinernematidae).</a> Parasitol. 56, 385-390 (1966).</li><li>Herbert, E. E., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Friend+and+foe:+the+two+faces+of+Xenorhabdus+nematophila.">Friend and foe: the two faces of Xenorhabdus nematophila.</a> Nat. Rev. Microbiol. 5, 634-646 (2007).</li><li>Kaya, H. 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C., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Steinernema+carpocapsae+intestinal+vesicle+contains+a+subcellular+structure+with+which+Xenorhabdus+nematophila+associates+during+colonization+initiation.">The Steinernema carpocapsae intestinal vesicle contains a subcellular structure with which Xenorhabdus nematophila associates during colonization initiation.</a> Cell. Microbiol. 7, 1723-1735 (2005).</li><li>Snyder, H. A., Stock, S. P., Kim, S. K., Flores-Lara, Y., Forst, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+insights+into+the+colonization+and+release+process+of+Xenorhabdus+nematophila+and+the+morphology+and+ultrastructure+of+the+bacterial+receptacle+of+its+nematode+host,+Steinernema+carpocapsae.">New insights into the colonization and release process of Xenorhabdus nematophila and the morphology and ultrastructure of the bacterial receptacle of its nematode host, Steinernema carpocapsae.</a> Appl. Environ. Microbiol. 73, 5338-5346 (2007).</li><li>Abebe, E., Abebe-Akele, F., Morrison, J., Cooper, V., Thomas, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+insect+pathogenic+symbiosis+between+a+Caenorhabditis+and+Serratia.">An insect pathogenic symbiosis between a Caenorhabditis and Serratia.</a> Virulence. 2, 158-161 (2011).</li><li>Abebe, E., Jumba, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+entomopathogenic+Caenorhabditis+briggsae.">An entomopathogenic Caenorhabditis briggsae.</a> J. Exp. Biol. 213, 3223-3229 (2010).</li><li>Torres-Barragan, A., Suazo, A., Buhler, W. G., Cardoza, Y. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+on+the+entomopathogenicity+and+bacterial+associates+of+the+nematode+Oscheius+carolinensis.">Studies on the entomopathogenicity and bacterial associates of the nematode Oscheius carolinensis.</a> Biol. Control. 59, 123-129 (2011).</li><li>Ye, W. M., Torres-Barragan, A., Cardoza, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oscheius+carolinensis+n.+sp+(Nematoda:+Rhabditidae),+a+potential+entomopathogenic+nematode+from+vermicompost.">Oscheius carolinensis n. sp (Nematoda: Rhabditidae), a potential entomopathogenic nematode from vermicompost.</a> Nematology. 12, 121-135 (2010).</li><li>Zhang, C., Liu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterorhabditidoides+chongmingensis+gen.+nov.,+sp.+nov.+(Rhabditida:+Rhabditidae),+a+novel+member+of+the+entomopathogenic+nematodes.">Heterorhabditidoides chongmingensis gen. nov., sp. nov. (Rhabditida: Rhabditidae), a novel member of the entomopathogenic nematodes.</a> J. Invertebr. Pathol. 98, 153-168 (2008).</li><li>Martens, E. C., Heungens, K., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+colonization+events+in+the+mutualistic+association+between+Steinernema+carpocapsae+nematodes+and+Xenorhabdus+nematophila+bacteria.">Early colonization events in the mutualistic association between Steinernema carpocapsae nematodes and Xenorhabdus nematophila bacteria.</a> J. Bacteriol. 185, 3147-3154 (2003).</li><li>Ciche, T. A., Ensign, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=For+the+insect+pathogen,+Photorhabdus+luminescens,+which+end+of+a+nematode+is+out.">For the insect pathogen, Photorhabdus luminescens, which end of a nematode is out.</a> Appl. Environ. Microbiol. 69, 1890-1897 (2003).</li><li>Ciche, T. A., Kim, K. S., Kaufmann-Daszczuk, B., Nguyen, K. C., Hall, D. 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S., Kaufmann-Daszczuk, B., Kim, K. S., Mallon, S., Ciche, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photorhabdus+phase+variants+express+a+novel+fimbrial+locus,+mad,+essential+for+symbiosis.">Photorhabdus phase variants express a novel fimbrial locus, mad, essential for symbiosis.</a> Mol. Microbiol. 77, 1021-1038 (2010).