L’importance de notre protocole est que la mesure de l’électrocardiogramme peut être effectuée avec une grande sensibilité chez une petite souris qui a été manipulée génétiquement ou pharmacologiquement. Le protocole est avantageux en ce qu’il est simple, rapide, peu coûteux et sensible. En outre, il peut être effectué sur de petites souris, même des nouveau-nés.
Nous croyons que cette méthode contribuerait à la compréhension des régions inexplorées de l’arythmie dans le secteur cardio-vasculaire. La démonstration de la procédure sera Tae Woong Ha de mon laboratoire. Commencez par ouvrir le logiciel d’analyse et le mettre en place pour l’acquisition de données ECG.
Allez aux paramètres de configuration et de canal et réglez le taux d’échantillon à 2000 échantillons par seconde. Réglez la portée à 20 millivolts et l’amplificateur d’entrée à 200 Hertz de faible passe. Ensuite, passez aux paramètres ECG Analysis et ECG, puis choisissez Mouse dans le preset des paramètres de détection et d’analyse.
Dans le panneau Moyenne, choisissez de concatiser et de faire des cycles cardiaques consécutifs en un seul signal moyen ou une vue moyenne et une vue de table. Dans le panneau QTc, sélectionnez la méthode Bazett, qui est définie comme la valeur corrigée de la fréquence cardiaque de l’intervalle QT. Placez la souris sur l’échelle de précision et enregistrez son poids.
Après s’être assuré que la souris est correctement anesthésiée insérer des électrodes avec des aiguilles d’acupuncture dans les membres antérieurs droit et gauche et l’arrière gauche. Assurez-vous que la profondeur et la position des électrodes sont constantes tout au long des expériences. Connectez les autres extrémités des électrodes en les cliquant sur les trois connecteurs instantanés à l’autre extrémité des fils de plomb des trois câbles d’amplificateur bio plomb et injectez des drogues environ trois minutes après l’anesthésie.
10 minutes après l’administration d’anesthésiques, commencer à enregistrer l’ECG. Une fois l’enregistrement terminé, utilisez les données ecg de 12 à 17 minutes après l’injection d’anesthésiques pour analyse. Une fois terminé, retirer soigneusement les électrodes.
Pour déterminer si cette mesure non invasive d’ECG reflète l’influence de la modulation autonome sur le système cardiaque de conduction, les souris normales de BALB/c ont été contestées avec des agonistes et des antagonistes du système nerveux autonome. Par rapport au contrôle du véhicule, la fréquence cardiaque a augmenté de façon significative chez les souris traitées à l’atropine et à l’isoprenaline et est tombée avec du carbachol. En outre, l’intervalle QTc a augmenté chez les souris traitées à l’atropine et à l’isoprenaline et a diminué chez les souris traitées au carbachol.
Des vues représentatives de diagramme et des vues moyennes des signaux d’ECG dans l’atropine, le carbachol et les souris traitées de véhicule sont montrées ici. Lorsque vous essayez ce protocole, la chose la plus importante est de s’assurer que les électrodes ECG sont insérées en toute sécurité tout au long de l’expérience. Effectuez plusieurs expériences préliminaires jusqu’à ce que les signaux ECG soient stables et cohérents.
Nos publications précédentes avec des souris ont confirmé des variations d’ECG qui avaient été rapportées dans les études génétiques humaines, qui soutiennent l’utilité de cette méthode dans les secteurs cardio-vasculaires de recherche tels que l’arythmie.
