Notre méthode fournit un modèle pour étudier comment les émotions sont digérées en simulant le processus de digestion dans une seule gouttelette d’aquas, qui est recouverte d’émulsifiant et est immergée dans la phase huileuse. Nous pouvons évaluer l’impact de différents émulsifiants et l’action de différents composants digestifs, et concevoir des interfaces qui peuvent résister ou retarder la digestion à différents endroits dans le tractus gastro-intestinal. Nous pouvons mesurer la tension interfaciale en C2 tout au long du processus de digestion simulé, ainsi que l’élasticité et la viscosité de la couche interfaciale à la fin de l’étape de digestion.
Les concentrations et les conditions de la digestion peuvent être ajustées aux exigences de l’expérience, et cela peut être appliqué séquentiellement, ou simultanément permettant d’évaluer la synergie et les effets cumulatifs. Et nous travaillons avec une seule gouttelette, nous avons donc besoin d’une très faible quantité d’échantillon, et nous avons un contrôle de haute précision des variables expérimentales. Nous avons appliqué cette technique pour concevoir une stratégie pour prendre le relais.
L’une de ces approches consiste à concevoir dans la couche fossile qui retire ou reçoit le processus de lipolyse. Une autre approche est l’utilisation d’innovateurs de lipase, et nous avons étudié le mécanisme d’action interfacial de la lipase. Ce dispositif a été développé à l’origine pour étudier la digestion in vitro.
Néanmoins, il peut être utilisé pour l’étude mono et l’interaction avec les lipides, et peut également être appliqué pour étudier automatiquement la micro concentration critique. La technique expérimentale est accessible. Un chercheur manuel a été formé à son utilisation en une semaine.
Vous devez nettoyer l’équipement à fond et purifier les échantillons et l’huile afin d’éviter la présence de contaminants tensioactifs. Vous devez vous familiariser avec l’ordinateur logiciel et apprendre à contrôler les lumières et la position de la capacité, et vous débarrasser des minuscules bulles. Pour commencer, gouttelette d’eau formelle pour vérifier la tension superficielle de l’eau à température ambiante.
Réglez la densité différentielle de l’air d’eau dans le dialogue de gauche et mesurez la tension superficielle en temps réel. pendant cinq minutes. Remplissez la cuvet propre avec au moins 0,002 litre d’huile végétale propre et placez-la dans le porte-cuve de la cellule thermostatique.
Réglez la densité différentielle à l’eau d’huile végétale et injectez 40 microlitres à un taux de 0,5 microlitre par seconde. Mesurez la tension en temps réel toutes les secondes jusqu’à la fin de l’injection. Il s’agit d’un processus dynamique simple.
Ensuite, enregistrez les données et tracez la tension interfaciale en fonction du volume des gouttelettes et d’une fiche technique. Vérifiez que la plage de volume des gouttelettes fournit une valeur pour la tension interfaciale indépendante du volume des gouttelettes pour l’eau propre. Tracer la zone interfaciale en fonction du volume des gouttelettes.
Cette courbe sera utilisée ultérieurement pour faire correspondre le volume avec la zone interfaciale correspondante. Avec la seringue gauche, injectez le volume dans la plage de tension interfaciale constante et enregistrez la tension interfaciale pendant cinq minutes. Il s’agit de vérifier l’absence de composants tensioactifs dans le système.
Pour effectuer le contrôle initial, injectez environ 10 microlitres de la solution émulsifiante dans le capillaire pour la formation de gouttes et enregistrez l’absorption dans une zone interfaciale constante d’environ 20 millimètres carrés pendant une heure. Les valeurs exactes de volume et de surface peuvent être obtenues à partir de la courbe d’étalonnage tracée précédemment. Programmez la réologie de dilution en réglant l’amplitude d’oscillation à 1,25 microlitre dans la période de 10 secondes.
Programmez ensuite l’absorption au niveau de la zone interfaciale sélectionnée pendant 10 secondes. Ensuite, pour enregistrer le programme de digestion gastrique, l’absorption au niveau de la zone interfaciale sélectionnée pendant 10 secondes. Remplissez la seringue gauche avec le liquide de la valve deux.
Injectez 125 microlitres de la valve deux à cinq microlitres par seconde avec la seringue gauche et extrayez simultanément le même volume au même rythme avec la seringue droite. Il s’agit d’une visualisation du processus d’échange en sous-phase de l’eau avec le bleu de méthylène. Déchargez la seringue droite pour sortir de la valve huit et chargez à nouveau la seringue gauche avec le liquide de la valve deux.