</li><li>Martens, E. C., Russell, F. M., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+Xenorhabdus+nematophila+metabolic+mutants+yields+insight+into+stages+of+Steinernema+carpocapsae+nematode+intestinal+colonization.">Analysis of Xenorhabdus nematophila metabolic mutants yields insight into stages of Steinernema carpocapsae nematode intestinal colonization.</a> Mol. Microbiol. 51, 28-45 (2005).</li><li>Sugar, D. R., Murfin, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phenotypic+variation+and+host+interactions+of+Xenorhabdus+bovienii+SS-2004,+the+entomopathogenic+symbiont+of+Steinernema+jollieti+nematodes.">Phenotypic variation and host interactions of Xenorhabdus bovienii SS-2004, the entomopathogenic symbiont of Steinernema jollieti nematodes.</a> Env. Microbiol. 14, 924-939 (2012).</li><li>Cowles, C. E., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Xenorhabdus+nematophila+nilABC+genes+confer+the+ability+of+Xenorhabdus+spp.+to+colonize+Steinernema+carpocapsae+nematodes.">The Xenorhabdus nematophila nilABC genes confer the ability of Xenorhabdus spp. to colonize Steinernema carpocapsae nematodes.</a> J. Bacteriol. 190, 4121-4128 (2008).</li><li>Heungens, K., Cowles, C. E., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Xenorhabdus+nematophila+genes+required+for+mutualistic+colonization+of+Steinernema+carpocapsae+nematodes.">Identification of Xenorhabdus nematophila genes required for mutualistic colonization of Steinernema carpocapsae nematodes.</a> Mol. Microbiol. 45, 1337-1353 (2002).</li><li>Goetsch, M., Owen, H., Goldman, B., Forst, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+the+PixA+inclusion+body+protein+of+Xenorhabdus+nematophila.">Analysis of the PixA inclusion body protein of Xenorhabdus nematophila.</a> J. Bacteriol. 188, 2706-2710 (2006).</li><li>Bhasin, A., Chaston, J. M., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutational+Analyses+Reveal+Overall+Topology+and+Functional+Regions+of+NilB,+a+Bacterial+Outer+Membrane+Protein+Required+for+Host+Association+in+a+Model+of+Animal-Microbe+Mutualism.">Mutational Analyses Reveal Overall Topology and Functional Regions of NilB, a Bacterial Outer Membrane Protein Required for Host Association in a Model of Animal-Microbe Mutualism.</a> J. Bacteriol. 194, 1763-1776 (2012).</li><li>Ciche, T. A., Goffredi, S. K., Reddy, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Methods in General and Molecular Microbiology. , 394-419 (2007).</li><li>Goodrich-Blair, H., Clarke, D., Grewal, P. S., Ciche, T. A., Stock, S. 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Bacteriol. 185, 3678-3682 (2003).</li><li>Vivas, E. I., Goodrich-Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Xenorhabdus+nematophilus+as+a+model+for+host-bacterium+interactions:+rpoS+is+necessary+for+mutualism+with+nematodes.">Xenorhabdus nematophilus as a model for host-bacterium interactions: rpoS is necessary for mutualism with nematodes.</a> J. Bacteriol. 183, 4687-4693 (2001).</li><li>White, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+obtaining+infective+nematode+larvae+from+cultures.">A method for obtaining infective nematode larvae from cultures.</a> Science. 66, 302-303 (1927).</li><li>Ciche, T. A., Ensign, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=For+the+insect+pathogen+Photorhabdus+luminescens,+which+end+of+a+nematode+is+out.">For the insect pathogen Photorhabdus luminescens, which end of a nematode is out.</a> Appl. Environ. Microbiol. 69, 1890-1897 (2003).</li><li>Sicard, M., Brun, N. L. e. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+native+Xenorhabdus+on+the+fitness+of+their+Steinernema+hosts:+contrasting+types+of+interaction.">Effect of native Xenorhabdus on the fitness of their Steinernema hosts: contrasting types of interaction.</a> Parasitol. Res. 91, 520-524 (2003).</li><li>Lambertsen, L., Sternberg, C., Molin, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mini-Tn7+transposons+for+site-specific+tagging+of+bacteria+with+fluorescent+proteins.">Mini-Tn7 transposons for site-specific tagging of bacteria with fluorescent proteins.</a> Environ. Microbiol. 6, 726-732 (2004).</li><li>Miller, W. G., Leveau, J. H., Lindow, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+gfp+and+inaZ+broad-host-range+promoter-probe+vectors.">Improved gfp and inaZ broad-host-range promoter-probe vectors.