Électrocardiographie non invasive chez la souris périnatale

Ce protocole unique permet l’évaluation de la fonction cardiovasculaire néonatale de souris utilisant la technologie d’électrocardiographie immédiatement après la naissance d’une manière non invasive sans l’utilisation d’anesthésiques. L’évaluation de la fonction cardiovasculaire murine au début de la période postnatale élargira notre compréhension du cœur néonatal d’une manière qui pourrait directement être corrélée avec les données cliniques humaines. Pour préparer le dispositif de mesure pour l’analyse, branchez l’appareil dans le port USB d’un ordinateur.

Le dispositif de mesure commencera automatiquement à chauffer jusqu’à 37 degrés Celsius. Après environ 15 minutes, retirer un chiot de souris de sa cage à la maison et essuyer le thorax avec 70% d’éthanol. Placez le chiot sur la surface chauffée du plastique et laissez l’animal s’acclimater à la surface pendant environ deux à cinq minutes dans l’obscurité.

Pendant que la souris s’acclimate, recueillir une petite gouttelette de gel adhésif électrique conducteur et appuyer doucement sur la gouttelette vers le bas sur le dessus de chacune des quatre surfaces d’électrode aplaties, tirant soigneusement le gel conducteur loin à un angle oblique du centre de la construction d’électrode après contact. Lorsque chaque électrode est complètement recouverte de gel, placez le chiot néonatal de souris sur la plate-forme en position couchée avec la tête du chiot face au bord USB sortant de la plate-forme avec chaque électrode couvrant une partie du thorax supérieur du chiot. Retenez doucement les avant-bras tout en appliquant une pression douce sur les électrodes pendant environ une minute.

Lorsque le gel conducteur est réglé, fixez le chiot sur les côtés droit et gauche avec des pare-chocs en silicone en caoutchouc. Surveillez la souris pendant un moment en ajustant le placement du pare-chocs au besoin. Lorsque le chiot est fixé, appliquez tout gel conducteur restant sur l’électrode de queue de mise à la terre et utilisez une pression douce pour placer l’électrode sur la croupe du chiot pour permettre au gel de se fixer avant de relâcher le chiot.

Placez soigneusement le pare-chocs en silicone final sur le dessus de la croupe pour maintenir l’électrode de mise à la terre en place et placez doucement toute la plate-forme dans la cage de Faraday, puis vérifiez que le chiot ne bouge pas excessivement et que le corps et la tête de la souris semblent sécurisés. Un ECG idéal aura un signal clair et proéminent qui permet d’analyser toutes les ondes en plusieurs périodes différentes. Une lecture de mauvaise qualité n’a pas de battements discernables, montre une interférence claire, et montre des vagues ou des incohérences à travers la lecture.

Le programme fournit l’analyse des aspects clés de la lecture d’ECG, y compris la fréquence cardiaque, les intervalles de RR, l’intervalle complexe de QRS, l’intervalle de QT, et l’intervalle de PR. En utilisant ces données pour établir un ensemble de valeurs normatives, dans cette analyse représentative, il a été déterminé que les chiots analysés au cours de la première journée postnatale avaient une fréquence cardiaque moyenne de 357,2 battements par minute. Pour un chiot dans la première journée postnatale, les intervalles moyens de RR, PR, QRS, et QT étaient 169.1, 36.3, 16.9, et 45.4 millisecondes respectivement.

Fait important, la configuration peut être utilisée pour analyser les modèles ECG de souris néonatales souffrant de malformations cardiaques congénitales. L’appareil est efficace et fiable, mais aussi très sensible aux interférences électriques environnantes. Assurez-vous de toujours enlever tout équipement inutile, y compris les chargeurs d’ordinateurs portables et les appareils intelligents avant l’enregistrement.

D’autres mesures possibles incluent la respiration et le plomb III, qui est calculé à partir de conduits I à II.Variables supplémentaires pourraient permettre un chevauchement supplémentaire avec d’autres symptômes physiologiques et / ou des arythmies cardiaques spécifiques.