Répétez ces deux étapes 10 fois pour assurer un échange complet de sous-phase avec le liquide et la valve deux et les enzymes gastriques. Ensuite, enregistrez l’absorption dans la zone interfaciale sélectionnée pendant une heure et enregistrez la réologie de dilution comme indiqué précédemment. Pour enregistrer la digestion intestinale après avoir enregistré l’absorption dans la zone interfaciale sélectionnée, remplissez la seringue gauche avec le liquide de la valve trois et suivez les mêmes étapes que celles indiquées précédemment pour enregistrer la digestion gastrique.
De même, pour enregistrer la désorption, après avoir enregistré l’absorption dans la zone interfaciale sélectionnée, remplissez la seringue gauche avec le liquide de la valve cinq et répétez le reste des étapes utilisées pour enregistrer la digestion gastrique. Remplissez les tubes de microcentrifugation avec le milieu de digestion artificiel et connectez chacun d’eux à la vanne respective par le tube correspondant. Remplissez le tube dans les vannes deux à huit en nettoyant de la vanne deux, de la vanne trois, de la vanne quatre et de la vanne cinq jusqu’à la sortie externe qui est la vanne huit.
Remplissez le tuyau dans la vanne un en nettoyant de la vanne un à la valve six capillaire cinq fois. Placez le capillaire dans la phase huileuse et chargez la seringue gauche avec la valve un. Commencez à traiter séquentiellement la digestion gastrique de contrôle initial, la digestion intestinale et la désorption, en sauvegardant les données à la fin de chaque processus.
Les résultats expérimentaux obtenus pour la digestion gastrique des émulsifiants sont présentés dans ces figures. La protéolyse gastrique de l’albumine sérique humaine est présentée ici. Les milieux digestifs sont appliqués par sous-phases d’échange avec des solutions à 37 degrés Celsius.
Ici, le bleu représente le tampon initial avec les protéines et le rouge représente le SGF simplifié avec la pepsine. Au cours de l’échange en sous-phase avec SGF simplifié et pepsine, la tension interfaciale augmente en raison de l’hydrolyse de la protéine, qui dilue la couche protéique initiale. L’image graphique représente la lipolyse gastrique de la pectine d’agrumes.
Ici, le bleu représente le tampon initial avec la pectine d’agrumes, le jaune représente le SGF simplifié avec la lipase gastrique et le gris représente le SGF simplifié. L’échange de sous-phases avec la lipase gastrique diminue la tension superficielle tandis que l’échange de sous-phases avec SGF simplifié, fournit une réponse nulle de la tension interfaciale. Voici un exemple des profils de digestion intestinale.
L’absorption, la désorption, les profils de sels biologiques, de lipase et de lipase plus les sels biliaires dans le SIF simplifié à 37 degrés Celsius sont présentés ici. L’image graphique montre l’évolution de la tension interfaciale lors de la lipolyse de deux variantes de F127 et F68 pluéroniques. Une forte diminution de la tension interfaciale peut être observée en raison de l’absorption de lipase et de sels biliaires, et de la production d’acides gras libres sur les films interfaciaux précédemment formés de F68 et F127 à l’interface huile-eau.
L’étape de désorption montre l’échange de sous-phase avec SIF simplifié à partir de sels biliaires, F68 et F127. Profil de digestion in vitro du film absorbé par AS48 à l’interface air-eau dans les films absorbés par l’albumine sérique humaine et bovine à l’interface huile d’olive eau. Les images représentatives montrent la tension interfaciale, l’élasticité de dilatation et la viscosité de dilatation de la digestion in vitro du film absorbé par la bêta-lactoglobuline à l’interface eau d’huile d’olive.
Les paramètres de dilatation ont été mesurés à 1 hertz, 0,1 hertz et 0,01 hertz après que l’interface digérée ait été équilibrée à chaque étape. Il est important de faire correspondre les billes lors de la programmation du processus avec les tubes centrifugeux, capillaires ou axes correspondants, l’évolution de la distribution du site de chute, puis, la mobilité électrophorétique a défini un potentiel de gouttelettes, et l’acide gras libre aminé produit dans la lipolyse offre des informations complémentaires pour correspondre avec les résultats de la tension interfaciale. Cette technique fournit des couches interfaciales avec différents profils de digestibilité pour délivrer des nutriments et des médicaments à différents endroits dans le tractus gastro-intestinal, et aussi pour développer de nouveaux systèmes d’encapsulation.