</a> Mol. Plant Microbe Int. 13, 1243-1250 (2000).</li><li>Teal, T. K., Lies, D. P., Wold, B. J., Newman, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiometabolic+stratification+of+Shewanella+oneidensis+biofilms.">Spatiometabolic stratification of Shewanella oneidensis biofilms.</a> Appl. Environ. Microbiol. 72, 7324-7330 (2006).</li><li>Bao, Y., Lies, D. P., Fu, H., Roberts, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+Tn7-based+system+for+the+single-copy+insertion+of+cloned+genes+into+chromosomes+of+Gram-negative+bacteria.">An improved Tn7-based system for the single-copy insertion of cloned genes into chromosomes of Gram-negative bacteria.</a> Gene. 109, 167-168 (1991).</li><li>Woodring, J. L., Kaya, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Steinernematid+and+Heterorhabditid+Nematodes:+A+Handbook+of+Biology+and+Techniques.">Steinernematid and Heterorhabditid Nematodes: A Handbook of Biology and Techniques.</a> Southern Cooperative Series Bulletin 331. , (1988).</li></ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Le protocole décrit ici fournit une méthode pour la détection optique de bactéries dans un hôte de nématodes (Figure 1). Cette méthode tire avantage de la transparence optique des nématodes et la capacité de bactéries étiquettes par fluorescence, permettant l&#39;analyse in vivo des bactéries à l&#39;intérieur de l&#39;hôte de nématodes (Figure 3). Plus précisément, cette approche identifie la localisation bactérienne au sein de son hôte. En comptan...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires (optionnel) </td></tr><tr><td> Agar lipides (Stérile) </td><td></td><td></td><td> 8 grammes de bouillon de nutriment, 15 grammes d&#39;agar, 5 grammes d&#39;extrait de levure, 890 ml d&#39;eau, 10 ml 0,2 g / ml de MgCl2. 6H 2 0, 96 ml d&#39;une solution de sirop de maïs *, 4 * ml d&#39;huile de maïs Incorporer les médias, tout en versant des plaques * Ajouter ingrédient stérile après autoclavage </td></tr><tr><td> Solution de sirop de maïs (Stérile) </td><td></td><td></td><td> 7 ml de sirop de maïs, 89 ml d&#39;eau mélange à l&#39;autoclave </td></tr><tr><td> Solution Egg </td><td></td><td></td><td> 16,6 ml d&#39;hypochlorite de sodium à 12%, 5 ml de KOH 5M, 80 ml d&#39;eau </td></tr><tr><td> Lysogénie Bouillon (Stérile) </td><td></td><td></td><td> 5 grammes d&#39;extrait de levure, 10 g de tryptone, 5 grammes de sel, 1 L d&#39;eau mélange à l&#39;autoclave </td></tr><tr><td> Micro centrifuger </td><td> Pêcheur </td><td> 13-100-675 </td><td> Toute microcentrifugeuse qui détient microtubes travaillera </td></tr><tr><td> Centrifuger </td><td> Beckman </td><td> 366802 </td><td> Grande centrifugeuse de table qui contient 15 ml et 50 ml tubes coniques </td></tr><tr><td> Stérile 60 mm X 15 mm Boîte de Pétri </td><td> Pêcheur </td><td> 0875713 </td><td></td></tr><tr><td> 50 tubes à centrifuger ml </td><td> Pêcheur </td><td> 05-539-6 </td><td></td></tr><tr><td> 15 tubes à centrifuger ml </td><td> Pêcheur </td><td> 05-531-6 </td><td></td></tr><tr><td> Stérile 100 mm X 20 mm Boîte de Pétri </td><td> Pêcheur </td><td> 0875711Z </td><td> Plus profond que des boîtes de Petri standard de </td></tr><tr><td> Plaque de 24 puits </td><td> Greiner Bio-One &lt;/ Td&gt; <td> 662000-06 </td><td></td></tr><tr><td> Microscope </td><td></td><td></td><td> Le microscope a besoin de capacités fluorescentes compatible avec votre fluorophore </td></tr><tr><td> Paraformaldéhyde </td><td> Sciences microscopie électronique </td><td> 15710 </td><td></td></tr><tr><td> PBS (Stérile) </td><td></td><td></td><td> 8 g de NaCl 0,2 g de KCl 1,44 g de Na 2 HPO 4 0,24 g KH 2 PO 4 1 L d&#39;eau Ajuster à un pH de 7,4 et d&#39;eau pour 1 L et autoclave </td></tr><tr><td> Microtubes </td><td> Pêcheur </td><td> 05-408-138 </td><td> 2 ml ou 1,5 ml tubes </td></tr><tr><td> Shaker </td><td></td><td></td><td> Toute agitation que provoque le liquide à déplacer doucement travaillera </td></tr><tr><td> L&#39;acide diaminopimélique </td><td> Sigma </td><td&gt; D-1377 </td><td> Si nécessaire, compléter des médias à une concentration ou 1 mM </td></tr></tbody></table>

visualizing bacteria in nematodes using fluorescent microscopy

Symbioses, le vivre ensemble de deux ou plusieurs organismes, sont répandues dans tous les règnes du vivant. Comme deux des organismes les plus répandus sur la terre, les nématodes et les bactéries forment un large éventail d&#39;associations symbiotiques qui vont de bénéfique pour les pathogènes 1-3. Une telle association est la relation mutuellement bénéfique entre les bactéries et nématodes Steinernema Xenorhabdus, qui a émergé en tant que système modèle de symbiose 4. Nématodes entomopathogènes Steinernema sont, en utilisant leur symbiote bactérien pour tuer les insectes 5. Pour la transmission entre les hôtes d&#39;insectes, les bactéries colonisent l&#39;intestin de l&#39;étape du nématode infectieux juvénile 6-8. Récemment, plusieurs autres espèces de nématodes a été démontré que les bactéries utilisent pour tuer les insectes 9-13, et les enquêtes ont commencé à étudier les interactions entre les nématodes et les bactéries dans ces systèmes &lt;sup&gt; 9. Nous décrivons une méthode pour la visualisation d&#39;un symbiote bactérien dans ou sur un hôte de nématodes, profitant de la transparence optique de nématodes lorsqu&#39;ils sont vus au microscope. Les bactéries sont modifiées pour exprimer une protéine fluorescente, ce qui permet leur visualisation par microscopie de fluorescence. Il existe de nombreux plasmides qui portent des gènes codant pour des protéines qui sont fluorescents à différentes longueurs d&#39;onde (c.-vert ou rouge), et la conjugaison des plasmides provenant d&#39;une souche d&#39;Escherichia coli donateurs dans un symbiote bactérien destinataire est positive pour une large gamme de bactéries. Les méthodes décrites ont été développés pour étudier l&#39;association entre Steinernema carpocapsae et Xenorhabdus nematophila 14. Des méthodes similaires ont été utilisées pour étudier d&#39;autres nématodes bactérie associations 9, 15-18 et l&#39;approche est donc généralement applicable. Le rencontréhod permet de caractériser la présence de bactéries et de localisation au sein de nématodes à des stades de développement différents, donnant un aperçu de la nature de l&#39;association et le processus de la colonisation 14, 16, 19. L&#39;analyse microscopique révèle la fréquence de colonisation à l&#39;intérieur d&#39;une population et la localisation des bactéries aux tissus de l&#39;hôte 14, 16, 19-21. Il s&#39;agit d&#39;un avantage sur les autres méthodes de surveillance des bactéries au sein des populations de nématodes, tels que la sonication 22 ou meulage 23, qui peuvent fournir des niveaux moyens de la colonisation, mais ne peut pas, par exemple, distinguer les populations avec une fréquence élevée de faibles charges symbiotes des populations une basse fréquence de charges élevées symbiotes. Discriminer la fréquence et la charge de bactéries colonisant peut être particulièrement important lors du dépistage ou de caractérisation de mutants bactériens des phénotypes colonisation 21, 24. En effet, la microscopie à fluorescence a été utilisé dans criblage à haut débit de mutants bactériens pour les défauts de la colonisation 17, 18, ​​et est moins pénible que les autres méthodes, y compris sonication 22, 25-27 et dissection des nématodes individuelle 28, 29.

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Visualizing Bacteria in Nematodes using Fluorescent Microscopy

Pour étudier le mutualisme entre<em&gt; Xenorhabdus</em&gt; Les bactéries et<em&gt; Steinernema</emNématodes&gt;, des méthodes ont été développées pour contrôler la présence de bactéries et nématodes emplacement à l&#39;intérieur. L&#39;approche expérimentale, qui peut être appliquée à d&#39;autres systèmes, ingénierie implique bactéries pour exprimer la protéine fluorescente verte et de visualisation, en utilisant des bactéries de microscopie par fluorescence dans le nématode transparent.

Visualisation des bactéries dans nématodes en utilisant la microscopie à fluorescence

 
Symbioses, the living together of two or more organisms, are widespread throughout all kingdoms of life. As two of the most ubiquitous organisms on ...

visualizing-bacteria-in-nematodes-using-fluorescent-microscopy

Research

JoVE Journal

Biology

18.6K vues.  University of Wisconsin-Madison. Pour étudier le mutualisme entre Xenorhabdus Les bactéries et Steinernema, des méthodes ont été développées pour contrôler la présence de bactéries et nématodes emplacement à l'intérieur. L'approche expérimentale, qui peut être appliquée à d'autres systèmes, ingénierie implique bactéries pour exprimer la protéine fluorescente verte et de visualisation, en utilisant des bactéries de microscopie par f...